INSTITUTO DE PATOLOGIA VEGETAL (IPAVE)
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MEMORIA 2013
Ministerio de Agricultura, Ganadería y Pesca INSTITUTO NACIONAL DE TECNOLOGÍA AGROPECUARIA
CENTRO DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS
INSTITUTO DE PATOLOGIA VEGETAL (IPAVE)
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ÍNDICE
1.- INTRODUCCIÓN .................................................................................. 3
2.- PROYECTOS DE INTA........................................................................ 5
CARTERA de Proyectos INTA 2013 ...................................................................... 6
CARTERA de Proyectos INTA 2009 .................................................................... 93
Proyectos Convenio INTA AUDEAS CONADEV ................................................ 99
Programa de Cooperación Internacional INTA – EMBRAPA ......................... 100
Implementación de un Sistema de Gestión de Calidad en el IPAVE ............ 107
3.- PROYECTOS CON SUBSIDIOS/APORTES EXTRA-INTA ...... 109
4.- PUBLICACIONES .......................................................................... 1165
5.- TESIS .................................................................................................. 129
6.- VINCULACIONES TECNOLÓGICAS ........................................... 133
7.- RELACIONES INSTITUCIONALES .............................................. 137
8.- CAPACITACIÓN BRINDADA ........................................................ 145
9.- CAPACITACIÓN RECIBIDA .......................................................... 153
10.- EVALUACIONES ACADÉMICAS Y CIENTÍFICAS ................ 158
11.- SERVICIOS ESTRATÉGICOS ...................................................... 163
12.- RECURSOS HUMANOS .............................................................. 166
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1.- INTRODUCCIÓN
Durante el año 2013, se dio comienzo a la nueva cartera de Proyectos INTA 2013 que ha requerido una
fuerte actividad de gestión de todo el personal del IPAVE para responder a las demandas de los territorios
y/o adelantarnos a problemas futuros a través de la participación en los Programas Nacionales (PN) y en
los Proyectos Regionales con Enfoque Territorial (PReT). Esto originó que los integrantes del IPAVE
estén incluídos en 96 líneas de acción, pertenecientes a 26 Proyectos Específicos (PE), de 8 PN, y en
actividades compartidas con 16 PReT de 9 CR diferentes, como se detalla a continuación:
1. PN BIOTECNOLOGÍA (PNBIO) 4 PE (7 líneas)
2. PN PRODUCCIÓN ANIMAL (PAANIM) 1 PE (1 línea)
3. PN CEREALES Y OLEAGINOSAS (PNCYO) 6 PE (5 líneas)
4. PN FRUTALES (PNFRU) 2 PE (12 líneas)
5. PN HORTALIZAS, FLORES Y AROMÁTICAS (PNHFA) 6 PE (22 líneas)
6. PN SUELO (PNSUELO) 1 PE (1 línea)
7. PN PROTECCIÓN VEGETAL (PNPV) 4 PE (38 líneas)
8. PN CULTIVOS INDUSTRIALES 2 PE (10 líneas)
1. CR Buenos Aires Norte – 1 PReT BANOR
2. CR Buenos Aires Sur – 1 PReT BASUR
3. CR Catamarca La Rioja – 3 PReT CATRI
4. CR Córdoba – 2 PReT CORDO
5. CR Mendoza San Juan – 3 PReT MZASJ
6. CR La Pampa San Luis – 1 PReT PAMSL
7. CR Patagonia Norte – 1 PReT PATNOR
8. CR Salta Jujuy – 2 PReT SALJU
9. CR Tucumán Santiago del Estero – 2 PReT TUSGO
En esta nueva cartera de proyectos el IPAVE es sede de la coordinación del PN de Protección Vegetal
(PNPV), de dos Proyectos Integradores (de los PNIND y PNPV), de cuatro PE (de los PNIND, PNPV,
PNSUELO, PNCYO) y tres Módulos (de PE de los PNIND y PNPV). Además, el Instituto continúa
siendo sede del Atlas Fitopatológico Argentino, de la Red Nacional de Protección Vegetal y de la
Presidencia de la Asociación Argentina de Fitopatólogos (AAF).
El personal del IPAVE, también dirige un Proyecto INTA-AUDEA-CANADEV y dos Proyectos
INTA-EMBRAPA, y dirige y/o participa en veinte proyectos extraINTA que permitieron completar el
desarrollo de las actividades planificadas en los Proyectos institucionales. Paralelamente, se han llevado
adelante siete Convenios de Asistencia Técnica Nacionales y/o Cartas de Acuerdo y dos Convenios
Internacionales.
Las líneas de investigación permitieron identificar y caracterizar virus de maíz, trigo, alfalfa, girasol,
poroto, maní, batata, cebolla, ajo, chía, tomate, mandioca, cucurbitáceas, frutilla, tomate, pimiento, yerba
mate y plantas ornamentales. Se identificaron y criaron diferentes vectores de patógenos con el fin de
estudiar la transmisión. Se caracterizaron infecciones simples y aquellas producidas por mezclas de virus
y la interacción entre ellos y sus hospedantes. Se produjeron antisueros para virus de batata y mandioca y
para la bacteria Leisfonia xyli subsp. xyli causante de la parálisis de la caña de azúcar. Fue implementada
una sonda de diagnóstico para Strawberry mottle virus en frutilla.
Se comenzaron trabajos con diferentes virus tendientes a conocer los mecanismos de defensa en
plantas mediada por el silenciamiento génico. Fue comprobada una compleja red de infecciones simples y
mixtas de begomovirus en tomate y pimiento en el NOA. Se estudió la diversidad intraespecífica de virus
presentes en distintos cultivos de Argentina.
Fueron determinados los porcentajes de incidencia, prevalencia de los patógenos en los campos de
producción y estudiados los mecanismos de transmisión. A través de estudios de distribución temporal y
espacial de los patógenos, se construyeron mapas de distribución, etc. Se evaluó la resistencia/tolerancia a
virus de diferentes cultivares de girasol, y de cultivares de ajo ante fitoplasmas y virus.
Se han obtenido exitosamente plantas de Murraya paniculada para la cría artificial del psílido
Diaphorina citri, vector del HLB.
Se identificaron, y se trabaja en la caracterización de fitoplasmas en frutilla, duraznero, remolacha
azucarera y se estudian los vectores de estos patógenos en alfalfa y otros hospedantes. Se determinó la
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duración del ciclo biológico de Ceresa nigripectus (Membracidae) posible vector del fitoplasma de
alfalfa. Se lograron identificar y caracterizar proteínas involucradas en la interacción de los fitoplasmas
con su hospedante. Se identificaron y caracterizaron viroides de frutales de pepita y carozo.
Se trabaja en la caracterización de cepas de este hongo aisladas de diferentes regiones del país. Se
ajustó la técnica de análisis mediante PCR en tiempo real, qPCR – TaqMan para la detección de
Verticillium dahlieae en olivo. Se ensayaron diferentes estrategias de manejo para el carbón del maní. Se
realizaron estudios epidemiológicos, herramientas tácticas para el control químico y el manejo de las
enfermedades.
Se está trabajando en la implementación de una cuarentena sanitaria para germoplasma de caña de
azúcar en el IPAVE como un servicio estratégico para los programas de mejoramiento genético.
Se continúan acciones relativas al desarrollo de construcciones capaces de inducir la vía de RNAi o
miRNA para generar resistencia a tospovirus.
Se produjeron plantas libres de virus de batata y ajo que fueron entregados a productores como
mecanismo de manejo y control de los daños producidos por estos patógenos.
Se completó el ensayo de triple interacción soja/ hongo micorrícico/Fusarium virguliforme. Con la
finalidad de relacionar las comunidades microbianas en respuesta a la aplicación de vinaza y la incidencia
de enfermedades causadas por hongos de suelo en el cultivo de caña de azúcar, se aplicaron diferentes
dosis que posteriormente serán evaluadas. Se evaluó el efecto de prácticas culturales sobre poblaciones de
biocontroladores y su relación con la incidencia de enfermedades causadas por hongos de suelo en soja.
Se continuó con la carga de información en el Atlas Fitopatológico Argentino a través de su página
web www.fitopatoatlas.org.ar.
Los resultados permitieron la publicación de 19 trabajos en revistas nacionales e internacionales con
referato, dos en revistas sin referato, 56 presentaciones a reuniones científicas, tres capítulos de libros,
ocho publicaciones de divulgación nacionales y dos internacionales. En este período también se
finalizaron dos tesis de Doctorado, y se cuenta con 21 tesis en marcha (14 doctorales, cuatro maestrías y
tres de grado).
Dra. Vilma Cecilia Conci
Dir. (Int.) Instituto de Patología Vegetal
IPAVE-CIAP-INTA
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PROYECTOS DE INVESTIGACIÓN
DE INTA
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2.- PROYECTOS DE INTA
Cartera de Proyectos INTA 2013
2.1.PNBIO 1131022. Genómica funcional y biología de sistemas.
Coordinador: Sebastian Asurmendi
Unidad Sede: Inst. de Biotecnología
2.1.1. Acción. Análisis comparativo del perfil y la abundancia relativa de los RNAs
mensajeros (mRNAs) y RNAs pequeños (sRNAs) que se acumulan en plantas de
trigo infectadas y en insectos con el virus del Mal de Río Cuarto (MRCV)
Responsable: Luis de Haro [email protected] (Inst. de Biotecnología)
Participantes: E. Argüello Caro; A. Dumón (IPAVE); G. LLauger (Inst. de
Biotecnología).
El MRCV es evolutivamente un virus de insectos que recientemente adquirió la
habilidad de replicar en plantas causando infecciones severas (citopáticas) y una alta
acumulación viral en plantas e infecciones no citopáticas en el insecto que lo transmite.
Por ello, resulta interesante estudiar comparativamente las bases moleculares de dicha
diferencia.
Para determinar el perfil transcripcional de los mRNAs y la acumulación de sRNAs en
ambos hospedantes, se realizó un ensayo de transmisión 1:1 a plántulas de trigo (cv.
ProINTA Federal) con tres repeticiones (Figura 1).
Figura 1. Actualmente, las plantas se mantienen en invernáculo con temperatura controlada (25 ± 3°C)
hasta la evaluación de síntomas y análisis posteriores.
2.1.2. Acción. Análisis estructural y funcional de siRNAs (RNAs pequeños
interferentes) derivados de begomovirus y tospovirus en infecciones mixtas y
diferentes hospedantes y sus consecuencias en la defensa antiviral
Responsable: Paola M. López Lambertini, [email protected] (IPAVE)
Participantes: H. Debat, N. Puyané, V. Bornancini, C.G. Vaghi Medina (IPAVE)
Hasta el momento, se han analizado los perfiles de acumulación de RNAs pequeños
publicados derivados de tospovirus en Nicotiana benthamiana y Solanum lycopersicum,
generando patrones de frecuencia y contrastándolos con análisis estructurales del RNA
viral. Es interesante destacar que el análisis bioinformático de acumulación de RNAs
pequeños derivados de TSWV presenta diferencias en comparación con los reportados
por otras especies virales. Por ejemplo, el patrón de acumulación de RNAs pequeños de
TSWV es independiente del hospedante, mientras que la acumulación global si
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depende del mismo. Otra característica que presentan son la falta de parcialidad a nivel
de polaridad, que la mayoría de los RNAs pequeños derivan de los segmentos genómico
M y S y la presencia de regiones distintivas o hotspot de producción masiva de los
mismos. En paralelo, se han generado líneas transgénicas de Arabidopsis thaliana que
expresan microRNA artificiales cuyo target son diversas regiones que generan
diferencialmente RNAs pequeños virales. Se proyecta correlacionar perfiles de
acumulación de RNAs pequeños, fenotipos de resistencia/tolerancia a virus y estructura
secundaria de virus para, a largo plazo, contar con una plataforma integrada de
planificación de blancos eficientes virales para la generación de resistencia a virus.
2.2.PNBIO 1131023. Prospección y caracterización funcional de genes de interés
biotecnológico
Coordinador: Cecilia Vazquez Rovere
Unidad Sede: Inst. de Biotecnología
2.2.1.Acción. Analizar la participación de las vías de inmunidad innata del insecto
en la transmisión del MRCV por Delphacodes kuscheli y analizar la participación
de las vías del silenciamiento génico activadas en éste en infecciones simples y
mixtas con un rhabdovirus de cereales
Responsable: María Fernanda Mattio, [email protected] (IPAVE)
Participantes: A. Dumón, E. Argüello Caro (IPAVE)
Los niveles de infección viral en el insecto vector pueden estar asociados a diferentes
factores, como los mecanismos de inmunidad y silenciamiento génico que se activan
ante el ataque de un virus y la presencia de un segundo virus en el vector, que puede
modificar la capacidad de transmisión de uno o ambos virus.
Para determinar qué genes se activan en D. kuscheli frente a la presencia del MRCV y/o
rhabdovirus, se comenzó con la búsqueda y alineamiento de secuencia de genes de
inmunidad y silenciamiento génico presentes en otros insectos delfácidos (Nilaparvata
lugens, Sogatella furcifera, Laodelphax striatellus y Peregrinus maidis). A partir de las
zonas conservadas de estos genes, se diseñaron cebadores degenerados que serán
posteriormente utilizados para detectar su expresión en D. kuscheli por RT-qPCR.
Por otro lado, se cuenta con el material biológico, el cual se obtuvo mediante ensayos
de transmisión 1:1 con ejemplares de D. kuscheli (infectados con MRCV o MRCV-
rhabdovirus) a plántulas de trigo (cv. ProINTA Federal).
2.3.PNBIO 1131044. Genómica aplicada a estudios de ecología molecular y
diversidad genética
Coordinador: Daniela Tosto
Unidad Sede: Inst. de Biotecnología
2.3.1. Acción. Diversidad genética y filodinamia de virus emergentes que infectan
solanáceas hortícolas
Responsable: Paola M. López Lambertini, [email protected] (IPAVE)
Participantes: C.G. Vaghi Medina, V. Ranieri, N. Puyané, H. Debat (IPAVE)
Los begomovius son parte de la familia Geminiviridae, su genoma es circular y su
vector es la mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius). En Argentina se han identificado
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begomovirus del Nuevo Mundo, la mayoría de estos poseen genomas bipartitos (DNA-
A y DNA-B). La recombinación genética tiene un rol importante como mecanismo de
evolución de estos patógenos y contribuye a la generación de nuevas especies que
pueden presentar mayor virulencia. Se identificó, caracterizó y determinaron los
posibles eventos de recombinación que dieron origen a una nueva especie de
begomovirus que circula en la región del NOA.
Se estimó la riqueza y diversidad de begomovirus mediante patrones generados por
RCA-RFLP en tomate y pimiento en el noroeste argentino (NOA). Se amplificaron
mediante círculo rodante (RCA) los genomas de begomovirus de 27 plantas de tomate
y 31 de pimiento. Cada producto de amplificación fue digerido con ApaI, BamHI, PstI y
XhoI y sembrado en geles de agarosa al 1,2% obteniendosé patrones polimórficos de
restricción (RFLP). Se calcularon los índices de riqueza y de diversidad de Shannon
(H’) y Simpson (1-D). Se comprobó una compleja red de infecciones simples y mixtas
de begomvoirus en tomate y pimiento en el NOA.
La diversidad de patrones de RCA-RFLP demuestran una compleja red de infecciones
simples y mixtas de begomovirus en tomate y pimiento en la región del NOA.
2.4. PNCYO 1127023. Contaminación con micotoxinas en grano de cereales y
oleaginosas en pre y poscosecha: identificación de situaciones de riesgo, desarrollo
de pronósticos con base meteorológica y de buenas prácticas de manejo,
internalización territorial.
Coordinador: Ricardo Moschini
Unidad Sede: Instituto de Clima y Agua
2.4.1.Acción. Identificación de situaciones de riesgo en precosecha, internalización
de la problemática y medidas de manejo para reducir la contaminación con
aflatoxinas en grano de maíz
Responsable: María de la Paz Giménez Pecci (IPAVE)
Participantes: I.G. Laguna (IPAVE-CONICET), B. Camiletti (IPAVE-FAC.UNC), F.
Maurino (IPAVE-CONICET), M. Vicondo (IPAVE), M. Druetta
(IPAVE-EEA
Quimilí), J. Raspanti
(IPAVE), M. Ferrer Lanfranchi (IPAVE), E. Ruiz Posse
(FCA.UNC), E. Lucini (FCA.UNC)
Pudrición de la espiga de maíz por Aspergillus sp.
Obtención de muestras de maíz. Las muestras procedieron de zonas ubicadas en
cercanías a las localidades de Manfredi, General Paz, Jesús María, Cañada de Luque,
Despeñaderos y Pampa de Pocho, dentro de la provincia de Córdoba; La Abrita y
Sachayoj en la provincia de Santiago del Estero, y Videla, en la provincia de Santa Fe.
Cada una estuvo compuesta por 10 mazorcas en estado de grano duro, cosechadas al
azar dentro de un mismo lote y transportadas en bolsas para su posterior análisis
(Sevúlpeda y Piontelli, 2005). Para las muestras 07 y 09 se colectaron mazorcas con
síntomas o sospecha de pudrición. Las muestras fueron colocadas en estufa con
circulación de aire forzada a 38ºC durante 72 h hasta que la semilla alcanzó un
contenido de humedad del 10% aproximadamente (Quezada et al, 2011). Cuatro espigas
de cada muestra fueron trilladas para medir la humedad de sus granos con una balanza
higrométrica portátil de alta precisión DelverHD1D21J. Ambas fracciones fueron
conservadas a 4ºC. Tabla 1.
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Tabla 1. Muestras de mazorcas colectadas para el aislamiento de Aspergillus sp.
Nº Ingreso Provincia Localidad Coordenadas geográficas Cultivar
01 24/06/2013 Sgo del Estero Sachayoj 26⁰ 26´12,5´´ S 61⁰56´21,6´´ O Dow Tropical x Templado 02 24/06/2013 Sgo del Estero Sachayoj 26⁰ 23´0,2´´ S 62⁰0´56,8´´ O Dow Tropical x Templado
03 24/06/2013 Sgo del Estero Sachayoj 26⁰ 26´12,5´´ S 61⁰56´13,7´´ O 747 DK Templado
04 24/06/2013 Córdoba Manfredi 31⁰ 51´27, 37´´ S 63⁰45´23,66 ´´ O Pioneer 2053Y
05 24/06/2013 Córdoba Manfredi 31⁰ 51´27, 37´´ S 63⁰45´23,66 ´´ O 2775
06 28/06/2013 Córdoba Manfredi 31⁰ 52´37, 93´´ S 63⁰44´2,55 ´´ O Pioneer 1780 MG
07 28/06/2013 Córdoba Manfredi 31⁰ 52´37, 93´´ S 63⁰44´2,55 ´´ O Pioneer 1780 MG
08 28/06/2013 Córdoba Manfredi 31⁰ 52´37, 93´´ S 63⁰44´2,55 ´´ O NIDERA 852RRMG
09 28/06/2013 Córdoba Manfredi 31⁰ 52´37, 93´´ S 63⁰44´2,55 ´´ O NIDERA 852RRMG
10 01/07/2013 Córdoba Gral. Paz 31⁰ 11´30, 69´´ S 64⁰9´49,85 ´´ O DK747VT3 Pro
11 01/07/2013 Córdoba Jesús María 30⁰ 58´25, 41´´ S 63⁰59´54,32 ´´ O SPS Ciclo Interm. BT Clearfield
12 05/07/2013 Córdoba Cañada de Luque 30⁰ 44´21, 98´´ S 63⁰38´17,94 ´´ O ACA468MGRR2
13 05/07/2013 Córdoba Cañada de Luque 30⁰ 44´21, 98´´ S 63⁰38´17,94 ´´ O LT632MGRR2
14 05/07/2013 Córdoba Cañada de Luque 30⁰ 44´21, 98´´ S 63⁰38´17,94 ´´ O Pisingallo
15 05/07/2013 Córdoba Cañada de Luque 30⁰ 44´21, 98´´ S 63⁰38´17,94 ´´ O Don Mario 2749MGRR2
16 05/07/2013 Córdoba Cañada de Luque 30⁰ 44´21, 98´´ S 63⁰38´17,94 ´´ O Dow 2ª120HXRR2
17 05/07/2013 Córdoba Cañada de Luque 30⁰ 44´21, 98´´ S 63⁰38´17,94 ´´ O DK747VT3 Pro
18 29/07/2013 Córdoba Despeñaderos 31⁰ 48´38, 50´´ S 64⁰20´51,50 ´´ O Agriseed AG 9008 TD Max
19 01/08/2013 Córdoba Pampa de Pocho 31º 27´19,6´´ S 65º16´18,7´´ O MC 210 Baya Casal
20 13/11/2013 Sgo del Estero La Abrita 28º 02´30´´ S 64º23´13´´ O Pioneer P1780Y
21 13/11/2013 Sgo del Estero La Abrita 28º 02´30´´ S 64º23´13´´ O Pioneer P3115H Tr 4 RII
22 13/11/2013 Sgo del Estero La Abrita 28º 02´30´´ S 64º23´13´´ O Monsanto DK 747 VT3P
23 13/11/2013 Sgo del Estero La Abrita 28º 02´30´´ S 64º23´13´´ O Pioneer 30F35H
24 18/11/2013 Santa Fe Videla 28º 02´30´´ S 64º23´13´´ O Germoplasma comercial
Aislamiento de la micobiota natural de granos de maíz. El aislamiento de la
micobiota general fue realizado mediante la técnica de plaqueo directo con desinfección
superficial. Se tomaron 100 granos de maíz de cada muestraque se desinfectaron con
hipoclorito de sodio al 1% durante 2 min y lavaron tres veces con agua destilada estéril.
Se colocaron 10 granos por placa.
Un grupo de 18 muestras (01 a 09 y 16 a 24) se plaquearon sobre dos medios de cultivo:
diclorán rosa de bengala cloranfenicol (DRBC) (King et al., 1979, Pitt and Hocking,
1997) y diclorán- glicerol al 18% (DG18) (Hocking y Pitt, 1980). Las placas se
incubaron durante siete días a 25ºC. Un segundo grupo de muestras (10 a 15) se
sembraron en medio de DRBC con 3% de NaCl para favorecer el crecimiento de
Aspergillus flavus. Luego de la incubación se observaron macro y microscópicamente
las diferentes colonias (Tabla 2).
Tabla 2. Porcentaje de colonias obtenidas de la siembra de granos de las espigas
cosechadas en los diferentes medios de cultivo
Muestra Nº
% Incidencia Aspergillus % Incidencia Penicillium
% Incidencia Fusarium
01 DG18: 7/50 DRBC: 0/50 DG18: 0/50 DRBC: 0/50 -
02 DG18:0/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 -
03 DG18:48/50 DRBC: 49/50 DG18:0/50 DRBC: 1/50 -
04 DG18: 00/50 DRBC: 00/50 DG18: 42/50 DRBC: 50/50 DG18: 50/50 DRBC: 50/50
05 DG18: 00/50 DRBC: 00/50 DG18: 20/50 DRBC: 30/50 DG18: 22/50 DRBC: 27/50
06 DG18: 00/50 DRBC: 00/50 DG18: 43/50 DRBC: 50/50 DG18: 50/50 DRBC: 02/50
07 DG18: 00/50 DRBC: 00/50 DRBC: 20/50 DG18: 45/50 DRBC: 45/50
08 DG18: 00/50 DRBC: 00/50 DG18: 50/50 DRBC: 50/50 DG18: 50/50 DRBC: 50/50
09 DRBC: 01/50 DG18: 00/50 DG18: 50/50 DRBC: 05/50 DG18: 50/50 DRBC: 01/50
10 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 17/50 DRBC3%NaCl: 26/50
11 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 16/50 DRBC3%NaCl: 30/50
12 DRBC3%NaCl: 01/50 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 50/50
13 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 08/50
14 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 00/50 DRBC3%NaCl: 08/50
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15 DRBC3%NaCl:01/50 DRBC3%NaCl: 00/50 No observado
16 DG18:0/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
17 DG18:01/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
18 DG18:1/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
19 DG18:0/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
20 DG18:1/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
21 DG18:0/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
22 DG18:0/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
23 DG18:1/50 DRBC: 0/50 DG18:1/50 DRBC: 0/50 No observado
24 DG18:0/50 DRBC: 0/50 DG18:0/50 DRBC: 0/50 No observado
Identificación de las especies de Aspergillus aisladas de granos de maíz. Para la
identificación de especies del género Aspergillus, se subcultivaron en agar extracto de
malta (MEA) (Pitt &Hocking, 2009) durante 7 días a 25ºC para su posterior
identificación en especies (Pitt y Hocking, 2009). A partir de cada cepa desarrollada en
MEA, se realizó una suspensión de conidios en 0,5 ml de agar semisólido (Pitt
&Hoking, 2009) y, desde allí, se inocularon con ansa “en punta” las placas de Petri con
los medios de cultivo MEA, Czapek yeast extract agar (CYA) y Czapek yeast extract
agar con 20% sacarosa (CY20S) (Pitt & Hocking, 2009) en tres puntos equidistantes
entre sí y del borde de la placa para luego ser incubados a 25 y 37ºC como se indica en
la Figura 1. Todas las placas se observaron después de un período de incubación de
siete días. Las características macroscópicas observadas fueron: color de las colonias,
diámetro de las colonias, color del micelio, formación de esclerocios, formación de
cleistotecios, color del reverso y presencia de exudados. Las características
microscópicas a observar fueron: presencia de fiálides y/o métulas en el conidióforo,
longitud y rugosidad del estipe y, por último, diámetro y forma de los conidios (Klich,
2002).
Figura 1. Esquema de inoculación para la identificación de especies del género Aspergillus (Klich,
2002; Pitt y Hocking, 2009).
Una vez registradas las características macroscópicas y microscópicas de las cepas
crecidas en diferentes medios de cultivo se procedió a identificar la especie mediante la
clave taxonómica para la identificación de especies del género Aspergillus descripta por
Klich (2002).
Resultados
Las colonias aisladas de las muestras 03, 09, 12, 15 y 20 fueron determinadas como
cepas de la especie Aspergillus flavus. Estos aislamientos colectados en dos localidades
de la Pcia de Córdoba y dos localidades de la Pcia. de Santiago del Estero se mantienen
en cultivo.
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Bibliografía
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xerophilic fungi from low moisture foods. Appl. Environ. Microbiol. 39: 488–492. En
Pitt, J. I and Hocking, A. D. 2009.Fungi and Food Spoilage.Springer. New York, USA.
519 pp.
King, A.D., Hocking, A.D. and Pitt, J.I. 1979.Dichloranrosebengal medium for
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En Pitt, J. I and Hocking, A. D. 2009.Fungi and Food Spoilage.Springer. New York,
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Pitt, J.I. and Hocking, A.D. 1997.Fungi and Food Spoilage, 2nd
edn. London: Blackie
Academic and Professional. En Pitt, J. I and Hocking, A. D. 2009.Fungi and Food
Spoilage.Springer. New York, USA. 519 pp.
Pitt, J. I and Hocking, A. D. 2009.Fungi and Food Spoilage.Springer. .CSIRO Division
of Food Science and Technology Sydney Accademic, Press.Australia. Tercera edición
New York, USA. 519 pp.
Klich M.A. (2002). Identification of common Aspergillus species. Centralalbureauvoor
Schimmelculturea, Utrecht, The Netherlands.
Quezada-Viay M.Y., Flores-Oliva A., Arrúa-Alvarenga A.A., Vázquez-Badillo M.E.,
Moreno-Martínez E.(2011). Resistencia de plantas de maíz a la infección por
Aspergillus flavus Link en Invernadero. Revista Agraria-Nueva Epoca- Año VIII. Vol.
8. No. 2. Mayo-Agosto 2011.
2.5. PNCYO 1127034. Evaluación y desarrollo de sistemas de manejo integrado de
las plagas en cultivos de cereales y oleaginosas.
Coordinador: Jorge Frana
Unidad Sede: EEA Rafaela
2.5.1. Acción. Evaluación de resistencia y tolerancia de cultivares de trigo al
complejo de virus transmitidos por el ácaro Aceria tosichella
Responsable: Vanina Alemandri. [email protected] (IPAVE)
Participantes: G. Truol, S.M. Rodríguez, A. Dumón, E. Argüello Caro (IPAVE).
En Argentina se han detectado, hasta el momento, ocho virus en trigo, entre ellos,
Barley stripe mosaic virus (BSMV), Wheat streak mosaic virus (WSMV) y Wheat
mosaic virus (WMoV) (anteriormente conocido como High Plains virus, HPV y
actualmente propuesto como Maize red stripe virus, MRSV). WSMV y WMoV son
naturalmente transmitidos por el ácaro Aceria tosichella Keifer (Wheat Curl Mite =
WCM), detectado en nuestro país en el año 2004, dos años después de la detección de
WSMV. Entre las principales estrategias para el manejo de estas enfermedades se
destaca la utilización de genotipos de trigo con resistencia o tolerancia a estas virosis.
Desde el momento de su identificación, WSMV en 2002, y WMoV en 2006, se han
realizado trabajos sobre incidencia y prevalencia de cultivares en diferentes subregiones
trigueras y según fechas de siembra, evaluación de malezas reservorios, porcentaje de
transmisión por semilla, ajuste de técnicas de diagnóstico, y desarrollo de nuevo
germoplasma de trigo incluyendo diferentes líneas parentales como donantes de genes
de resistencia a estas virosis. Por otra parte, BSMV cobra importancia en el marco de
las exportaciones por su forma de transmisión, ya que es uno de los virus más
eficientemente transmitidos por semillas, lo cual requiere de un relevamiento constante
en las zonas productoras y de minuciosos análisis, registrándose en las últimas
12
campañas diversos cultivares afectados. En este proyecto se avanzará con los estudios
para el complejo de virus transmitidos por ácaros ya iniciados en el año 2006. Se
estudiará el nivel de resistencia o tolerancia al complejo de virus transmitidos por A.
tosichella de cultivares de trigo disponibles actualmente y de los que serán
desarrollados por otros grupos de investigación utilizando herramientas biotecnológicas.
Se incorpora, además, la temática de BSMV con la evaluación de susceptibilidad al
virus, y porcentaje de transmisión por semilla en infecciones naturales. En esta
campaña, se realizaron muestreos al azar en parcelas de la Red Nacional de Evaluación
de Cultivares de Trigo (RET) para la evaluación de la presencia de virus, su incidencia
y porcentaje de transmisión por semilla de WSMV y BSMV. Así mismo, se cosechó la
semilla en un lote de trigo del cultivar Biointa 3005 infectado con WSMV en la
localidad de Leones (Córdoba) y se analizó el porcentaje de transmisión por semilla y el
poder germinativo. Se sembraron las semillas y se analizaron 1500 plantulas en 100
grupos de 15 plantas cada uno mediante serología. El 2% de los grupos de 15 plantas
resultó positivo para WSMV. Por otra parte, se realizaron cuatro repeticiones de 100
semillas sobre papel de filtro humedecido en un germinador con tapa y a 20 ºC
constante para evaluar el poder germinativo. Del mismo modo, se analizaron las
semillas sanas del mismo cultivar. Luego se realizó un recuento de las semillas
germinadas a los 8 días. Las semillas enfermas expresaron un promedio de germinación
del 60% y las enfermas del 87% .
2.5.2. Acción. Prospección y detección de virus y mollicutes emergentes y
prevalentes en cultivos de maíz de territorios templados y subtropicales
Responsable: María de la Paz Giménez Pecci, gimenez.Marí[email protected]
(IPAVE)
Participantes: F. Maurino, I.G. Laguna, M. Ferrer Lanfranchi, J. Raspanti (IPAVE), M.
Druetta (IPAVE-EEA Quimilí), M.P. Ruiz Posse (IPAVE)
Presencia, prevalencia e incidencia de Spiroplasma kunkelii (CSS) y Mal de Río
Cuarto virus (MRCV)
a) Distribución de CSS y MRCV en cultivos de maíz en la campaña 2012/13. La
continuidad geográfica de los cultivos, desde el extremo norte del país hasta la zona
agrícola núcleo e incluso hasta las puertas de la Patagonia, que se ha generado
durante la última década en Argentina, plantea un contexto diferente al analizado
hasta el momento en el análisis de la epidemiología de las enfermedades de los
cultivos.
Las barreras que antes podían estar actuando, tal como los ambientes naturales con
inexistencia de cultivos de una amplia franja del centro del país, impidiendo el paso
de inóculo desde una zona a otra, se fueron reduciendo hacia el oeste de esta franja y
quebrando hacia el este, debido al empleo de las nuevas tecnologías y estrategias de
manejo que permitieron que la agricultura avanzara sobre tierras antes dedicadas a la
ganadería o pastizales y monte natural.
Actualmente pueden plantearse dos corredores agrícolas con orientación N-S en el
área subtropical del país: uno al pie del sistema montañoso del oeste (Umbral al
Chaco: Salta, Jujuy, Tucumán, este de Catamarca, oeste de Santiago del Estero) y
otro en la región del Chaco subhúmedo (Formosa, centro del Chaco, este de Sgo del
Estero, oeste de Santa Fe). Este último corredor agrícola se prolonga en la zona de
transición del clima subtropical al templado (centro de Santa Fe, SO de Sgo. del
Estero y norte de Córdoba), también de reciente desarrollo en la agricultura, que
desemboca directamente en la zona maicera núcleo templada (Figura 1).
13
Figura 1. Corredores agrícolas del oeste de Argentina y del Chaco subhúmedo, que dan
continuidad geográfica N-S a los cultivos de maíz en el país. Mapa http://geointa.inta.gov.ar/
Figura 2. Plantas de maíz con Achaparramiento del maíz (Spiroplasma kunkelii) (derecha) y con
Mal de Río Cuarto virus (MRCV) (izquierda)
A esta continuidad geográfica actual de las tierras cultivadas se agrega la del
germoplasma empleado en estas zonas de transición entre el subtrópico y la zona
templada. Esta situación ha permitido el avance de las enfermedades del norte hacia el
sur y viceversa.
Este es el caso de las enfermedades del maíz transmitidas por vectores: Mal de Río
Cuarto y Achaparramiento (Figura 2); una viral y la otra causada por un mollicute
(procarionte), ambas son transmitidas por chicharritas auquenorrincos.
La característica principal que se observa en los cultivos de maíz ubicados en las zonas
de avance de estas dos enfermedades, es que las plantas afectadas presentan muy escasa
sintomatología, que no es detectada fácilmente, aún bajo mirada experta, en la
actualidad.
14
Sin embargo, las plantas afectadas no tienen producción o la misma está reducida. La
serología permite detectar la presencia de estas enfermedades, conocer su incidencia
(porcentaje de plantas afectadas en un lote) y prevalencia (porcentaje de lotes con al
menos una planta enferma en una zona). Los resultados del período agrícola 2012/2013
son presentados en las Figuras 3 y 4.
Figura 3. Presencia e incidencia del
achaparramiento del maíz causado por
Spiroplasma kunkelii (CSS), en lotes de maíz
de la campaña 2012/13, determinado por
serología.
Figura 4. Presencia e incidencia del Mal de
Río Cuarto (MRCV), en lotes de maíz de la
campaña 2012/13, determinado por
serología.
En la Figura 3 se observa que el achaparramiento está afectando los cultivos en las
provincias de Santiago del Estero, Chaco, Tucumán y Córdoba, registrándose la mayor
incidencia en Santiago del Estero con 63%. En la Figura 4 se observa la presencia del
Mal de Río Cuarto en Salta, Tucumán y Córdoba, con registros de mayores valores de
incidencia en Córdoba (17%).
Se ha prevenido a la comunidad agropecuaria sobre estas dos enfermedades y se
dispone de mapas actualizados para ser ofrecidos a la comunidad interesada.
Mal de Río Cuarto virus y Spiroplasma kunkelii están presentes en todo el territorio
agrícola del país, siendo en el norte marcadamente evidente el achaparramiento y en la
zona pampeana mucho más severo e importante el Mal de Río Cuarto Virus. Ambos
patógenos se han detectado desde la localidad de Yaví en la Provincia de Jujuy hasta
Hilario Ascasubi, en el sur de la Provincia de Buenos Aires.
b) Estudio comparativo de cuatro períodos agrícolas sobre la incidencia y prevalencia
de Mal de Río Cuarto virus (MRCV) y Spiroplasma kunkelii (CSS) en muestras de
maíz analizadas mediante serología (campañas 2009/10 a 2012/13). Es posible
encontrar a ambas enfermedades a lo largo de todo el país, que se manifiestan con
diferentes niveles de intensidad dependiendo de la zona y las condiciones
ambientales de las diferentes campañas. Para evaluar su intensidad se determinan los
valores de prevalencia: porcentaje de lotes con presencia de la enfermedad (con al
menos una planta enferma) en una zona determinada, e incidencia: es el porcentaje
de plantas enfermas en un lote. El término incidencia máxima hace referencia al
mayor valor de incidencia encontrado para una campaña. En el cuadro 1 se observan
los valores de estos índices para las tres últimas campañas (2010/11 – 2012/13).
15
Los máximos valores de prevalencia e incidencia de MRCV en estos años fueron
alcanzados durante la campaña 2010/11 para ambas zonas. Ambos índices fueron
disminuyendo durante los tres años considerados. En la primer y segunda campaña,
MRCV presentó mayor prevalencia en la zona templada, mientras que durante la
última, las dos exibieron valores muy similares (83%) (Figura 5; Gráfico A). En
cuanto a la Incidencia máxima de este patógeno la zona templada presentó mayores
valores que la subtropical en todas las campañas consideradas. (Figura 5; B).
A B
C D Figura 5. Prevalencia e incidencia de Spiroplasma kunkelii (Corn stunt spiroplasma, CSS) y Mal
de Río Cuarto virus (MRCV) analizados por serología en cultivos de maíz durante las ultimas
tres campañas (2010/11; 2011/12; 2012/13). A: prevalencia de MRCV; B: Incidencia de MRCV;
C: prevalencia de CSS; D: incidencia de CSS.
Durante la primera campaña, la prevalencia de CSS fue superior en la zona templada,
presentando un valor muy bajo en la subtropical. En la siguiente se presentaron
valores muy similares en ambas regiones, mientras que en la última campaña
muestreada, la zona subtropical mantuvo la misma prevalencia que el año anterior, el
que fue menor en la zona templada (Figura 5; C). La incidencia máxima para CSS en
la zona subtropical, se registró en la presente campaña (2012/13), siendo muy superior
al valor determinado en la templada. En la campaña anterior (2011/12) la zona
templada registró el mayor valor, mientras que en la primer campaña los valores
fueron similares para ambas 2 regiones. (Figura 5; D).
c) Muestreos de delfácidos en avena y bordura en la región endémica de MRCV.
Recordando que en la última campaña (2012/13) se apreció un grado diferente de
infestación en la zona norte respecto a la infestación en la zona centro y sur de la
parcela experimental localizada en Suco, Provincia de Córdoba, en la presente
campaña se muestreó la parcela experimental (avena nueva) en dos zonas: norte y
sur, con muestreos en cada una de ellas. Los de la bordura se efectuaron sobre dos
puntos: avena implantada los primeros días de octubre (bordura 2), (bordura 1).
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)
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%)
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14,0 14,0
24,0
13,09,0
0,9
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13,09,0
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cia
Ma
xim
a C
SS
(%
)
10,00
3,00
63,00
8,0010,00
6,2510,00
3,00
63,00
8,0010,00
6,25
Zona Subtropical Zona TempladaC D
A B
16
Se realizaron siete muestreos comenzando la última semana de octubre y el lote se
visitó para tomar muestras de plantas en dos momentos: 1- Durante el
establecimiento de la población de delfácidos, y 2- en febrero, para observar
sintomatología y tomar las muestras para estudios de fitomejora.
Figura 6. Presencia de delfácidos en muestreos de Avena sativa L. y bordura (1: avena guacha y
malezas; 2: avena granada) en parcela experimental de Suco, Provincia de Córdoba, entre el 21 de
octubre y 09 de diciembre de 2013. A.N. Norte: avena nueva norte, A.N. Sur: avena nueva sur.
La siembra de maíz para infección natural se realizó el 09/12/2013, cuando la población
de delfácidos estuvo compuesta en su mayoría por estados adultos, predominando los
macrópteros (adultos con capacidad de dispersión), indicando el fin de la colonización y
comienzo de la dispersión de la misma. A siembra, las poblaciones de delfácidos, en
ambos bloques, fueron muy similares (30 individuos bloque sur y 24 bloque norte).
Se están desarrollando la toma de muestras sospechosas o sintomáticas, para corroborar
relación síntomas-infección (aprox.10) y de muestras al azar de las parcelas elegidas, así
como los análisis serológicos para determinar el porcentaje de infección de MRCV.
2.6. PNCYO 1127045. Obtención y Desarrollo de Germoplasma Experimental y
Cultivares de Oleaginosas
Coordinador: Daniel Alvarez
Unidad Sede: EEA Manfredi
2.6.1. Acción. Búsqueda de resistencia y tolerancia genética en girasol al Sunflower
chlorotic mottle virus (SuCMoV)
Responsable: Fabián Giolitti, [email protected] (IPAVE)
Participantes: F. Giolitti y V. Trucco (IPAVE). M.l Cantamutto y M. Poverene (Univ.
Nac. del Sur). D. Alvarez y D. Cordes (EEA Manfredi)
Se sembraron 14 entradas de girasol compuestas por híbridos entre materiales silvestres
y destacados del banco de germoplasma de la EEA-Manfredi, más un control de
inoculación (híbrido susceptible al virus, Advanta). Las semillas fueron sembradas a
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A.N. Norte A.N. Sur Bordura 1 Bordura 2
294 302 308 322 331 336 342
Fecha (días julianos)
0
25
50
75
100
125
150
Nº
de
de
lfá
cid
os
2324
51
30
14
7
2324
51
30
14
7
A.N. Norte A.N. Sur Bordura 1 Bordura 2
21 oct 29 oct 04 nov 18 nov 27 nov 02 dic 09 dic
Fecha (calendario)
17
campo, en macetas protegidas en jaula anti-insectos. Cuando todas las plantas
presentaban el primer y/o segundo par de hojas verdaderas bien desarrolladas se las
inoculó mecánicamente usando una pistola a presión (5-8 bar). Como inóculo se usó un
extracto de hojas de girasol con síntomas sistémicos de la enfermedad, macerado 1/10
en tampón de inoculación (0.01M Na2HPO4, pH 7 + 0.1% Na2SO3) y filtrado con gasa.
Se adicionó carburo de silicio como abrasivo. Muestras del material inoculado fueron
evaluados serológicamente (DAS-ELISA) 30 días después de la inoculación, para
establecer si la sintomatología observada era causada por el SuCMoV y para descartar
que las plantas inoculadas para asintomáticas estuvieran crípticamente infectadas. Los
porcentajes de infección variaron entre 33 a 100%, detectándose la manifestación de dos
tipos de síntomas diferenciales (común y atenuado) (Figura 1) y plantas inmunes a la
enfermedad (Tabla 1). Las plantas asintomáticas (inmunes) podrían actuar como fuente
de resistencia/tolerancia genética a la enfermedad.
Tabla 1: porcentajes de infección y tipo de síntoma por entrada de girasol evaluada.
ID
Nº pl. sin síntomas / Nº de pl.
evaluadas
Nº pl. síntomas común
Nº pl. con
síntomas atenuado
% de infección
1 1/7 - 6 85,71
2 0/2 - 2 100
3 1/9 7 1 88,89
4 3/7 2 2 71/43
5 0/8 4 4 100
6 0/10 10 - 100
7 0/8 6 2 100
8 2/10 - 8 100
9 1/10 2 7 100
10 4/5 - 1 80
11 1/6 - 5 83,33
12 1/10 - 9 90
13 0/10 1 9 100
14 2/3 - 1 33,33
Control 0/20 20 - 100
Figura 1: plantas de girasol inoculadas con el SuCMoV a) síntoma común y b) síntoma atenuado.
a b
18
2.7.PNFRU 1105072. Generación y desarrollo de tecnologías para minimizar el
riesgo de introducción de plagas cuarentenarias ausentes y asegurar el manejo
eficiente de plagas cuarentenarias presentes Coordinador: Mirta Rossini
Unidad Sede: EEA Alto Valle
2.7.1.Acción. Estudio epidemiológico del patosistema Plum pox virus en frutales de
carozo de San Juan y Mendoza
Responsable: Angélica Dal Zotto [email protected] (IPAVE)
Participantes: J.M. Raigón, D. Marini, R. Farrando, L. Porcel, E. Mazzitelli y M.
Rossini
Estudios epidemiológicos del virus de la enfermedad de sharka, se continuaron en San
Juan según lo planteado en la cartera 2009, mediante los relevamientos de fincas
productoras de ciruelo japonés Prunus salicina susceptible a Plum pox virus
seleccionadas en 2009. Además, en esta línea, se incorporó un estudio similar en un
monte de ciruelos europeos Prunus domestica cv D´agen de la localidad de San Rafael
en Mendoza.
Los objetivos de esta acción son:
1-Estudiar la dispersión espacial y temporal del virus PPV en montes de ciruelo
susceptibles por análisis serológicos (DAS-ELISA), identificados alrededor de áreas
donde el virus ha sido detectado previamente.
2-Identificar las especies vectoras de PPV involucradas en la dispersión del virus.
Muestreo de fincas de ciruelo japonés en San Juan. El área de trabajo se ubicó entre
los 10 a 40 km del área foco inicial de infección (Dpto Pocito), determinándose en
función de la presencia de fincas con ciruelos en producción, cuatro zonas o áreas de
relevamiento:*Zona Norte: Dpto Albardón (cuatro fincas), *Zona NO: Dpto Ullúm
(una finca)*Zona NE: Dpto San Martín (dos fincas) *Zona Oeste: Dpto Zonda (dos
fincas). Se implementó el muestreo jerárquico propuesto por Hughes et al. 2002, al cual
se le realizaron modificaciones y las plantas se analizaron para PPV mediante DAS-
ELISA. Por cada finca se delimitaron lotes de 400 plantas y se tomaron 100 plantas en
grupos de cuatro (cuadrado de 2 x 2), lo cual constituyo 25 unidades experimentales
(u.e) por lote. Se evaluaron nueve lotes en total.
Análisis estadístico aplicado al estudio de la incidencia de sharka. Para evaluar la
incidencia de sharka en los lotes muestreados se consideró cada nivel jerárquico
establecido por separado. Se determinaron lotes positivos para PPV y se estimó la
incidencia del virus mediante tablas de contingencia en dos niveles jerárquicos: 1º nivel
entre grupos de árboles dentro del lote, y 2º nivel jerárquico, entre todos los grupos de
todos los lotes (225 grupos) (entre lotes), utilizando el software estadístico InfoStat.
Los resultados del análisis realizado en 2013 indicaron:
o Nivel jerárquico entre grupo de árboles dentro del lote: Los análisis serológicos
por DAS-ELISA efectuados en 2013 en las fincas seleccionadas, indicaron la presencia
de PPV en ciruelo Prunus salicina cv Red Beauty, en los lotes que ya habían resultado
positivos para PPV en 2012. De los nueve lotes evaluados, dos resultaron positivos (11
u.e) pertenecientes al dpto Albardón, uno con ocho u.e positivas y el otro con tres u.e
positivas.
19
o Nivel jerárquico entre lotes: involucramos Incidencia en lotes y el número de
grupos a través de todos los lotes, utilizando la incidencia entre lotes (225 u.e) que se
mide como la cantidad de grupos enfermos o PPV(+) a través de todos los lotes, sobre
el total de grupos evaluados teniendo en cuenta todos los lotes. Entre todos los lotes
muestreados resultaron 11 unidades experimentales positivas. La incidencia de sharka
entre todos los lotes muestreados el quinto año (2013) (de los cuales dos resultaron
positivos) fue del 0,04.
Relevamiento de vectores en la región NE de San Juan. En trampas amarillas de
agua para insectos, colocadas en la AER del Dpto San Martín, durante la primavera-
verano del 201, para la recolección semanal de áfidos vectores de sharka, se detectaron
las especies de áfidos Myzus persicae, Brachycaudus helychrysi, Aphis craccivora, y
Aphis sp igual que en 2012 . Las mismas son consideradas vectoras de PPV.
En un lote de 750 plantas (marco de plantación de 3 x 4 m), se analizaron todas las
plantas del lote por la técnica de DAS- ELISA (Bioreba) para PPV entre 2007 y 2011.
Los resultados de los análisis serológicos, se tomaron para comparar los niveles de
incidencia de la enfermedad entre los cinco años mediante un modelo generalizado
mixto. Los porcentajes de incidencia acumulados fueron de 2,7 % (2007), 4,5 %
(2008), 6,4 % (2009), 6,9 % (2010) y 8,3 % (2011), Figura 1. El análisis de la
dispersión espacial del virus está siendo evaluado mediante los estadísticos K de Ripley
y Join count.
Figura 1. Incidencia acumulada del PPV durante cinco años de estudio
2.8.PNFRU 1105073. Generación y desarrollo de tecnología para la detección,
seguimiento, predicción, prevención y control de vectores, plagas emergentes y/o
limitantes de la producción frutícola argentina
Coordinador: Gonzalo Segade
Unidad Sede: EEA San Pedro
2.8.1.Acción. Prospección de plantaciones de fruta fina para el estudio de la
presencia de patógenos sistémicos
Responsable: Angélica Dal Zotto, [email protected] (IPAVE)
Participantes: C. Cobello, A. Cardozo
El objetivo de este estudio es evaluar la condición sanitaria de las plantaciones de fruta
fina: frambuesa (Rubus ideaus), mora (Rubus fruticosus), mora hibrida (Rubus
loganobaccus), grosellero (Ribes rubrum),y arándano (Vaccinium sp.) que se producen
2007 2008 2009 2010 2011
Year
0
2
4
6
8
10
Incid
en
ce
(%
)
20
en el sur de Argentina, en la Región de la Comarca Andina de El Bolsón, Lago Puelo,
El Hoyo y Epuyén. Estas especies son susceptibles a patógenos que producen
enfermedades sistémicas afectando la producción, rendimientos y cosecha de frutos.
En diciembre de 2013, se realizó un relevamiento de fincas de la localidad de El
Bolsón, en las cuales se encontraron plantaciones de moras y frambuesas con síntomas
de clorosis internerval, y generalizada en forma de manchones entre las filas. Se
tomaron muestras a los fines de evaluar la presencia de patógenos virales.
2.8.2.Acción. Prospección de los viroides Peach latent mosaic, Apple scar skin y
Peach latent mosaic en manzanos, perales y duraznos en Argentina
Responsable: Claudia Nome, [email protected] (IPAVE)
Los viroides Apple scar skin viroid (ASSVd) y Pear blister canker viroid (PBCVd),
afectan a cultivos de manzano y peral, disminuyendo la calidad comercial de sus frutos
y reduciendo la vida útil de los árboles. Ante el informe de SENASA de su primera
detección en la provincia de Río Negro por parte del INTA, en el año 2011, se inició un
trabajo conjunto entre ambos organismos, con el objetivo de verificar la condición de
estas plagas consideradas, hasta ese momento, cuarentenarias ausentes para la
Argentina. En este marco, personal de SENASA realizó el muestreo sistemático de
hojas en cultivos de peral y manzano, en las principales zonas productoras de estas
especies, durante los meses de marzo de 2012 y febrero y marzo de 2013. Las muestras
fueron analizadas en el Instituto de Patología Vegetal del INTA. Se tomaron en total
278 muestras (127 en 2012 y 151 en 2013), distribuidas en las provincias de Mendoza
(108), San Juan (ocho), Río Negro (140), Neuquén (doce) y Misiones (diez).
Diecinueve muestras de peral, resultaron positivas para PBCVd en las provincias de
Mendoza, San Juan y Río Negro y cuatro fueron positivas para ASSVd en San Juan y
Río Negro, en tanto que tres muestras de manzano resultaron positivas para ASSVd en
Mendoza. De acuerdo con estos resultados, se modificó la condición fitosanitaria
relativa a los viroides ASSVd y PBCVd en la Argentina, que actualmente se consideran
plagas presentes.
2.8.3. Acción. Diagnóstico de enfermedades del Pecán
Responsable: Claudia Nome, [email protected] (IPAVE)
El cultivo del pecán es relativamente reciente en la República Argentina, pero su
superficie cultivada se expande rápidamente, localizándose en regiones templadas con
abundantes precipitaciones como el litoral argentino, la pampa húmeda y el NOA. El
inicio del cultivo ha significado también la aparición de enfermedades relacionadas con
el mismo. Durante 2012 se comenzaron los estudios de una nueva sintomatología
observada en los pecanes de a región de La Plata (Figura 1). Este material fue analizado
por personal del IPAVE y se concluyó que la patología no era de origen viral. Las
corridas electroforéticas en geles de poliacrilamida confirmaron la presencia de un
viroide. En el marco de una pasantía, con el Prof. Ricardo Flores de la Universidad
Politécnica de Valencia, España, se trabajó en este tema, y se concluyó que se trata de
un nuevo viroide. Los estudios se están realizando en forma conjunta. Debido a la
relevancia que presenta este cultivo para el país y la inexistencia de estudios realizados
sobre estas sintomatologías se plantea abordar su estudio y dilucidar su importancia.
21
.. Figura 1. Hojas de pecán infectados con el viroides en estudio. Con síntomas de clorosis y
mosaico cálico
2.8.4. Acción. Viroides de la vid
Responsable: Claudia Nome, [email protected] (IPAVE)
En diferentes países se han reportado cinco viroides en el cultivo de vid: Grape vine
yellow speckle I y II (GYSVd I y II) y Australian grapevine viroid (AGVd), exclusivos
del cultivo de vid, y una variante del Hop stunt viroid (HSVd-g) y Citrus exocortis
viroid (CEVd-g) que están dispersos en diferentes cultivos.
La coinfección de GSVd I y II ocasiona la enfermedad de la mancha amarilla (Yellow
speckle disease) que suele causar síntomas de puntos amarillos o manchas amarillas
dispersas en las hojas. El problema se acrecienta frente la presencia del virus Grapevine
fanleaf, al coexistir los tres agentes infecciosos ocurre un sinergísmo que deriva en un
severo daño en las nervaduras de las hojas.
Los viroides CEVd y HSVd, si bien producen infecciones asintomáticas en el cultivo
de vid, pueden infectar otros cultivos como cítricos y hortícolas, es por ello que se
considera de esta manera fuente de difusión a cultivos anexos.
La transmisión de estos agentes se produce principalmente por daños mecánicos, como
por ejemplo herramientas de cosecha. Los viroides GYSVd I y II, AGVd, y CEV
pueden ser transmitidos por semilla.
En Argentina, se han detectado los viroides Citrus exocortis viroid (CEVd), Hop stunt
viroid (antes Citrus viroid II) en citricos, no obstante la presencia de los mismos en vid
no ha sido evaluada aún. Resta realizar estudios de dispersión y severidad de los
aislamientos locales detectados, y evaluar la existencia de los restantes. Para lograrlo se
cuenta con un plásmido con los insertos de AGVd, HSVd y GYSVd. A partir del mismo
se realizará una polisonda. También se cuenta con sonda para CEVd. Esta línea se
planea ejecutar conjuntamente con SENASA. Los muestreos no se han ejecutado aún.
Durante el 2013 se recuperó el plásmido con la sonda enviado por el Dr. Zhang
Zhixiang del Instituto de protección vegetal, Beijing, China. El plásmido fue enviado
sembrando una microgotagota de DNA plasmídico sobre un papel de filtro whatman. A
partir del mismo, se purificó el DNA sembrado, se clonó, multiplicó y purificó. En el
2014 se elaborará la sonda con el kit de DIG-RNA probe de Roche.
2.8.5. Acción. Evaluación de la tolerancia frente a Verticillium dahliae de
variedades de olivo e identificación molecular de materiales promisorios
Responsable: María Laura Otero, [email protected] (IPAVE)
Participantes: L. Otero (IPAVE), L. Torres, R.Taborda, V. González.
22
Una de las estrategias de manejo de la verticilosis consiste en la utilización de
variedades tolerantes. La evaluación del comportamiento varietal requiere el empleo de
técnicas de diagnóstico altamente sensibles y específicas.
Se ajustó la técnica de análisis mediante PCR en tiempo real, qPCR – TaqMan para la
detección de V. dahlieae en olivo.
La mezcla de la reacción de PCR se compuso por: Real master mix Buffer 2X (Applied
Biosystems), Vdf 1 uM, Vdr 1 uM, sonda TaqMan 0,1 uM, ADN 2 ul, agua 3 ul en un
volumen total de 20 µl.
Los iniciadores utilizados para la amplificación fueron los citados por Bilodeau
(2012):Vd-FCGTTTCCCGTTACTCTTCT y Vd-R GGATTTCGGCCCAGAAACT; la
sonda: Vdhrc FAM [5′ 6-FAM] CACCGCAAGCAGACTCTTGAAAGCCA [3′
IB®FQ-ZEN] (IDT-Integrated DNA Technologies).
Se ajustaron algunos parámetros a las condiciones de trabajo de laboratorio, como la
concentración de la sonda que se fijó en 0,1 µM. Las condiciones de ciclado que se
utilizaron fueron: 95° C por 10min; y 55 ciclos de 95 °C por 15 seg, 60°C por 45 seg.
Las pruebas se realizaron en un termociclador Corbett Rotor Gene 6000.
Para la validación del método de qPCR se consideraron los parámetros de: selectividad,
límite de detección, límite de cuantificación, rango de linealidad.
Se realizó la curva de calibración mediante diluciones seriales de ADN del hongo
correspondientes a 1000 pg, 100pg, 10 pg, 1 pg , 100 fg, 10 fg y 1 fg, comprobando
que la eficiencia de los iniciadores es de 94% con un R^2 de 0.99799, el límite de
linealidad llega hasta 100 fg de ADN templado partiendo al menos menos de 1ng. El
límite de detección se observó en 10 fg que fue cuando comenzó a existir variabilidad
en las mediciones.
El método ajustado resulta altamente sensible y específico en el diagnóstico de V.
dahliae en pruebas de comportamiento varietal, como así también en diagnóstico de
materiales de vivero.
Referido a las pruebas de comportamiento varietal, se comenzó a trabajar con la
inoculación de plantines de olivo con V. dahliae.
Los muestreos para identificación de materiales promisorios se realizaron en el
departamento Cruz del Eje, Pcia de Córdoba. Los huertos prospectados de las
localidades de Media Naranja, Las Playas, Paso Viejo y Guanaco Muerto, fueron
elegidos según su composición varietal heterogénea y manejo cultural tradicional. Se
detectaron, marcaron y geo referenciaron diez plantas/genotipo de olivo de buen estado
sanitario respecto de las próximas con severos síntomas de verticilosis.
Las plantas/genotipos promisorios fueron identificados provisionalmente bajo la
denominacion varietal de: Arauco, Arbequina, Manzanilla, Manzanilla Gigante,
Frantoio, Farga y Nevadillo.
De un total de 30 estacas semileñosas de Farga Las Playas, Farga Romero, Frantoio 4
Soles y Manzanilla Gigante puestas a enraizar bajo condiciones controladas de luz y
temperatura, se obtuvieron al menos 15 plantines con buen desarrollo para realizar las
inoculaciones. Los plantines de cada genotipo/variedad, enraizados se inocularon con
una suspensión de conidios (inóculo) activos Se inocularon siete plantas, cinco por cada
variedad y dos controles con suspensiones del hongo.
Para la inoculación, se cultivó la cepa del hongo en medio caldo papa glucosa (CPG) y
se cultivó a 25 ºC, en agitación a 150 rpm. A los siete días la suspensión obtenida se
cuantificó en la cámara de Neubauer, ajustando el número de conidios por ml de
suspensión a una concentración de 1 x 10 7 conidios/ml. Las plantas se descalzaron y
23
se inocularon mediante inmersión radicular en la suspensión de conidios a una
concentración de 1 x 10 7 conidias/ml durante 30 minutos. (Los controles positivos se
realizaron inoculando con suspensiones de la cepa control de la misma identidad que
las cepas locales, caracterizadas previamente según su severidad y los negativos con
agua estéril). Las plantas inoculadas se colocaron en cámaras de ambiente controlado
(25 ± 4 C). Actualmente se están evaluando los síntomas según escala de severidad y se
observará la evolución de los síntomas durante 10 semanas. La severidad de la
enfermedad se está evaluando según una escala de 0 a 4 de acuerdo al porcentaje de
follaje afectado con síntomas de clorosis, necrosis, marchitamiento y/o defoliación, que
comprende: 0: asintomática; 1: poco severa (33% del follaje afectado); 2:
moderadamente severa (34 al 66% del follaje afectado); 3: muy severa, con defoliación
parcial (67 al 100% del follaje afectado); 4: planta muerta.
2.9. PNHFA 1106072. Desarrollo de plataformas tecnológicas y comerciales,
especializadas para incrementar la competitividad y la sostenibilidad de hortalizas
pesadas diferenciadas
Coordinador: José Luis Burba
Unidad Sede: EEA La Consulta
2.9.1. Acción. Desarrollo de plataformas comerciales especializadas en hortalizas
pesadas diferenciadas. Evaluación de la respuesta de diferentes genotipos de ajo a
la infección con fitoplasmas Responsable: Conci L, [email protected] (IPAVE)
Participantes: S. Lanzavechia (EEA La Consulta), F. Guzmán, A.B. Saavedra Pons, T.
Pérez Grosso. Apoyo técnico: W. Arce y S. Brandimarte (IPAVE).
El mejoramiento del sistema productor de semilla de sanidad controlada en ajo está
orientado a prevenir y controlar cambios en el panorama sanitario de los problemas que,
en las últimas temporadas, han amenazado el estatus de la Argentina. Uno de ellos es la
“Tristeza” causada por fitoplasmas. El estudio del patosistema “tristeza” como
enfermedad emergente está orientado a estudiar la relación huésped/patógeno y sus
vectores, relevar eventuales fuentes de tolerancia de las cultivares INTA y evaluar
métodos de control. El objetivo de este proyecto es evaluar la respuesta de diferentes
genotipos de ajo frente al fitoplasma que produce esta enfermedad en lotes cultivados en
la Estación Experimental Agropecuaria La Consulta (Mendoza). Desde el IPAVE,
nuestro grupo realizó un muestreo de plantas con síntomas sospechosos de infección
con fitoplasmas (enrojecimiento/amarillamiento, declinamiento general de la planta,
pérdida de vigor, entre otros) en el mes de septiembre/2013. Estas plantas provenían de
ajos positivos para fitoplasmas en la campaña 2012. Se trabajó con diferentes grupos
ecofisiológicos (blancos, colorados y morados). De un total de 678 muestras, se
evaluaron un 20% (136 muestras). Para ello se purificó ADN total de cada una de las
muestras y se procedió a analizarlas mediante PCR, utilizando el juego de cebadores
universales para fitoplasmas P1/P7 (Smart et al., 1996) que amplifica un fragmento de
1,8 kb, el cual comprende el gen de la subunidad 16S rDNA casi completa más la
región espaciadora 16S-23S. Como resultado del análisis, un 65% de las mismas se
diagnosticaron positivas.
Otro dato interesante es que, dentro del mismo grupo ecofisiológico, hubo diferencias
en el comportamiento de distintos cultivares frente a la infección, dando los siguientes
24
resultados que coinciden con datos obtenidos por el grupo de EEA La Consulta (Tabla
1).
Tabla 1: Diferentes cultivares de ajo infectados con fitoplasmas
Cultivar Nº de Pl. muestreadas Pl. Infectadas
Blanco Cristal 2 Ninguna
Blanco Perla 1 Ninguna
Blanco Unión 8 1
Blanco Norteño 9 1
Blanco Nieves 2 Ninguna
Colorado Rubí 6 Ninguna
Colorado Sureño 4 Ninguna
Colorado Castaño 16 Ninguna
Morado (chino) 4 3
Killa (chino) 7 6
Los resultados logrados por el grupo de trabajo perteneciente a la EEA La Consulta,
aportan los siguientes datos:
o Las condiciones ambientales de cada año modifican la aparición de síntomas (Figura 1). La
campaña 2013 favoreció la presencia de mayor proporción de plantas con síntomas.
Figura 1: Efecto del “ambiente del año” en la aparición de síntomas de “tristeza” (sobre 430
plantas por cultivar).
o No todos los grupos ecofisiológicos presentaron la misma proporción de síntomas.
Los materiales del grupo IIIb (Blancos Tardíos) presentaron mayores valores y,
dentro de éstos, existieron diferencias entre cultivares, habiendo resultado Nieve
INTA y Perla INTA con mayores proporciones que San Juan 1 y 2 (en selección) y
Blanco A, utilizado este último como material testigo. Unión y Cristal INTA
tuvieron comportamiento intermedio (Figura 2).
o
Figura 2: Proporción de plantas con síntomas de “tristeza” en cultivares del grupo ecofisiológico III b
0
5
10
15
20
25
Perla Nieve Unión Cristal Plata
Pla
nta
s c
on
sín
tom
as (
%)
2012 2013
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
Nieve Perla Unión Cristal San Juan 1 San Juan 2 Blanco A
Pla
nta
s c
on
sín
tom
as (
%)
25
Bibliografia
Smart, C.; Schneider, B.; Blomquist, C.; Guerra, L.; Harrison, N.; Ahrens, U.; Lorenz,
K.; Seemüller, E. and B. Kirkpatrick. 1996. Applied and Envir. Microb., Aug. 1996, p.
2988-2993.
2.9.2. Acción. Relevamiento de enfermedades virales en cucurbitáceas
Responsable: María Cecilia Perotto [email protected] (IPAVE)
Participantes: M. Celli (CONICET-IPAVE), V. Conci (IPAVE)
Se consideró como prioritario conocer cuáles son las enfermedades virales que afectan a
los cultivos de cucurbitáceas en el país. Para ello se realizó un relevamiento que abarca
las principales zonas productoras y las especies de mayor importancia económica.
Los datos recolectados provienen de las provincias de San Juan, Mendoza, Santiago del
Estero, Buenos Aires, Tucumán y Córdoba. Se recolectaron muestras de distintas
especies, con síntomas de virus: de zapallo (28 lotes), melón (8 lotes) y en menor
cantidad sandía y pepino (2 lotes). Los síntomas típicos fueron: mosaicos, decoloración
internerval, reducción del tamaño foliar y deformaciones de distinto tipo (Figura 1). El
tipo y gravedad de síntomas depende mucho de la edad de la planta, siempre los más
severos se observan en hojas jóvenes (Figura 2 A, B). Infecciones tempranas producen
enanismos muy graves, que conlleva aborto floral y/o producción de escasos frutos no
comerciales (Figura 2 C, D). El WMV fue detectado en todas las especies y regiones
analizadas con altos valores de incidencia (94 y 100%); el CMV en melón (C. melo) y
zapallo Veronés INTA (C. maxima) (41%). Se observaron porcentajes muy variables de
incidencia entre lotes sin virus y en otros con 95% de plantas infectadas del PRSV y
ZYMV en zapallo tipo Anco (C. moschata). En todos los casos, los síntomas más
severos se debieron a infecciones mixtas tales como CMV y WMV en melón o WMV,
PRSV, y ZYMV en zapallo (Anco). Es importante el sinergismo como fenómeno
responsable de los mayores daños, muy evidente hacia finales de ciclo de cultivo.
Figura 1. Síntomas en hojas de cucúrbitas infectadas con virus
Síntomas a campo
Ampollas, clorosis y deformación de lámina foliar. Anco infectado con PRSV+WMV+ZYMV
Clorosis internerval. Anco infectado con PRSV+WMV+ZYMV
Ampollas, clorosis y deformación de lámina foliar melón infectado con CMV+WMV
26
Figura 2. Infecciones tempranas primeras hojas verdaderas con síntoma A. Guías nuevas con
síntomas mientras que las hojas más viejas aparentan sanas B. Frutos de plantas infectadas en el
mismo lote. En infecciones tardías los frutos llegan a la madurez sin presentar síntomas C, mientras
que en infecciones tempranas los síntomas son notorios, disminuyendo de forma importante su
calidad y rendimiento D.
2.9.3. Acción. Diferenciación de cultivares de ajo en su respuesta a virus
Responsable: Marcos Celli [email protected] (IPAVE)
Participantes: V. Conci
En búsqueda de cultivares de ajo que presenten resistencia a infecciones virares,
fueron recolectadas al azar un total de 300 muestras de hojas en La Consulta, Mendoza,
perteneciente a los cultivares Killa, Cristal, Norteño, Sureño Castaño, Morado, Plata,
Fuego, Rubi y Gostoso, (30 muestras de cada cultivar). Se evaluaron Onion yellow
dwarf virus (OYDV), Leek yellow stripe virus (LYSV), Garlic virus C (GarVC) y
Garlic common latent virus (GarCLV) mediante DAS-ELISA con reactivos producidos
en el IPAVE (OYDV, LYSV, GarVC) y de BIOREBA SRL Latin America (GarCLV).
En adición, se evaluaron Shallot latent virus (SLV) en cuatro de los cultivares (Killa,
Cristal, Norteño y Sureño) con reactivos de BIOREBA SRL Latin America. Los
resultados encontrados son presentados en la Tabla 1. El LYSV fue detectado en 203
muestras y en todos los cultivares, con valores de incidencia que variaron entre 16,6% y
100%. El OYDV fue detectado en 173 muestras, pero no en los cultivares Norteño y
Sureño. El GarVC se encontró en 57 muestras, de las cuales 30 correspondieron al
cultivar Castaño (100%). El GarCLV se diagnosticó sólo en dos cultivares: Cristal y
Norteño, con 100% de infección en ambos casos. El análisis de SLV realizado en cuatro
de los cultivares mostró que Killa fue el único cultivar infectado y en 100% (30) de las
muestras. Considerando los cinco virus analizados, Sureño fue el cultivar que presentó
menor incidencia viral, seis muestras positivas para LYSV (Figura 1).
A B
C D
27
Tabla 1. Análisis de virus por DAS-ELISA en muestras de ajo
Cultivar
Número de muestras que dieron reacción positivas de 30 muestras
analizadas para cada cultivar
OYDV LYSV GarVC GarCLV SLV
Killa 27 30 1 0 30
Cristal 1 3 10 30 0
Norteño 0 30 1 30 0
Sureño 0 6 0 0 Cero
Castaño 4 16 30 0 -
Morado 30 30 4 0 -
Plata 30 30 8 0 -
Fuego 21 5 0 0 -
Rubi 30 23 0 0 -
Gostoso 30 30 3 0 -
TOTAL 173 203 57 60 30
(-) no fueron analizados.
Figura 1. Número de plantas positivas a los diferentes virus para distintos cultivares de ajo,
mediante DAS ELISA
2.10. PNHFA 1106073. Aumento de la competitividad con sustentabilidad y
equidad social de sistemas productivos de hortalizas frescas diferenciadas
Coordinador: Daniel Kirschbaum
Unidad Sede: EEA Famaillá
2.10.1. Detección de virus en frutilla
Responsable: V. C. Conci, [email protected] (IPAVE)
Participantes: F. Asinari, A.K. Torrico, E.E. Cafrune, C. Lucíani, M.C. Perotto
0
5
10
15
20
25
30
35
OYDV
LYSV
GarVC
GarCLV
SLV
Nº
pla
nta
s p
ositiv
as
Cultivares
28
Los virus son la principal causa de enfermedad sistémica en frutilla. Entre ellos se
destacan, Strawberry mottle virus (SMoV), Strawberry mild yellow edge virus
(SMYEV) y Strawberry crinkle virus (SCV), los cuales son transmitidos por áfidos del
género Chaetosiphon. Trabajos previos demostraron que estos patógenos son causantes
de pérdidas importantes en el rendimiento en infecciones simples, y más aún en
infecciones mixtas. El objetivo de este trabajo fue detectar la presencia de SMoV,
SMYEV y SCV en muestras provenientes de tres regiones de producción: Coronda
(Santa Fe), Lules (Tucumán) y Mar del Plata (Buenos Aires); y en diferentes cultivares
(Camarosa, Fortuna, Camino Real, Festival, Benicia, San Andrea). Las muestras fueron
analizadas mediante RT-PCR con iniciadores específicos. Se detectó SMYEV en
6/11,45/46 y 1/5; SMoV en 7/8, 23/41 y 0/5; y SCV en 2/8, 5/41 y 0/5 plantas
provenientes de Coronda, Lules y Mar del Plata, respectivamente. En los cultivares
Camarosa, Fortuna y Benicia se detectó el complejo viral formado por los tres virus
analizados; en San Andrea y Festival, sólo SMYEV y en Camino Real, sólo SMoV
(Figura 1 y 2). Los resultados obtenidos mostraron la presencia de SMoV y SCV en
Coronda y Lules, mientras SMYEV fue detectado con mayor frecuencia y en las tres
regiones analizadas.
Figura 1. Planta de frutilla infectada con un
complejo viral, junto a una planta sana
Figura 2. Plantas de frutilla con infecciones
mixtas de virus
2.10.2. Acción. Presencia de áfidos y su relación con Strawberry mild yellow edge
virus en plantas de frutilla, en Tafí del Valle, Tucumán
Responsable: V. C. Conci, [email protected] (IPAVE)
Participantes: A. L. Avila, A.K. Torrico, C. Perotto, J. Ortego, R. Lobo
Tucumán es la segunda región productora de frutillas del país, concentrando sus
cultivos en las zonas de Lules y Tafí del Valle. Strawberry mild yellow edge virus
(SMYEV) es uno de los virus de frutilla más comunes y está mundialmente distribuido
en las regiones productoras. Este virus es transmitido por áfidos y fue detectado en
Tucumán, Corrientes, Buenos Aires y Santa Fe desde 2008 (Torrico, et. al. 2012).
El objetivo de este trabajo fue determinar las especies de áfidos presentes en el cultivo
de frutilla y su relación con el virus SMYEV en Tafí del Valle, Tucumán.
Se trabajó en una parcela de 68m x 88m de frutilla variedad Camarosa, ubicada en la
Subestación Tafí del Valle de la EEAOC (26°54’29.97”S - 65°45’49.98”O), durante el
mes de enero de 2011. Se marcaron 50 plantas distribuidas uniformemente en la
parcela, separadas entre sí por cuatro filas y 17 m aproximadamente. Todas las semanas
29
se monitoreó el virus, analizando por la técnica DAS-ELISA un folíolo de cada planta.
Además, se colectaron los áfidos presentes en tres hojas de 25 plantas de las marcadas y
fueron conservados en alcohol 70% hasta su identificación.
Se determinó la presencia del virus SMYEV, el cual mostró una infección inicial del
4% que aumentó hasta un 10% al final del ensayo. También se colectaron áfidos ápteros
en todas las plantas, y todos ellos pertenecieron a la especie Chaetosiphon fragaefolii.
2.10.3. Acción. Obtención de cultivares resistentes a Peste Negra
Responsable: Humberto Debat [email protected] (IPAVE)
Participantes: D. Ducasse, P.M. López Lambertini
Objetivo General: Obtener plantas de lechuga resistentes a la virosis Peste Negra
En el PNHFA061302, se obtuvieron 34 líneas independientes orientadas a la generación
de resistencia a tospovirus en Lechuga. Con 12 de estas líneas se realizaron ensayos de
desafío en el IPAVE. Hasta el momento no se ha identificado ninguna línea con un
comportamiento diferencial a controles no transformados. Sobre estas plantas, se
realizarán diferentes evaluaciones con técnicas de biología molecular para determinar el
número y lugar de inserciones de los transgenes, así como los niveles de transcripción.
Estas actividades se realizarán durante los seis años que dure este proyecto. Si se logra
obtener una línea transgénica que muestre buena respuesta en los ensayos de desafío y
pueda ser considerada como un buen candidato para llegar a instancias superiores en el
camino a la aprobación por CONABIA se articulará con el PNBIO1131024 “Desarrollo
de sistemas alternativos de generación y utilización de variabilidad genética y su
aplicación al mejoramiento de los cultivos”.
2.11. PNHFA 1106074. Bases para la sostenibilidad de las cadenas de la papa y la
batata
Coordinador: Marcelo Huarte
Unidad Sede: EEA Balcarce
2.11.1 Acción. Características epidemiológicas de virosis de batata (Ipomoea
batatas (L.) Lam) en la Pcia. de Santiago del Estero
Responsable: Liliana Di Feo [email protected] (IPAVE)
Participantes: P. Rodríguez Pardina, A. Luque, J. Martino, D. Martinelli. (IPAVE)
La superficie con batata en Argentina experimentó notable reducción, debido a virosis
que causan daños en todas las regiones productoras, como consecuencia del intercambio
indiscriminado de material de propagación y consiguiente ingreso de virus antes no
citados. En Córdoba, el “encrespamiento amarillo”, ocasionado por cuatro agentes
(Sweet potato feathery mottle virus: SPFMV, Sweet potato chlorotic stunt virus:
SPCSV-WA; Sweet potato virus G: SPVG; Sweet potato leaf curl virus: SPLCV)
ocasiona mermas de rendimiento superiores al 90% con alta prevalencia e incidencia de
los patógenos involucrados. Para determinar características epidemiológicas de las
virosis de batata en Santiago del Estero, se muestrearon al azar seis lotes con diferentes
cultivares y procedencias, que fueron analizados serológica y molecularmente para
cinco virus, uno de ellos ocasionalmente detectado en la actualidad, pero que fuera
agente etiológico del “enanismo clorótico” en los ´90: Sweet potato mild speckling virus
(SPMSV). Todos los lotes estuvieron infectados con SPFMV, SPVG y SPLCV; en
30
tanto que SPCSV tuvo una prevalencia del 83,3% y SPMSV del 16,7%. SPVG y
SPFMV fueron los de mayor incidencia (86,5 y 82%), seguidos de SPCSV (43,7%),
SPLCV (25%) y SPMSV (8%). El grado medio de severidad de síntomas (GMS) (en
una escala de cuatro grados) fluctuó entre 1,36 y 2,36 y el de infección (escala de cinco
grados), entre 1,85 y 3,17. Registros más altos de GMS correspondieron a lotes con
mayor frecuencia de SPFMV y SPCSV. No existió correlación entre severidad y
presencia de SPLCV, que produce patologías asintomáticas. Por su efecto sinergizante,
SPCSV en infecciones mixtas con potyvirus, fue el responsable de una expresión
sintomatológica más severa. (Tabla 1, Figura 1).
El grave panorama de virosis en batata de Santiago del Estero indica la urgente
necesidad de plantación de material saneado. Tabla 1. Grado medio de severidad de síntomas (GMS) e incidencia de los diferentes virus
(SPFMV, SPCSV, SPLCV, SPVG, SPMSV) evaluados en seis lotes de Santiago del Estero
Lote GMS SPLCV (%)
SPCSV (%)
SPMSV (%)
SPFMV (%)
SPVG (%)
1 2,12 23,08 100 0 84,62 92,31
2 2,36 18,18 90,91 0 90,91 100
3 1,62 7,69 84,62 0 61,54 92,31
4 1,36 28,57 100 42,86 85,71 100
5 2,06 22,22 77,78 0 100 77,78
6 2 100 100 25 100 100
media 33,29 92,22 11,31 87,13 93,73
Figura 1. Síntomas de virosis en los cvs. Arapey INIA (A), Colorada Criolla (B) y Morada Selecta
(C). Santiago del Estero
2.11.2 Acción. Estimación de daños causados por un complejo viral en batata en
Argentina
Responsable: Liliana Di Feo [email protected] (IPAVE)
Participantes: P. Rodríguez Pardina, A. Luque, J. Martino, D. Martinelli. (IPAVE)
El “encrespamiento amarillo” (EA), a diferencia de las anteriores virosis que se
presentaron en Argentina, se encuentra diseminada y causa daños en todas las regiones
productoras argentinas. Para cuantificar de manera precisa el efecto del EA sobre la
producción y, dada la posibilidad de variaciones dentro de un mismo genotipo, se
diseñó un ensayo a partir de una planta del cv Arapey INIA, obtenida por cultivo de
meristemas (Figura 2). En ella se determinó ausencia de virus mediante pruebas
biológicas, serológicas y moleculares, para luego clonarla hasta obtener 200 plantines.
La mitad de los mismos se injertó con púas de plantas con EA. El diseño experimental a
A B C
31
campo (bloques completos al azar) incluyó dos tratamientos: sanas vs enfermas y tres
repeticiones. Existieron diferencias significativas para los componentes de rendimiento,
excepto para número de guías. El daño potencial fue: 71% (peso y número de raíces
comerciales, respectivamente); 67% (peso total de raíces); 58% (peso fresco aéreo);
57% (número total de raíces) y 41% (área foliar) Figura 3. Complementariamente, se
evaluó el efecto del complejo viral sobre calidad de raíces reservantes, con diferencias
significativas para contenido de carotenos totales (1,43 vs 0,90 mg/100g PF en plantas
sanas vs enfermas), pero no para capacidad antioxidante y contenido de fenoles totales.
Se corrobora la importancia de la nueva enfermedad viral en la región productora de
batata de Santiago del Estero, debido a las significativas pérdidas potenciales que
ocasiona y por la disminución de calidad en raíces comerciales.
Figura 2. Ensayo comparativo de rendimientos. Batata cv. Arapey INIA: plantas crónicamente
enfermas con «encrespamiento amarillo» (atrás) vs. plantas libres de virus (adelante)
Figura 3. A: Rendimiento de 10 plantas libres de virus (izq.) vs. 10 plantas con «encrespamiento
amarillo» (EA) (der.). B: Contenido de β-carotenos en raíces de batata libre de virus (izq.) vs.
raíces con EA (der.)
2.11.3. Acción. Obtención de plantines de batata de sanidad controlada en
Argentina
Responsable: Liliana Di Feo, [email protected] (IPAVE)
Participantes: P. Tolocka (IPAVE)
La batata posee demanda mundial creciente por ser alimento saludable para el hombre y
por su cultivo “amistoso” con el ambiente. Sin embargo, en Argentina, hubo una
drástica reducción de la superficie plantada debido, principalmente, a la creciente
diseminación de complejos virales, que causan mermas significativas en rendimiento y
A B
32
calidad de raíces reservantes. Esta hortícola se propaga vegetativamente mediante
plantines procedentes de diferentes regiones, lo que favorece el ingreso, dispersión y
acumulación viral, ocasionando su progresiva desaparición en zonas históricas de
cultivo. Para revertir esta grave situación, en IPAVE, se continúa con la producción de
plantines de sanidad controlada, obtenidos por cultivo in vitro de meristemas (Figura 4).
En la actualidad, ocho cultivares están siendo micro y macropropagados (en
invernadero y bajo jaulón anti-insectos) y el control sanitario se realiza por pruebas
biológicas, serológicas y moleculares. Hasta el presente, se logró la liberación completa
de Sweet potato feathery mottle virus, Sweet potato virus G, Sweet potato virus C, Sweet
potato chlorotic stunt virus y Sweet potato leaf curl virus en tres cultivares. Los
plantines fueron entregados a productores de Colonia Caroya, Córdoba (asesorados por
docentes de la Escuela de la Familia Agrícola e investigadores del IPAVE) y Corrientes,
quienes los multiplican bajo jaulones anti-insectos. El empleo de plantines de sanidad
controlada debe continuarse en el tiempo, complementarse con adecuado manejo
cultural y adoptarse como práctica corriente y generalizada en la región de cultivo. Es
importante destacar que el cultivo in vitro constituye la puerta de entrada para que la
batata recupere su relevante posición entre los cultivos hortícolas del país y, también,
que debe evitarse el ingreso de material de propagación desde otras zonas, que favorece
la dispersión inadvertida de virus. El de la Pcia de Córdoba constituye un modelo a
seguir para la recuperación de un cultivo tradicional, en el que se mancomuna el trabajo
de investigadores, docentes y productores.
Figura 4. Micropropagación in vitro de meristemas de batata (A) y multiplicación en túneles
dentro de jaulón anti-insectos en el IPAVE (izq.) y en la EFA Colonia Caroya (der.) (B).
2.11.4. Acción. Progreso de Potato leafroll virus y Potato virus Y en relación con
áfidos en cultivo de papa
Responsable: V.C. Conci, [email protected] (IPAVE)
Participantes: A.L. Avila, M.C. Perotto
Potato virus Y (PVY) y Potato leafroll virus (PLRV), son transmitidos por áfidos y
responsables de importantes disminuciones en los rendimientos en papa. El objetivo de
este trabajo fue evaluar los áfidos en el cultivo de papa en Tucumán y la incidencia de
PVY y PLRV. Se colectaron semanalmente, durante dos ciclos de cultivo, áfidos alados
con trampas amarillas de agua y ápteros mediante golpes de plantas. Ademas, se evaluó
la incidencia de PVY y PLRV para cada fecha de muestreo. Para cada virosis se elaboró
una curva de progreso de la enfermedad (CPE). Se probaron modelos estadísticos y,
teniendo en cuenta el criterio de información de Akaike (AIC) se eligió el que mejor las
describe. Se colectaron 9.024 áfidos alados pertenecientes a 40 taxa y 1.346 ápteros de
A B
33
cuatro especies. Se detectó un incremento constante de plantas infectadas con PVY los
dos años de ensayo, llegando a 66% el primer año y 81% el segundo. Gompertz fue el
modelo que mejor ajustó. En cambio el porcentaje de plantas infectadas con PLRV
aumentó hasta la decima semana de muestreo, luego describió una meseta y alcanzó una
incidencia del 15% el primer año y 31% el segundo. El modelo monomolecular fue el
que mejor ajustó la CPE para este virus. Los áfidos detectados en los primeros
muestreos fueron más abundantes en el segundo año, lo que se vio reflejado en las
diferencias de porcentaje de plantas infectadas. Los estudios de correlación entre los
vectores y los virus permitirán desarrollar estrategias de manejo de la enfermedad en el
cultivo.
2.11.5. Acción. Primer reporte de especies de áfidos en el cultivo de papa en
Tucumán
Responsable: Ávila, Ana Lucía [email protected]
Participantes: J. Ortego (EEA Mendoza) y V.C. Conci (IPAVE)
Los áfidos son reconocidos como importantes plagas en todo el mundo y su importancia
radica en ser uno de los principales vectores de virus. Es necesario conocer las especies
en un agroecosistema a fin de desarrollar estrategias de manejo del cultivo adecuadas.
Hasta el año 2010, se habían citado en Tucumán, Argentina, 65 especies de áfidos
asociados a diversos cultivos. El objetivo de este trabajo fue establecer si existen
especies de áfidos en la provincia que no habían sido citadas anteriormente. Se
monitorearon áfidos alados con trampas amarillas de agua tipo Moericke ubicadas en
parcelas de papa, durante dos temporadas, en tres regiones de Tucumán. Los individuos
colectados semanalmente fueron identificados utilizando diversas claves taxonómicas.
Se determinaron 47 especies, de las cuales 17 y el género Illinoia son mencionadas por
primera vez en la provincia. Todas estas especies pertenecen a cuatro subfamilias dentro
de la familia Aphididae. Aphidinae fue la subfamilia más numerosa, con 10 especies
pertenecientes a la tribu Macrosiphini. Los resultados de este trabajo indican que los
áfidos expanden constantemente su distribución, por lo tanto estudios faunísticos deben
ser realizados continuamente en las áreas de interés.
2.11.6 Acción. Comparación de técnicas serológicas y moleculares para establecer
protocolos de diagnóstico para tospovirus en la certificación de papa semilla. Las
técnicas se adaptarán para tubérculo y hoja produciendo un protocolo
Responsable: Paola M. López Lambertini, [email protected] (IPAVE)
Participantes: N. Puyané (IPAVE), A.E. Salvalaggio (EEA Balcarce)
La incidencia de tospovirus en papa fue aumentando desde el 2006 hasta llegar a una
gran epifitia en la campaña 2009-10 con pérdidas económicas importante para el cv.
Spunta en Córdoba y cv. Innovator en el sur Buenos Aires. Se determinó un
distribución diferencial de especies de tospovirus siendo Groundnut ringspot virus
(GRSV) el agente causal en la región productora de Córdoba y Tomato spotted wilt
virus (TSWV) en la Buenos Aires. Actualmente, las papas semilla no se evalúan para
tospovirus. Se están optimizando técnicas serológicas y moleculares para establecer
protocolos de diagnóstico de tospovirus en papa.
34
2.12. PNHFA 1106075. Desarrollo de bases tecnológicas para el aumento de la
competitividad con sostenibilidad de las Legumbres en Argentina
Coordinador: Susana García Medina
Unidad Sede: EEA Salta
2.12.1. Acción. Técnicas de manejo y control integrado de enfermedades y plagas,
validación de técnicas y variedades por ambiente. Control integrado de mosca
blanca como vector de geminivirus y carlavirus. Sistema de monitoreo de plagas y
enfermedades emergentes
Responsable: Susana García Medina, [email protected]
Participantes: M.F. Mattio, V. Alemandri, G. Truol (IPAVE).
Aportan a esta línea los resultados obtenidos en el proyecto específico PNPV 1135024
con el cual se articula. Durante el transcurso de este año, se estableció el contacto con
los profesionales de la EEA INTA-Cerrillos Salta con los cuales se acordó la realización
del ensayo, además de realizar la detección de geminivirus y carlavirus por serología y
amplificación por PCR en el ensayo establecido. Se fijaron los lineamientos a seguir
respecto a los momentos de muestreo de moscas blancas y de la aplicación de
insecticidas, registrando producto, dosis, cultivares de poroto y estado fenológico en el
cual debe realizarse la recolección de las hojas de poroto con síntomas de virus.
2.12.2. Acción. Identificación y caracterización de virus de poroto presentes en el
NOA y elaboración reactivos de diagnóstico
Responsable: Patricia Rodríguez Pardina, [email protected]
Participantes: R.E. Campos, L.M. Gerónimo, I.G. Laguna
Evaluación de cultivares y líneas experimentales de poroto frente a infecciones
naturales de virus.
Este ensayo se llevó a cabo en el IIACS. Se evaluaron seis líneas experimentales: Exp
01, 02,03,04,05 y 06 y cinco cultivares de poroto: Leales 15 INTA (L15), Leales 17
INTA (L17), Leales 24 INTA (L24), Leales 22 INTA (L22) y Alubia Cerrillo (Testigo
susceptible) en un ensayo según diseño de bloques completos al azar, con tres
repeticiones. Las determinaciones se efectuaron en los dos surcos centrales de los cuatro
que conformaban cada parcela. En floración, se evaluó la sintomatología, según escala
propuesta por el Centro Internacional de Agricultura tropical (CIAT), que incluye
rangos desde 1= síntomas ausentes a 9= muerte de las plantas. Además se recolectaron
10 muestras/parcela con el fin de evaluar, mediante serología o sondas de hibridación
molecular, la incidencia de los siguientes virus: Cowpea mold mottle virus (CpMMV),
Bean yellow mosaic virus (BYMV), Southern bean mosaic virus (SbMV), Cucumber
mosaic virus (CMV), Alfalfa mosaic virus (AMV), y geminivirus
En general, los síntomas observados variaron según cultivar, los más susceptibles
presentaron clorosis generalizada, marcado acortamiento de entrenudos y arrugado de
hojas (Figura 1), mientras que los cultivares tolerantes manifestaron solo mosaico suave
y leve ampollado (Figura 2).
35
Figura 1: Clorosis generalizada, acortamiento de
entrenudos y arrugado de hojas en plantas de poroto
Los cultivares con mejor comportamiento fueron L15 y L24 (tipo negro), que
presentaron grado de severidad 2, según escala propuesta, aunque los análisis
serológicos acusaron hasta 100% de infección con Cowpea mild mottle virus
(CpMMV). Las líneas experimentales 05 (tipo rojo), 04 (Canela) y 06 (Cranberry) y los
cultivares L17 y L22 (blancos), se comportaron como muy susceptibles con valores de
severidad entre 7 y 8. Los restantes genotipos tuvieron una respuesta intermedia (Tabla
1)
En los análisis serológicos y moleculares, se registró la presencia de CpMMV,
geminivirus y CMV, con alta incidencia del primero de los virus mencionados (Tabla
2).
Tabla 1: Evaluación visual del comportamiento de distintos cultivares de poroto frente
a infección natural de virus. Ensayo IIACS Leales, Campaña 2013
Cultivar % de plantas
enfermas Grado de severidad
Síntomas
Exp 06 (Cranberry) 96 8 Enanismo, marcada clorosis y arrugado de hojas
L17 (Blanco) 92.6 7.3 Clorosis, arrugado de hojas, acortamiento de entrenudos, enanismo
L22 (Blanco) 99.3 8 Enanismo, clorosis, disminución del tamaño de folíolos, con posterior necrosis
L15 (Negro) 2.5 2 Mosaico clorótico, , mosaico y ampollado en hojas superiores
L24 (Negro) 1 2 Mosaico y ampollado suave, amarillamiento en algunas hojas
Exp 01 (Blanco) 36.6 4.3 Mosaico dorado, clorosis y ampollado
Exp 02 (Blanco) 58.3 5.3 Mosaico cálico, acortamiento de entrenudos, clorosis y ampollado suave
Exp 04 (Canela) 97.3 8 Marcado clorosis con posterior necrosis, acortamiento de entrenudos y enanismo
Exp 03 (Canela) 42.6 4 Clorosis amarilla generalizada, ampollado de hojas, mosaico cálico.
Exp 05 (Rojo) 86.6 7 Clorosis, marcado arrugado de hojas, necrosis de foliolos y acortamiento de entrenudos
Alubia Cerrillos 100 9 Muerte de plantas
Figura 2: Síntomas suaves de mosaico
suave y ampollado de hojas
36
Tabla 2: Incidencia de virus en distintos cultivares de poroto. Ensayo IIACS Leales,
Campaña 2013
2.13.PNHFA 1106093. Desarrollo y ajuste de tecnologías para una producción
florícola sustentable y de calidad
Coordinador: Diego Mata
Unidad Sede: Inst. de Floricultura
2.13.1. Acción. Obtención de tecnologías y protocolos para el saneamiento de
virosis en plantas ornamentales. Ajuste de tecnologías para la macro y micro
propagación de especies ornamentales. Recomendaciones técnicas para mejorar la
vida de poscosecha de flores y follajes de corte
Responsable: Claudia Nome [email protected] (IPAVE)
En los últimos años han aparecido en la Argentina nuevos orquidiófilos apostando a
esta especie botánica ornamental. Actualmente, el cultivo de orquídeas puede ser un
negocio llamativo. El plantín de orquídea se demora como mínimo tres o cuatro años en
convertirse en planta. Eso sumado a que florecen entre cinco u ocho años más tarde a
que la primera floración es muy débil alcanzando óptimas cantidad de flores y tamaño
de flor tres años más tarde; resulta en una demora de siete a once años para ser una
planta productora de flores comerciales Este es uno de los principales motivos que
encarecen al producto en el mercado.
Es fundamental controlar la sanidad del cultivo, por su gran demora en ser rentable y
por ser, en ocasiones, multiplicado por esquejes. Dentro de los virus que lo afectan, los
más comunes son: Cymbidium mosaic virus (CyMV) un potexvirus monopartito
elongado de aproximadamente 480 nm, transmitido por inoculación mecánica o
contacto entre plantas y Odontoglossum ringspot virus (ORSV) un tobamovirus
elongado rígido con forma de bastón de aproximadamente 300 nm, ambos sensibles
transmitidos por inoculación mecánica. Ambos fueron detectados en el IPAVE en el
año 2010. En esta línea de acción se plantea la producción de reactivos de diagnóstico
Cultivar CpMMV BYMV CMV SbMV Geminivirus AMV
Exp 06 (Cranberry)
73.3 0 6.6 0 76.6 0
L17 (Blanco) 66.6 0 6.6 0 36.6 0
L22 (Blanco) 100 0 3.3 0 70 0
L15 (Negro) 63.3 0 20 0 0 0
L24 (Negro) 53.3 0 10 0 0 0
Exp 01 (Blanco) 66.6 0 6.6 0 10 0
Exp 02 (Blanco) 66.6 0 16.6 0 3.3 0
Exp 04 (Canela) 56.6 0 3.3 0 3.3 0
Exp 03 (Canela) 63.3 0 10 0 3.3 0
Exp 05 (Rojo) 66.6 0 3.3 0 33.3 0
Alubia Cerrillos 53.3 0 20 0 50 0
37
para la detección de los virus mencionados, con el fin de proveer a los productores de
un sistema pertinente a tal fin que les permita trabajar con plantas sanas, incrementando
la calidad y durabilidad del producto.
Figura 1. Oncidium Sahrry Baby infectada con CyMV y ORSV
Figura 2. Planta de Chenopodium quinoa con lesiones locales
del aislamiento CyMV. Multiplicación del inóculo para la
producción de los reactivos de diagnóstico
Durante el año 2013 se multiplicó el inóculo de CyMV. Se inocularon cuatro lotes de 50
plantas de Chenopodium quinoa, logrando hasta el momento 150 g de hojas infectadas.
2.14. PNIND PI 1108071. Estrategias de manejo de sistemas productivos resilientes
Coordinador: Alejandro Rago, [email protected]
Unidad Sede: IPAVE
Se llevaron a cabo reuniones de articulación entre los participantes de los Proyectos
Específicos componentes, en primera instancia para consensuar las acciones a llevar
adelante, articulando con los Proyectos Regionales con enfoque territorial. Una vez
puesto en marcha el Integrador se realizaron reuniones en cada una de las unidades
sedes de los participantes.
Reuniones y talleres de elaboración de los proyectos de la nueva cartera INTA
2013/2019.
38
Tucumán 19/02/13
Córdoba 21/02/13
Corrientes 05/03/13
Resistencia 06/03/13
Reunión Comité de Coordinadores del PNIND – Tucuman 21/05/13
Reunión con responsables de módulos del PE PNIND1108072. Córdoba 04/06/13
Reunión técnica / gestión y seguimiento de mandioca. Montecarlo. Misiones. 16-
17/07/13
Reunión técnica / gestión y seguimiento de yerba mate. Apóstoles. Misiones. 19/07/13
Reunión de gestión y seguimiento caña de azúcar. Famaillá. Tucumán. 20/08/13
Reunión de gestión y seguimiento tabaco. Salta. 21/08/13
Presentación del Integrador a los Directores de Centros Regionales. Buenos Aires
24/10/13
Reunión de gestión y seguimiento maní. Marcos Juárez. 29/10/13
2.15. PNIND 1108072. Epidemiología de plagas y enfermedades en cultivos
industriales con enfoque al desarrollo de estrategias de manejo integrado
Coordinador: Eva Cafrune, [email protected]
Unidad Sede: IPAVE
2.15.1. Acción. Implementación de cuarentena sanitaria para germoplasma de
caña de azúcar como un servicio estratégico para los programas de mejoramiento
genético
Responsable: Eva E. Cafrune, [email protected] (IPAVE)
Participantes: P.D. Fontana, S.G. Pérez Gómez
Se incorporaron variedades del Programa de Mejoramiento de la Red Caña a un predio
cuarentenario de exportación. Las mismas fueron 01-1505; FAM 81-77; FAM 01-1355;
FAM 91-209; 85-5; FAM 89-686; 01-13-55; FAM 81-820; RA 87-3; FAM 01-1505;;
96-578; 98-828; FAM 96-578. En el marco de la implementación del Servicio de
Cuarentena para la Red Caña, se realizó una capacitación en el CIRAD, sobre
“Diagnóstico molecular de enfermedades cuarentenarias en caña de azúcar”,
estableciéndose además el contacto con profesionales de los Planes de Mejoramiento y
de investigación del CIRAD, con el Servicio de Cuarentena Visa Cane (Francia) y con
profesionales de la Cámara Nacional de las Industrias Azucarera y Alcoholera de
México. Se están realizando los trámites con el Servicio de Cuarentena del SENASA
para la validación del predio cuarentenario de Exportación y de Importación.
2.15.2. Acción. Estudios epidemiológicos de organismos perjudiciales que afectan
a cultivos comerciales y semilleros de caña de azúcar en zonas tradicionales y no
tradicionales
Responsable: Sergio Pérez Gómez (EEA Famaillá)
Participantes: E. Cafrune, L. Conci, J. Pompilio Chesani, C.M. Espindola, V. Quevedo,
P.D. Fontana, M.A. Sosa, H. Babi, C. Flores, M.F. Cracogna, S. Perez Gómez, R.N.B.
Sosa.
El síndrome del amarillamiento foliar causado por el Sugarcane yellow leaf virus
(SCYLV), es una de las enfermedades más estudiadas, causando pérdidas de
39
producción y calidad de jugos. En Argentina se detectó en cultivos de caña de azúcar
por Tissue Blot Immunoassay y en estudios realizados a nivel molecular, detectándose
el genotipo BRA-PER. El SCYLV no siempre es sintomático, por lo que el objetivo del
presente trabajo fue evaluar plantas sintomáticas y asintomáticas de lotes comerciales de
caña de azúcar. Muestras de hojas +1 de lotes comerciales de las variedades LCP 85-
384, CP 65-357 y RA 87-3 de Famaillá, Tucumán, fueron utilizadas para la extracción
de RNA total. El mismo fue empleado como templado en RT-PCR con iniciadores
específicos para los genotipos BRA-PER, CUB y REU. Los RT-PCR se realizaron con
el Kit Access RT PCR System (Promega), de acuerdo a las instrucciones del fabricante.
Los pasos del RT-PCR fueron: 48ºC por 60 min para la transcripción reversa. El
programa de ciclado fue: 30 ciclos a 94º C por 15 seg para la desnaturalización, 64º C
por 30 seg para la hibridación y 68º C por 1 min, para la extensión del fragmento, con
una etapa de extensión final a 68ºC por 7 min. En todas las muestras analizadas sólo se
detectó el genotipo BRA-PER, tanto en plantas sintomáticas como asintomáticas, lo que
demuestra la importancia de la enfermedad en el cultivo. Se continúa trabajando en la
identificación de los otros genotipos virales y en la distribución del patógeno en lotes
comerciales de diferentes áreas de producción.
Financiamiento: Programa Nacional Cultivos Industriales-INTA.
2.15.3. Acción. Caracterización, tácticas y estrategias de manejo de enfermedades
del maní
Responsable: A. Rago
Participantes: I. Cazón; C. Conforto, M. Bisonard, J.A. Paredes.
Ensayo 1: Control biológico
En este ensayo se utilizó Vimel, un fertilizante orgánico y biológico elaborado a base de
vinaza (subproducto de la producción de bioetanol de caña de azúcar), el cual
incrementa la supresividad del suelo. Dicho producto en formulación líquida el año
anterior, en el ensayo de control biológico, mostró diferencias significativas tanto en
incidencia como en severidad respecto a los demás tratamientos y al testigo. Esta
campaña se volvió a probar tanto en pre como en pos emergencia y se agregó al ensayo
su uso en presentación sólida. Dichas aplicaciones fueron acompañadas con Nutricel,
que es un fertilizante foliar a base de P, K, Si, microorganismos y materia orgánica, que
disminuye el estrés en la planta. Otra de las estrategias probadas, fue el uso de bacterias
promotoras de crecimiento (PGPR) y favorecen el desarrollo de la planta,
incrementando la supresividad del suelo. Se incluyeron otros productos en el ensayo, los
que se aplicaron en post-emergencia: Folimix, complejo a base de boro, nitrógeno,
hierro, zinc, manganeso y molibdeno, fertilizante foliar que promueve el buen
desarrollo del tejido vegetal y previene desequilibrios nutricionales y micro carencias;
Stimulate, biorregulador hormonal, el cual mejora el comportamiento de la planta ante
situaciones de estrés, incrementa la retención y el crecimiento de flores y frutos; N-
Boron, fertilizante foliar bórico, participa en la síntesis de la pared celular, se lo
relaciona con la división y crecimiento celular, germinación y regulación hormonal.
Cabe destacar que Folimix fue el de mejor comportamiento, mostrando diferencias
estadísticamente significativas tanto en incidencia como en severidad en el ensayo de
control químico de la campaña 2011/2012.
Ensayo 2: Control químico
En este ensayo se utilizó Stinger (DUPONT) compuesto por Picoxystrobin +
Cyproconazole, fungicida sistémico de acción preventiva y curativa, el cual interviene
40
en los procesos de germinación de esporas, infección y crecimiento de hifas, y Amistar
Xtra (Syngenta) compuesto por Azoxystrobin + Cyproconazole, fungicida sistémico de
acción preventiva y curativa, que al igual que Stinger, interviene en los procesos de
germinación de esporas, infección y crecimiento de hifas, ambos aplicados en dosis
simples y dobles en tratamientos de 1, 2 y 3 aplicaciones una vez iniciado el clavado del
cultivo, separadas en una semana cada aplicación. Este ensayo se planteó de esta forma
ya que en la campaña 2011/2012 ninguno de estos productos dio diferencia significativa
ni para incidencia ni para severidad, comparados con el testigo sin aplicación, por eso se
decidió probar las dos dosis y variar el número de aplicaciones.
Ensayo 3: Combinado
Este ensayo combinó los mejores resultados de los productos evaluados en campañas
anteriores, los cuales lograron controlar al patógeno de manera parcial. El objetivo de
este ensayo fue buscar un posible sinergismo entre dos productos, o sea ver si el
resultado era mayor al obtenido con la suma de las partes. En este ensayo se utilizó el
Vimel, Folimix, Yeso, Stimulate y Stinger. El yeso mejora la estructura del suelo
permitiendo una mayor tasa de infiltración (mejor aprovechamiento del agua), actúa
como acondicionador de suelos y aporta nutrientes esenciales. El mismo fue utilizado
en la campaña 2010/2011 mostrando un mejor comportamiento con respecto a la
dolomita y al testigo. En este ensayo se realizaron todas las combinaciones posibles de
los productos aplicados de a pares.
Ensayo 4: Productos experimentales
En este ensayo el grupo se probó a campo (a pequeña escala), lo que en la campaña
pasada dio muy buenos resultados en ensayos de invernáculos en maceta, que fue la
aplicación de fungicidas curasemillas al suelo. En esa oportunidad se habían probado
los siguientes curasemillas: Carboxim + Tiram, Iconazole + Metalaxil, Metalaxil +
Fludioxonil, Carbendazim + Tiram, Captan y Tiram, y en todos los productos hubo
diferencias significativas con respecto al testigo. Todos disminuyeron la incidencia
entre el 10-15%, teniendo en cuenta que la del testigo fue del 50%. En esta campaña se
utilizó: Dimensión de Chemtura (Ipconazole + Matalaxil), Maxim de Syngenta
(Metalaxil + Fludioxinil), Curasemilla Nova Plus de Nova, (Carbendazim +Tiram),
aplicados en forma individual y en combinación con Ópera de Basf (Pyraclostrobin +
Epoxiconazole) como fungicida foliar. Dichos productos fueron aplicados en el
momento del clavado a horas de la madrugada cuando la planta aún mantenía sus
foliolos cerrados y la dosis empleada fue de 700 ml/ha en todos los casos.
Los resultados muestran que, estadísticamente, los tratamientos planteados en el ensayo
de control biológico alcanzaron una eficiencia de control máxima del 6%,
correspondiendo a los tratamientos donde se empleó Vimel Chemeco sólido más
Nutricel, aplicado en preemergencia y Vimel Chemeco líquido, aplicado en
postemergencia.
Los ensayos de control químico con fungicidas foliares mostraron la mejor eficiencia de
control de la enfermedad, llegando al 41% en el tratamiento con picoxystrobin +
cyproconazole en dosis doble con dos aplicaciones, en la zona de alto inóculo. En
general, todos los tratamientos con fungicidas foliares aplicados en doble dosis
mostraron buenas eficiencias de control de la enfermedad, registrando en la mayoría de
los casos valores superiores al 15%.
En el ensayo de control químico empleando curasemillas aplicados al suelo, la
eficiencia de control llegó al 15% en el tratamiento con iconazole+metalaxil.
41
Los ensayos donde se probó la combinación de estrategias, la eficiencia de control llegó
al 29% (yeso y picoxystrobin+cyproconazole). En la mayoría de los casos, los
tratamientos que mejor comportamiento presentaron fueron aquellos que incluyeron el
fungicida picoxystrobin+cyproconazole. De los tratamientos combinados que no
incluyeron fungicidas se destaca la combinación de Vimel Chemeco y fertilizante foliar
que alcanzó 25% de eficiencia de control.
2.15.4. Acción. Epidemiología de virosis de mandioca en Argentina
Responsable: Liliana Di Feo [email protected] (IPAVE)
Participantes: A. Zanini, A. Luque, P. Rodríguez Pardina, N. Bejerman
Primer informe de virus de mandioca en Argentina. La mandioca, cuarto cultivo
alimenticio en el mundo, es componente básico en la dieta de más de 1.000 millones de
personas. En Argentina, se cultiva en el noreste (29.000ha). Las virosis tienen gran
importancia en la especie, ocasionando daños sobre la producción. Se han citado
aproximadamente 16 virus diferentes y otros siguen sin describirse. En América, fueron
identificados aproximadamente seis virus. Se inició la identificación y caracterización
de el/los agentes causales de virosis de mandioca en el país (Figura 1). Estacas con
síntomas de mosaico, fueron enraizadas y mantenidas en macetas bajo condiciones
controladas. Las plantas se analizaron mediante microscopía electrónica, serología y
pruebas biológicas. En los preparados al microscopio electrónico se observaron
partículas alargadas y semiflexuosas, con longitud modal entre 480 y 500 nm,
semejantes a potexvirus, que formaban cuerpos de inclusión típicos de este género. En
las muestras provenientes de Corrientes todas las partículas se decoraron con el suero
anti-CsCMV, mientras que en las de Formosa, hubo decoración diferencial, indicio de
infecciones mixtas (Figura 2). Por serología se detectó CsCMV en todas las muestras
analizadas, con mayor concentración viral en las de Formosa. Del rango de hospedantes
empleado, sólo Nicotiana benthamiana y Chenopodium quinoa manifestaron síntomas.
Los resultados obtenidos permiten informar por primera vez la presencia de CsCMV en
cultivos de mandioca de Argentina. Por otra parte, se evidencian infecciones con otras
especies virales.
42
Figura 1. Plantas de mandioca con síntomas de virosis, mantenidas dentro de una jaula anti-
insectos en condiciones de invernadero (A) Planta sana (B) Detalles de síntomas de mosaico y
malformación de hojas (C).
Figura 2. Partículas diferencialmente decoradas con suero anti- CsCMV (1/100 P/V) en hojas de
plantas de mandioca procedentes de Formosa.
2.15.5. Acción. Clorosis en yerba mate
Responsable: Claudia Nome [email protected] (IPAVE)
La yerba mate, cuyo nombre científico es Ilex paraguariensis A.St-Hil perteneciente a
la familia Aquifoliaceae, es una de las especies vegetales más comercializada y
utilizada en Sudamérica incluyendo Argentina, Uruguay, Brasil, Paraguay, Chile y
Bolivia. Argentina es el principal productor y consumidor y el más avanzado en todos
los aspectos de la tecnología de cultivo y elaboración, gracias a sus características y
condiciones agroecológicas favorables al cultivo. Se exporta a Brasil, Chile, Uruguay,
Europa (España, Italia y Alemania), Estados Unidos, Siria, Líbano y Japón.
Las enfermedades virales de Ilex paraguariensis aún no han sido suficientemente
estudiadas, o no se conocen prácticas de tratamiento. En el proceso de “domesticación”
de la yerba, se van sumando los efectos de las técnicas culturales
Los virus/viroides son importantes agentes causantes de enfermedades de las plantas. El
diagnóstico de campo de las enfermedades virales se basa en gran medida en la
sintomatología. Los síntomas más comúnmente hallados son: mosaico o moteado y
amarillamiento (Figura 1). Las inquietudes por observaciones de síntomas de clorosis
43
marcadas en los yerbatales, comenzaron en el año 2009, pero fue en el año 2013 que se
observaron partículas largas filamentosas y gruesas (Figura 2). Los estudios están
siendo realizados con material proveniente de Misiones, Cerro azul y Montecarlo.
Purificaciones de ARN total fueron enviados a pirosecuenciar y están siendo analizados.
Figura 1. Síntomas cloróticos en el cultivo de yerba mate
Figura 2. Partículas virales observadas en plantas de yerba mate con síntomas cloróticos
2.15.6. Acción: Informes sobre aspectos epidemiológicos de virosis en el cultivo de
maní y determinación de tácticas y estrategias de manejo
Responsable: Soledad de Breuil, [email protected] (IPAVE)
Participantes: S. de Breuil, F. Giolitti, N. Bejerman, V. Trucco (IPAVE), J. Baldessari
(EEA-Manfredi), F.R. La Rossa (IMYZA), C. Flores (EEA Yuto), J. Marcelino (AER
Río Cuarto)
1.- Determinar la dinámica de las virosis presentes en el área manisera de
Córdoba. Durante la campaña agrícola 2012/2013 se evaluaron 49 lotes comerciales de
la región manisera de Córdoba ubicados en las localidades de Aguas Dulces, Bengolea,
Berrrotarán, Bulnes, Carnerillo, Cnel. Baigorria, Cnel. Moldes, Chazón, Dalmacio
Vélez, El Espinillo, Gigena, Gral. Cabrera, Gral. Deheza, Hernando, La Carlota,
Laguna Larga, Las Acequias, Las Perdices, Las Vertientes, Malena, Manfredi, Oliva,
Oncativo, Pampayasta, Paso del Durazno, Pilar, Río Cuarto, Sampacho, Sta. Catalina,
Sta. Eufemia, Tosquita, Va. Reducción y Vickuña Mackenna. Se tomaron muestras de
maníes que manifestaban alguna sintomatología, como así también provenientes de
plantas asintomáticas. También se colectaron m malezas con síntomas típicos de
44
infección viral, y muestras de soja y trébol blanco. Se detectó la presencia de GRSV en
lotes ubicados en la localidad de Carnerillo (32,93S-64,06º), Manfredi (31,85S-63,74º)
y Oncativo (31,94S-63,65º). Cabe destacar que las muestras provenientes de Manfredi y
Carnerillo reaccionaron también con el antisuero específico a Tomato spotted wilt virus
(TSWV), mostrando altos valores de absorbancia por lo que se considera conveniente
profundizar los estudios relativos a este virus.
2.- Conocer la dinámica poblacional de trips vectores de virus en el cultivo de maní
y relacionarla con la incidencia de la enfermedad. Se identificaron todos los
individuos recolectados en la campaña 2011/2012 y se analizó la fluctuación
poblacional de las diferentes especies de trips que afectaron el maní durante su ciclo de
cultivo. Esta actividad estaba pendiente de la cartera de proyecto anterior.
El estudio fue realizado en un lote de maní implantado en la EEA-Manfredi el 7 de
diciembre de 2011. Para determinar la fluctuación poblacional de los trips se
identificaron en el lote 10 plantas distribuidas en W a partir de las cuales se tomaron
muestras de trips presentes en las estructuras vegetativas y en las flores. Los muestreos
se realizaron aproximadamente cada 15 días a partir de la siembra y hasta 15 días antes
del momento de arrancado. Para cuantificar la presencia de trips en hojas y tallos se
realizaron 10 golpes a cada planta sobre una hoja de color blanco, tamaño A4
humedecida con alcohol al 70%. Para estudiar los trips en flores, a partir de la aparición
de las mismas, se tomaron cinco flores por planta como máximo. Los insectos
recolectados fueron almacenados en alcohol 70% hasta su identificación en el
Laboratorio de Microbiología y Zoología Agrícola del INTA-Castelar. Para
confeccionar las curvas de fluctuación poblacional, se promediaron los datos obtenidos
de las 10 plantas analizadas, en cada fecha de muestreo. Además, en cada muestro se
determinó la presencia de tospovirus en el cultivo siguiendo un diseño en W con cinco
estaciones en cada brazo (20 en total), y en cada estación, se evaluaron 20 plantas
seguidas en el surco por presencia o ausencia de síntomas. Se identificaron cuatro
especies de trips a lo largo del ciclo del cultivo: Frankliniella schultzei, F. occidentalis,
Caliothrips phaseoli y Thrips tabaci, observándose diferencias en la dinámica de cada
población (Gráfico 1). La primera especie que colonizó el maní, y la más abundante, fue
F. schultzei, detectándose su presencia a partir de los 33 días después de la siembra
(dds), aproximadamente. La población de F. schultzei fue sostenidamente en aumento
hasta los 65 dds, para luego comenzar a disminuir y finalmente, no detectarse
individuos de la especie. Otra especie de trips importante en cuanto al número de
individuos identificados fue C. phaseoli. La misma fue detectada alrededor de los 49
dds y presentó dos picos poblacionales, siendo el segundo mayor que el primero. Las
especies F. occidentalis y T. tabaci no fueron relevantes en el cultivo, ya que sólo se
identificaron unos pocos ejemplares (Figura 1). Cuando analizamos las fluctuaciones de
las especies de trips más frecuentes, teniendo en cuenta las distintas regiones de la
planta que colonizan, se observó que la llegada de F. schultzei al cultivo coincide con el
inicio de la floración, y que aumentó la población a medida que la floración avanzó,
para luego disminuir junto con ésta (Figura 2). Igualmente, una fracción importante de
trips de esta especie afectó la porción vegetativa de la planta, y se observaron dos picos
poblacionales que coinciden con los de C. phaseoli, especie que sólo afectó hojas y
tallos sin encontrarse en las flores. A los 127 dds únicamente se detectaron unos pocos
ejemplares de C. phaseoli. En cuanto a la presencia de tospovirus, ninguna planta
presentó síntomas característicos de infección viral a pesar de la presencia de F.
schultzei, el vector más eficiente del GRSV, virus que infecta naturalmente al maní en
la región productora de Córdoba.
45
Figura 1. Dinámica poblacional de las distintas especies de trips identificadas en el cultivo de
maní
Figura 2. Cantidad de individuos de Frankliniella schultzei y Caliothrips phaseoli recolectados a
partir de estructuras vegetativas y reproductivas de maní durante el ciclo del cultivo
Podemos concluir que el maní es afectado por distintas especies de trips desde el inicio
de la floración hasta el final del ciclo, momento en el cual los insectos abandonan el
cultivo en busca de otras especies vegetales que sirvan de reservorio y alimento. F.
schultzei se desarrolla principalmente en las flores mientras que C. phaseoli lo hace en
hojas y tallos. Los picos poblacionales de los insectos presentes en hojas y tallos
podrían estar relacionados con la aplicación del acaricida 65 dds, seguido de una caída
de granizo 71 dds. Igualmente, no pueden descartarse otros factores como incrementos
de la competición entre trips. F. schultzei es la especie más abundante y puede actuar
como vectora del GRSV, por lo que la presencia de la enfermedad dependerá de la
llegada inicial al cultivo de trips virulíferos. Nuestro grupo de investigación continúa
con los estudios sobre la dinámica poblacional de estos insectos, además de desarrollar
tareas tendientes a dilucidar cuáles son las especies que actúan como reservorio del
virus y de los trips vectores.
El ensayo anterior fue repetido en la campaña agrícola 2012/2013. En todas las fechas
de muestreos se recolectaron trips y se inspeccionaron visualmente 400 plantas por
presencia/ausencia de síntomas de infección viral. Se analizaron por DAS-ELISA todas
las plantas con síntomas típicos de tospovirus, utilizando antisueros comerciales (Agdia,
Inc.) específicos para GRSV/TCSV y TSWV.
F. schultzei F. occidentalis C. phaseoli T. tabaci
22 33 49 65 79 96 110 127
dds
0
11
22
33
44
Nú
me
ro t
ota
l d
e t
rip
s
F. schultzei F. occidentalis C. phaseoli T. tabaci
F. schultzei f lor F. schultzei planta C. phaseoli planta C. phaseoli f lor
22 33 49 65 79 96 110 127dds
-1
4
9
15
20
25
30
Nú
me
ro d
e t
rip
s
F. schultzei f lor F. schultzei planta C. phaseoli planta C. phaseoli f lor
46
o Siembra: 9 de noviembre de 2012. EEA Manfredi. Cv Victor (alto oleico).
o 1° muestreo (6/12/12, 28 dds): tres muestras positivas a la infección con GRSV que
presentaron reacción cruzada con antisueros para TSWV. Incidencia GRSV: 0,75%.
o 2° muestreo (21/12/12): dos muestras positivas con altos valores de absorbancia
para GRSV y TSWV. La técnica se desarrolló otra vez y se repitió el mismo
resultado. Incidencia GRSV: 1,25%.
o 3° muestreo (02/01/13).
o 4° muestreo (16/01/13)
o 5° muestreo (30/01/13)
o 6° muestreo (15/02/13)
o 7° muestreo (28/02/13)
o 8° muestreo (18/03/13). El mismo se retrasó por lluvias.
o 9° muestreo (08/04/13). Incidencia GRSV final: 1,25%.
Los trips recolectados en cada una de las fechas de muestreo se almacenaron en alcohol
70% para su posterior identificación.
2.16. PNIND 1108073. Manejo Integrado de los Cultivos Industriales
Coordinador: Marcelo Mayol
Unidad Sede: EEA Cerro Azul
2.16.1. Acción. Sustentabilidad de suelos en cultivos de caña de azúcar
Responsable: Silvina Vargas Gil, [email protected] (IPAVE)
Participantes: D. Chavarría, D. Serri, R. Oberto.
Las poblaciones microbianas del suelo están inmersas en un marco de interacción que
afecta el desarrollo de las plantas y la calidad del suelo. Estas están involucradas en
actividades fundamentales que aseguran la estabilidad y productividad, tanto de los
agroecosistemas como de los ecosistemas naturales. La calidad del suelo está
fuertemente influenciada por los procesos microbianos que en él ocurren, y éstos,
relacionados con la diversidad; por tanto, es muy probable que el mantenimiento de la
estructura de la comunidad microbiana tenga la capacidad de servir como indicador
temprano y de gran sensibilidad de la degradación o empobrecimiento del suelo. En los
sistemas agrícolas, la biodiversidad desempeña servicios ecológicos, más allá de la
producción de alimento, fibra, combustibles e ingresos monetarios. Entre los ejemplos
se incluyen el ciclado de nutrientes, control del microclima local, regulación de
procesos hidrológicos locales, regulación de la abundancia de organismos indeseables y
detoxificación de productos químicos nocivos. Estos procesos de renovación y servicios
de los ecosistemas son, en gran parte, microbiológicos, por lo tanto, su persistencia
depende del mantenimiento de la biodiversidad microbiana nativa o exógena del suelo.
El hecho de que en algunas situaciones sea el suelo, y en otras el tipo de plantas, el
factor determinante de la diversidad microbiana del suelo, está relacionado con la
complejidad de las interacciones microbianas en el mismo, incluyendo las interacciones
microorganismos-suelo y microorganismos-planta.
El cultivo de caña de azúcar puede manejarse de manera convencional o bien con
herramientas sustentables, como la aplicación de vinazas, que enriquece marcadamente
el suelo favoreciendo a las poblaciones de microorganismos, ya que contiene
principalmente materia orgánica, potasio (K), azufre (S), magnesio (Mg), nitrógeno (N)
y calcio (Ca). Sin embargo, esta composición es variable según provenga de melaza,
jugo o la mezcla de ambos. La vinaza proveniente de melaza presenta los mayores
contenidos de materia orgánica y elementos minerales. Se estima que por una tonelada
47
de caña destinada a la producción de azúcar, se obtienen alrededor de 45 kg de melaza
que pueden producir 12 l de alcohol y entre 30 y 156 l de vinaza según los contenidos
de sólidos totales. Teniendo en cuenta que las vinazas son utilizadas como abonos
orgánicos, mejoradoras de las condiciones del suelo y activadoras de los procesos de
descomposición de los residuos de cosecha, se cuantificaron diferentes dosis de
aplicación de este producto al suelo con la finalidad de determinar su efecto sobre las
comunidades microbianas edáficas. Las dosis de vinaza aplicadas fueron de 0, 50, 100,
150 y 200 m3. Se realizaron tres muestreos de suelo en diferentes estadíos del cultivo de
caña de azúcar. El primer muestreo fue previo a la aplicación de vinaza, otro: posterior a
la misma (macollaje); un tercero, en maduración del cultivo, y el último: antes de la
cosecha. Se tomaron las muestras de suelo pertenecientes a los diferentes tratamientos
que se están procesando en el laboratorio, por lo que aun no contamos con resultados.
En la siguiente etapa del proyecto se relacionarán las comunidades microbianas en
respuesta a la aplicación de vinaza y la incidencia de enfermedades causadas por hongos
de suelo en el cultivo de caña de azúcar.
2.17. PNPV - 1135022. Identificación y desarrollo de protocolos para la detección
de patógenos de importancia agrícola
Coordinador: Raquel Haelterman
Unidad Sede: IPAVE
2.17.1. Acción. Análisis molecular del genoma completo de un rhabdovirus de trigo
Responsable: Analía Dumón, [email protected] (IPAVE)
Participantes: P. López Lambertini (IPAVE)
A partir del fragmento obtenido mediante la amplificación con cebadores degenerados,
se realizó una secuenciación nucleotídica y con ella una búsqueda en la base de datos
del Genbank, la cual presentó diferentes porcentajes de homología con otros virus
pertenecientes al género Cytorhabdovirus. Se realizó un alineamiento a partir del cual se
desarrolló la reconstrucción filogenética para observar la relación entre dichos virus. La
escasez de secuencias nucleotídicas completas para este grupo de virus resalta la
necesidad de realizar la secuenciación del genoma completo, un aspecto importante para
la epidemiología de esta virosis.
2.17.2. Acción. Transmisión transovárica de un rhabdovirus de trigo en su vector
natural Delphacodes kuscheli y otros delfácidos, en infecciones simples y mixtas
con el Mal de Río Cuarto virus
Responsable: Analía Dumón, [email protected] (IPAVE)
Se sabe que algunos de los fitorhabdovirus, pueden ser transmitidos de las hembras
infectadas a su progenie por transmisión transovárica, sin la participación de un
hospedante vegetal. Con respecto al rhabdovirus detectado en cultivos de trigo, hemos
observado que ocurre este modo de transmisión, aunque aún se desconoce el porcentaje
según las especies de delfácidos participantes de la infección. Los ensayos necesarios
para conocer dicho porcentaje serán muy valiosos, ya que reflejarán la importancia de
este modo de dispersión del virus en la naturaleza y el porcentaje de transmisión en
infecciones mixtas (con el MRCV) y simples. Para comenzar con el estudio, se realizó
una transmisión 1:1 con hembras de D. kuscheli que adquirieron el rhabdovirus desde
un inóculo simple sobre plántulas de cebada (cv. Goldie). Posteriormente, a los 8-9 días
se extrajeron los huevos de las hojas y se acondicionaron en cámaras húmedas hasta la
eclosión (Figura 1).
48
Figura 1: Se muestra una cámara húmeda en donde son colocados los huevos sobre plántulas sanas
(izquierda) y el estadio de desarrollo de los huevos al momento de la extracción (derecha)
Una vez que emergieron las ninfas, fueron colocadas a transmitir 1:1 a plántulas de
cebada del mismo cultivar, reemplazando la planta periódicamente hasta la muerte del
insecto. Las plantas se mantuvieron en invernadero y a los 15 días postransmisón, se
extrajo una muestra de hoja para analizar por serología.
Hasta el momento no se obtuvieron resultados serológicos positivos en las
transmisiones de ninfas nacidas de huevos. Se continúa con las extracciones de huevo y
transmisiones 1:1. Actualmente se comenzó con las transmisiones con hembras que
adquirieron en un inóculo mixto (rhabdovirus-MRCV).
2.17.3. Acción. Caracterización biológica y molecular del High Plains Disease
(HPD), WSMV según linajes del vector A. tosichella involucrados y cultivares de
trigo afectados.
Responsable: María Fernanda Mattio, [email protected] (IPAVE)
Participantes: V. Alemandri, G.Truol (IPAVE)
En cada campaña agrícola se realizan relevamientos de las enfermedades virales del
trigo y de sus vectores, y se investigan las interacciones virus-hospedante-vector-
cultivares de trigo de distintas regiones geográficas, aislamientos del virus y
poblaciones del vector, obteniéndose éstos para su multiplicación y empleo en
investigaciónes conjuntas con los profesionales involucrados en los planes de
mejoramiento de trigo. Durante la campaña triguera 2013 se recolectaron plantas de
varias especies, con síntomas de virus en Marcos Juárez (Bromus sp., trigo y triticale) y
en Balcarce (trigo cv. Cedro). Trozos de hojas y espigas se colocaron sobre plántulas
sanas de trigo cv BioInta 3005 para establecer colonias de ácaros y aislamientos de
virus. Actualmente se están procesando muestras del material recolectado, para
corroborar serológicamente la presencia de HPV y WSMV tanto en el material
proveniente de campo como en el inoculado de BioInta 3005.
2.17.4. Acción. Eficiencia de transmisión de Candidatus Liberibacter asiaticus
(“Las”), causal del Huanglongbing, por diferentes poblaciones de psílidos de
Argentina y vías de inmunidad asociadas a la infección
Responsable: Evangelina Argüello Caro, [email protected] (IPAVE)
49
Participantes: A. Dumón (IPAVE)
Para la cría artificial del psílido (Diaphorina citri) se han obtenido exitosamente plantas
de Murraya paniculada, hospedante preferencial del vector, en instalaciones del
IPAVE. Estas plantas servirán como sustrato para el mantenimiento de una población
sana del vector bajo condiciones controladas.
Se pudo establecer la cría artificial del psilido bajo las condiciones de la sala de cría del
Laboratorio de Vectores del IPAVE a partir de adultos enviados desde EEA INTA
Bella Vista. Hasta el momento, se cuenta con cuatro generaciones. Esta cría está
disponible para diferentes ensayos como el ajuste de la detección molecular de vías de
inmunidad y pruebas preliminares de ensayos de transmisión. Además, se poseen
individuos almacenados en alcohol para lo estudios posteriores (Figura 2).
Se obtuvieron ejemplares muertos conservados en alcohol de psilidos infectados con
Candidatus Liberibacter asiaticus (“Las”) gentilmente cedidos por el Dr Joao Lopes
(Depto. Entomología y Acarología, ESALQ/Universidad de Sao Pablo, Brasil). Los
mismos servirán para los primeros ajustes de la detección de vías de inmunidad innata
en psílidos infectados con “Las”.
Figura 2. Cría artificial de psilido
2.17.5. Acción. Caracterización de virus cuarentenarios y emergentes de frutales y
estudios de su diversidad genética
Responsable: Angélica Dal Zotto, [email protected] (IPAVE)
Participantes: L. Porcel, J.M. Raigón, D. Marini, M. Rosini
En continuidad con la cartera de proyectos 2009, se busca obtener y caracterizar
aislamientos de virus en frutales de carozo y, a partir de la cartera de proyectos 2013, en
fruta fina en las regiones productoras de Argentina.
En el IPAVE, se comenzaron a estudiar aislamientos del virus Plum pox (PPV) en
ciruelos europeos del cultivar Dagen procedentes de Mendoza.
Muestras de hojas con síntomas se amplificaron por Captura RT-PCR con primers
específicos para la región 3´ 5´ del genoma viral. Los ensayos permitieron amplificar
fragmentos del PPV de la cápside proteica del virus más a la región 3´nc (1220 pb),
fragmentos que flanquean la región N-ter CP (cápside proteica) - C-ter Nib (inclusión
nuclear b) de 972 pb, ambos fragmentos del extremos 3´del genoma de PPV y otros que
flanquean la región C-ter P3-6 K1 (Proteína P3 y 6 K1) - Nter-CI (cuerpos de inclusión)
de 836 pb, del extremo 5´ del genoma de Plum pox virus.
50
2.17.6. Acción. Identificación y caracterización de virosis de alfalfa
Responsable: Fabián Giolitti, [email protected] (IPAVE)
Participantes: N. Bejerman y V. Trucco (IPAVE), V. Arolfo (EEA Manfredi)
Secuenciación del Bean leaf roll virus (BLRV)
La alfalfa (Medicago sativa L.) es un cultivo perenne que se ve afectado por el daño
acumulativo de distintos virus. En los últimos años es observa, en distintas regiones de
Argentina, plantas de alfalfa con síntomas de enanismo, amarillamiento generalizado,
distorsión de hojas y aparición de enaciones sobre las nervaduras del envés de los
folíolos. Plantas con estos síntomas, recolectadas en la EEA INTA-Manfredi (Córdoba),
fueron diagnosticadas con Alfalfa mosaic virus (AMV), un miembro de la familia
Rhabdoviridae y el BLRV. Se extrajo ARN total de esas plantas, el que fue enviado
para su secuenciación a INDEAR (Rosario) mediante la técnica de secuenciación
masiva en paralelo, en un Secuenciador 454-ROCHE. Se logró obtener la secuencia
completa del genoma del BLRV, el que está compuesto por 5884 nucleótidos (con una
organización genómica similar a la ya reportada para este virus), conteniendo cinco
marcos de lectura abiertos (ORF1 al 5), los cuales codifican las proteínas implicadas en
la replicación, movimiento, cubierta y transmisión por áfidos (Figura 3). El genoma
presentó una identidad del 98.5% y 96.3% con los genomas de BLRV aislados de arveja
(HM439776) y haba (AF441393), respectivamente. El análisis de la secuencia de la CP
reveló valores de identidad entre el 98,6 y 99,6% a nivel de nt y del 98,9 al 100% a
nivel de aa, cuando se la comparó con las cinco secuencias de CP disponibles en el
GenBank. Además, estudios filogenéticos basados en el gen de la CP muestran que el
aislamiento de Argentina está estrechamente relacionado con el de EUA (HM439776),
proveniente de arveja. Esta es la tercera secuencia genómica completa del BLRV a nivel
mundial, y la primera obtenida a partir de alfalfa como hospedante natural.
Figura 3. Diagrama de la organización genómica del BLRV-Arg. La línea central en negrita representa el ARN y las
cajas los cinco ORFs, con los nucleótidos donde comienzan y terminan cada uno. Entre paréntesis se muestra el peso
molecular de las proteínas codificadas por cada ORF.
Producción de semillas:
En la localidad de Guanacache, próximo a la ciudad de San Juan, en un lote destinado a
la producción de semillas, se marcaron 110 plantas de alfalfa cv. Villa: 55 plantas con
síntomas y 55 sin síntomas de enaciones. Posteriormente, se cosechó en forma
individual y sus semillas se trillaron manualmente.
Se registró el peso total de semillas por planta y el promedio del peso de 100 semillas
por planta (obtenido como el promedio del peso de tres grupos de 100 semillas). Se
realizó un análisis de varianza no paramétrica con las medias de estos datos, utilizando
la prueba de Kruskal Wallis y el programa InfoStat (versión 2012).
ORF2
ORF1
ORF4
ORF3 ORF5
51
Los análisis estadísticos mostraron una disminución significativa en el peso del total de
semillas producidas por las plantas con síntomas respecto a las producidas por las
asintomáticas (Figura 4), y no se observó diferencias significativa en los promedios de
pesos de 100 semillas. Estos datos indicarían que la virosis está afectando la producción
de semillas por planta pero no el peso de las mismas.
Figura 4. Reducción de la producción de semillas en alfalfa inducida por la
enfermedad del enanismo, plantas con síntoma vs. sin síntomas.
2.17.7. Acción. Caracterización biológica de hemípteros vectores de fitoplasmas,
parámetros de transmisión Responsable: Fabiana Guzmán, [email protected] (IPAVE)
Participantes: L. Conci, F. Fernández, A. Saavedra Pons, T. Pérez Grosso, C. Nome.
Apoyo técnico: W. Arce y S. Brandimarte (IPAVE).
Ciclo biológico de Ceresa nigripectus (Membracidae) en el hospedante alfalfa
(Medicago sativa). Se determinó la duración del ciclo biológico sobre el hospedante
alfalfa (Medicago sativa) de Ceresa nigripectus (Membracidae) en el periodo otoño-
invernal, lo que permitió realizar comparaciones respecto de la duración del mismo en
el periodo primavero-estival. Se configuraron las curvas de sobrevivencia y de
expectativas de vida de la especie. Además, también se logró conocer la duración del
período de huevo (se analizaron 331 oviposturas cuya duración promedio fue de 20±6
días), se determinó su localización en la planta (los huevos se encastran debajo de la
epidermis, en la zona del tallo circundante a la axila de las hojas) y se fotografiaron los
embriones de la especie (Figura 5). Se continúa intentando lograr la obtención de
colonias estables de A. ensigera (Cicadelidae), potencial vector de la enfermedad
“escoba de bruja de la alfalfa”.
Presencia Ausencia
Síntomas
0,00
2,43
4,86
7,29
9,71
12,14
14,57
17,00
Pe
so
(g
) A
B
A
B
52
Figura 5. Localización de oviposturas encastradas sobre tallo de alfalfa (Izq.) y embrión de C.
nigripectus (Der.)
Hospedantes secundarios. Se pudieron establecer empíricamente tres especies que
podrían llegar a actuar como hospedantes alternativos de C. nigripectus. En el caso de
alfalfa, pimiento y maní, se detectó la presencia de ninfas de estadios iniciales (I y II),
que al ser organismos sésiles (no poseen alas) asegura que se originaron a partir de
oviposturas colocadas sobre estos hospedantes.
Parasitismo. Se han observado numerosos ejemplares adultos de C. nigripectus
parasitados con insectos pertenecientes al grupo de los Stresiptera. Los ejemplares
parasitados por estos microhImenópteros, presentan la peculiaridad de tener dos sacos
de coloración oscura adheridos al abdomen. Tanto los insectos recolectados a campo
como aquellos criados en condiciones experimentales presentan estas características. El
descubrimiento de este parasitismo en adultos, impulsó la búsqueda de la presencia de
otros parasitoides que, en esta ocasión, fueran capaces de parasitar los huevos del
membrácido y actuar como un potencial controlador biológico.
Ensayos de transmisión.Se realizaron ensayos de transmisión para comprobar la
capacidad de la especie C. nigripectus como vector de la enfermedad de la “escoba de
bruja de la alfalfa”, aunque no se obtuvieron resultados positivos. Se están ajustando los
parámetros: tiempo de adquisición, latencia e inoculación. Sin embargo, se logró
establecer por primera vez la transmisión experimental de la enfermedad utilizando
como vector al cicadélido A. ensigera.
2.17.8. Acción. Identificación, caracterización genómica de enfermedades causadas
por fitoplasmas
Responsable: Franco Fernández, [email protected] (IPAVE)
Participantes: L. Conci, F. Guzmán, A. Saavedra Pons, T. Pérez Grosso, C. Nome.
Apoyo técnico: W. Arce y S. Brandimarte (IPAVE)
Estudios epidemiológicos del “amarillamiento del duraznero” causado por un
fitoplasma, en los valles templados de Jujuy (PRet SALJU 1232102). Durante el mes
de diciembre del 2013, se muestrearon lotes de duraznero en la región de los Valles
Templados en Jujuy. Para determinar la relación existente entre la presencia de síntoma
y la presencia de fitoplasmas se analizaron 20 árboles y se determinó la presencia de
fitoplasmas en porciones sintomáticas y porciones asintomáticas de los mismos. La
presencia de fitoplasmas se evaluó mediante PCR, empleando para ellos los cebadores
universales para fitoplasmas P1/P7 y R16F2n/R16R2 en reacciones de PCR directo y
anidado, respectivamente. Se logró detectar en 10/20 porciones de tejido sintomático la
presencia de fitoplasmas, mientras que en las porciones de tejido asintomático esto no
53
sucedió. Mediante PCR-RFLP del gen 16S rDNA se pudo identificar el fitoplasma
Argetinean Peach Yellows (grupo 16SrIII-B), previamente caracterizado.
Detección y caracterización de fitoplasmas asociados al amarillamiento del paraíso
(Melia azeradach L.) en distintas regiones de la Argentina. Se continuó con los
muestreos en distintas regiones de la Argentina recolectando ejemplares de paraíso con
sintomatología de amarillamiento completando los muestreos realizados en el año 2012.
El muestreo se realizó en ocho provincias (Tucumán, Misiones, Santa Fe, Corrientes,
Chaco, Entre Ríos, Formosa y Córdoba), con 50 puntos de muestreo recolectándose un
total de 275 muestras (Figura 6). La detección de fitoplasmas asociados se llevó a cabo
mediante PCR, empleando los juegos de cebadores universales para fitoplasmas P1/P7
(1.8kb, Gen 16SrDNA-región espaciadora-5’Gen 23SrDNA) y R16F2/R16R2 (1.2kb,
porción interna del Gen 16Sr DNA). De las 275 muestras analizadas, 238 resultaron
positivas para fitoplasmas (86%). Para la identificación del fitoplasma asociado se
utilizó la técnica PCR-RFLP, empleando como DNA molde para las digestiones, el
producto de 1.2kb amplificado mediante los cebadores R16F2/R16R2, y MseI como la
enzima discriminante. El análisis de los patrones de restricción resultantes determinó
que de las 238 muestras PCR positivas para fitoplasmas, 209 (88%) exibieron un patrón
correspondiente al fitoplasma China tree decline (ChTDIII), perteneciente al grupo
16SrIII-B. El patrón de las 29 (12%) muestras restantes correspondió al fitoplasma
China tree yellows (ChTYXIII), perteneciente al grupo 16SrXIII-C.
Figura 6. Puntos de muestreo registrados en los años 2012-2013. En rojo, los puntos de muestreo donde se registró la presencia del fitoplasma ChTYXIII, en verde, donde se registró la presencia del fitoplasma ChTDIII.
Estos resultados siguen demostrando la predominancia del fitoplasma ChTDIII, ya que
no sólo es el de mayor incidencia, sino porque en cuanto a su distribución, ha sido
registrado en casi todos los puntos de muestreo (a excepción de Formosa) analizados en
los años 2012-2013. Nuestros resultados también muestran que el fitoplasma ChTYXIII
tiene una distribución acotada a la región del nordeste argentino (NEA), con una mayor
incidencia en la provincia de Misiones y al norte de Corrientes. El fitoplasma
ChTYXIII, se registró por primera vez hacia el suroeste de la provincia de Corrientes
(Localidad de Yapeyú), siendo este el punto más austral de su distribución.
54
Caracterización de fitoplasmas del grupo 16Sr III (x-diseases).Se determinaron dos
nuevos subgrupos X y W, en especies nativas y exóticas: hace referencia a la
diferenciación de fitoplasmas del grupo 16SrIII (a través del clonado, secuenciación y
análisis filogenético de secuencias de genes de proteínas ribosomales y del gen 16S
rADN de fitoplasmas) provenientes de diferentes cultivos, plantas nativas, ornamentales
y malezas de diferentes regiones de Argentina. Se identificaron dos subgrupos nuevos
dentro del grupo 16SrIII: subgrupos 16SrIII-W (“romerillo” Heterothalamus alienus) y
16SrIII-X (“rama negra” Conyza bonariensis). El trabajo se realizó en colaboración con
la Dra. Ernestina Galdeano (IBONE, Fac. Cs. Agrarias, UNNE).
Nuevos reservorios naturales de estos patógenos. Se analizaron cinco muestras de
remolacha azucarera (Beta vulgaris var. Saccharata) provenientes de la localidad
General Conesa (Provincia de Rio Negro). Se realizó la extracción de ácidos nucleicos
totales, tanto del cultivo como de los insectos recolectados a campo y se llevó a cabo la
técnica de PCR utilizando cebadores universales P1/P7-F2/R2 que hibridan con la
región 16S rDNA (altamente conservada) del patógeno. No se encontraron resultados
positivos.
Detección, identificación y caracterización de fitoplasmas en “vinca”
(Catharanthus roseus L.G.Dom) y “lagaña de perro” (Caesalpinia gilliesii). Se
analizaron mediante PCR y PCR-RFLP muestras de “vinca” (Catharanthus roseus
L.G.Dom) y “lagaña de perro” (Caesalpinia gilliesii) con sintomatología de fitoplasmas
provenientes de las localidades de Bonpland (Corrientes) y Capilla de los Remedios
(Córdoba), respectivamente. Las muestras analizadas resultaron positivas para
fitoplasmas tanto en reacciones de PCR directo como anidado. La identidad de los
fitoplasmas asociados se determinó mediante PCR-RFLP, sobre el fragmento
amplificado (1,2kb) con los cebadores R16F2/R16R2 (gen 16Sr rDNA) empleando las
enzimas de restricción Tru1I y AluI. Se logró identificar un fitoplasma perteneciente al
grupo 16Sr I en “vinca” y otro perteneciente al grupo 16Sr III en “lagaña de perro”
(Figura 7).
55
Tru1l AluI
Figura 7. 1-Marcador de peso molecular ø174 HaeIII-digested (New England Biolabs).
2-Paraíso ChTDIII (16Sr III),
3-Vinca AY-ACLL (16Sr I),
4-Vinca Bonpland, 5-Alfalfa ArAWB (16Sr VII), 6-Vinca ChTY XIII (16Sr XIII), 7-Lagaña de perro, 8-
Marcador de peso molecular ø174 HaeIII-digested, 9-Paraíso ChTDIII (16Sr III),
10-Vinca AY-ACLL (16Sr I),
11-Vinca Bonpland, 12-Alfalfa ArAWB (16Sr VII), 13-Vinca ChTY XIII (16Sr XIII),
14-Lagaña de perro,
15-Marcador de peso molecular ø174 HaeIII-digested.
2.17.9. Acción. Ajuste de técnicas y metodología de detección de virosis en batata.
Caracterización biológica y serológica del Sweet potato virus G (SPVG)
Responsable: Liliana Di Feo, [email protected] (IPAVE)
Participantes: D. Martinelli, P. Rodríguez Pardina, A. Luque
El SPVG-Ar, que ya había sido caracterizado molecularmente, lo está siendo biológica,
serológica y por microscopía electrónica. Además, se efectúa su aislamiento en una
hospedante alternativa a los fines de obtener reactivos para su diagnóstico. Estas
acciones se desarrollan en el marco de una tesis de grado.
Se llevaron a cabo pruebas de transmisión mecánica, por áfidos (Myzus persicae) y por
injerto.
En el primer caso, se partió de hojas de Ipomoea setosa infectadas sólo con SPVG y de
batata cv Okinawa y Arapey con infecciones mixtas, respectivamente. Se inocularon
diferentes especies convolvuláceas, solanáceas y quenopodiáceas: I. setosa, I. nil,
Nicotiana benthamiana, N.glutinosa, N. rustica, N. occidentalis, N. tabacum (variedad
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
56
samsun), Datura stramonium, Chenopodium amaranticolor, C. quinoa y C. murale. El
ensayo se repitió dos veces y en ningún caso hubo transmisión del virus (esto fue
corroborado mediante NCM-ELISA).
En el caso de la inoculación mediante áfidos, se partió de I. setosa con infecciones
simples con SPVG y sólo se logró un porcentaje de transmisión del 16,67%.
Para separar al SPVG del SPFMV (ambos agentes son transmitidos por M. persicae) se
realizaron pruebas one probe (un insecto y una picada). En este tipo de transmisión,
cada insecto se puso a adquirir virus sobre Arapey INIA infectada con el complejo viral,
se lo dejó que “pìcara” una vez y luego fue trasladado a una plántula sana de I. setosa.
A través de esta técnica sólo fue posible separar SPFMV (79% de transmisión) a partir
del complejo viral.
La dificultad para separar SPVG en co-infección con SPFMV, condujo a pensar en la
presencia de una relación antagónica entre ambos, la cual será motivo de próximos
estudios.
En cuanto a la inoculación por injertos, púas de I. setosa con SPVG fueron injertadas en
plantas sanas de esta indicadora y los síntomas aparecieron entre los 15 y 21 días
(Figura 8). Esta práctica permite una transmisión del 100% de virus y se la está
empleando para obtener material vegetal para purificar el virus y, posteriormente, un
antisuero empleado para diagnóstico de rutina.
Figura 8. Planta de I. setosa injertada con púas con SPVG, con notable aclaramiento de nervaduras en todas
las hojas, síntoma típico del virus
Por otra parte, al microscopio electrónico, se observaron partículas filamentosas
flexuosas tipo potyvirus, de las cuales se determinará su largo modal (dato aún no
conocido). En cortes ultrafinos se detectaron inclusiones tipo pinwheels (en molinete),
laminares y scrolls, partículas virales dispersas en todo el citoplasma y alteraciones en
los cloroplastos (Figura 9).
57
Figura 9. Inclusiones citoplasmáticas producidas por SPVG. Sc: scrolls; L: laminares; Pw: pinwheels. Part:
partículas virales. Cl: cloroplasto
2.17.10. Acción. Producción de un antisuero para la detección del Sweet potato
feathery mottle virus (SPFMV) en batata (Ipomoea batatas (L.) Lam).
Responsable: Liliana Di Feo, [email protected] (IPAVE)
Participantes: A. Faroni, A. Luque
A partir de dos antisueros de primera sangría obtenidos en sendas conejas (a los 21 y
nueve días desde la primera inyección de virus purificado vía intradérmica múltiple e
intramuscular, respectivamente, se purificaron dos IgG. Ambas (1mg/ml) fueron
conjugadas con fosfatasa alcalina y, posteriormente, en DAS-ELISA, se las enfrentó
con su conjugado enzimático. Como control, se incluyó una IgG contra SPFMV
producida anteriormente en IPAVE, que se combinó con los nuevos conjugados y
viceversa. A partir de los resultados obtenidos, se determinó que las diluciones óptimas
de las IgG y de los conjugados enzimáticos fueron de 1:1000 y 1:500, respectivamente.
Aunque posean menor especificidad (determinación efectuada por NCM-ELISA), se
deberán preparar nuevos reactivos de diagnóstico, a partir de los antisueros de segunda
sangría.
2.17.11. Acción. Caracterización de virus en Cucurbitáceas Responsable: María Cecilia Perotto [email protected] (IPAVE)
Participantes: M. Celli, V. Conci (IPAVE)
Las virosis de cucurbitáceas están difundidas en todo el mundo y son consideradas un
factor limitante de la producción. Existen más de 59 especies de virus citados que
infectan cucurbitas pertenecientes a los principales géneros de virus de plantas (Zitter, et
al 1996; Yuki, et al 2000; Jossey and Babadoost, 2008; Kassem, et al 2007; Turechek,
at al 2010; Peng, et al 2011; Yamasaki, et al 2011). Los síntomas típicos son mosaicos y
decoloración internervales, reducción del tamaño foliar y varios tipos de deformaciones.
El tipo y gravedad de síntomas depende mucho de la edad de la planta pero siempre los
más severos se observan en hojas jóvenes. Infecciones tempranas producen enanismos
muy graves, que conlleva el aborto floral y/o producción de escasos frutos no
comerciales.
En Argentina se cultivan numerosas especies de cucurbitáceas: melón, sandía, calabaza,
zapallo y pepino, en una diversidad de regiones.
P
w S
c
L
Cl
Part
58
Hasta el momento en Argentina fueron detectados el cucumovirus: Cucumber mosaic
virus (CMV), y los potyvirus: Watermelon mosaic virus (WMV), Papaya ringspot virus
(PRSV) y Zucchini yellow mosaic virus (ZYMV) (Zapata, 2009; Gracia, 2000; Gracia
and Feldman, 1984; 1986; Nome, et al 1974). Siendo éstos los más comunes y
prevalentes a nivel mundial. En la naturaleza, estos virus son transmitidos de forma no
persistente por áfidos.
Los primeros reportes de estos patógenos fueron realizados en base a ensayos
serológicos y hospedantes diferenciales. El WMV, entre 1983-86, se reconoció su
presencia en cinco especies de cucurbitas en altos porcentajes (>74%). El PRSV fue
detectado en 1987 a partir de muestras de C. moschata en Santiago del Estero, y ZYMV
en 1996, en muestreos C. pepo y C. máxima provenientes de Salta.
El objetivo de este trabajo fue detectar e identificar molecularmente la presencia de los
potyvirus en cultivos de cucurbitas.
Con el objetivo de conocer la situación en nuestro país, se procedió a la visita y
recolección de muestras con síntomas de virus de zapallo (28 lotes), melón (8 lotes) y
en menor cantidad sandía y pepino (2 lotes) en las provincias de San Juan, Mendoza,
Santiago del Estero, Buenos Aires, Tucumán y Córdoba.
A partir de los estudios realizados recientemente se confirmó la presencia de los virus,
CMV, PRSV, WMV y ZYMV por técnicas serológicas, moleculares y de microscopía
electrónica. Se comenzó con la caracterización molecular de los aislamientos de
potyvirus. Para el caso de WMV, se comenzó con es estudio de la variabilidad
intraespecífica de la cápside proteica. El WMV es uno de los virus de cucurbitas más
comunes, está mundialmente distribuido y afecta un amplio rango de hospedantes. El
objetivo de este trabajo fue detectar la variabilidad intraespecífica del WMV presente en
Argentina. Se analizaron plantas de zapallo y melón con síntomas de virus provenientes
de diferentes provincias productoras de Argentina, (Mendoza, San Juan, Santiago del
Estero y Buenos Aires). Se amplificaron fragmentos genómicos de 843 bp que incluían
el gen completo de la cápside proteica (CP) del virus, mediante RT-PCR con primers
específicos que luego fueron secuenciados. Las secuencias fueron analizadas usando
software MEGA 5 y se realizó un alineamiento múltiple de nucleótidos (nt) por el
método de CLUSTAL W. Se identificaron siete aislamientos diferentes que exibieron
un porcentaje de identidad de nt de la CP que varió entre el 90,4% y el 98% con otras
32 secuencias del WMV citadas en el GenBank y provenientes de diferentes países.
Mediante este análisis, se confirmó la identidad de los aislamientos de acuerdo con los
criterios de demarcación del ICTV establecidos para el género Potyvirus. El árbol
filogenético muestra que los aislamientos argentinos están incluidos en dos de los tres
grupos establecidos para este virus, con valores de Bootstrap (n=1000) (Figura 10). Se
observó que dos de las muestras provenientes de Mendoza pertenecen al grupo 2
mientras que las restantes cinco, que provenían de las otras provincias, pertenecen al
grupo tres.
59
Figura 10. Arbol filogenético del gen de la cápside del Watermelon mosaic virus. se muestran valores de
boostrap en los nodos relevantes. Bootstrap (n=1000).
Se obtuvieron secuencias parciales de la región de la cápside protéica de los potyvirus
PRSV y ZYMV. Se detectó e identificó molecularmente la presencia de los potyvirus en
cultivos de cucurbitas. Se muestrearon cultivos de zapallo y melón que presentaban
síntomas típicos de virosis en las localidades de San Pedro (Buenos Aires) y Colonia
Gamara (Santiago del Estero). Se detectó la presencia de potyvirus mediante kit de
diagnóstico de BIOREBA, en la totalidad de las muestras analizadas (9).
Posteriormente, se diseñaron iniciadores específicos para WMV, PRSV y ZYMV que,
amplifican fragmentos de la cápside proteica de 920 pb, 475pb y 549pb de cada virus
respectivamente. Mediante RT-PCR se logró amplificar fragmentos del tamaño
esperado de PRSV y ZYMV constatando la presencia de infecciones mixtas. Los
productos de PCR, tres de cada virus, fueron secuenciados y se observaron altos
porcentajes de identidad con las secuencias publicadas en el GenBank, 99% para PRSV
y 98-99% para ZYMV. Las secuencias genómicas obtenidas en este trabajo constituyen
las primeras de aislamientos argentinos de PRSV y ZYMV.
60
A través de técnicas de microscopía electrónica, se pudo observar las partículas virales,
que son filamentosas y flexuosas, de aproximadamente 720-850 nm de largo y 12-15
nm de diámetro (Figura 11 A). También se realizaron cortes ultrafinos y se observaron
inclusiones típicas producidas por el género Potyvirus como pinwheels, molinetes y
laminares (Figura 11 B).
Figura 11 A-Partículas virales vistas al microscopio electrónico. B-Corte ultrafino de tejido foliar de planta de
zapallo infectada. Se observan inclusiones tipo molinetes (a), cilíndricas (b) y laminares (c) producidas por
potyvirus
2.17.12. Acción. Virus que infectan frutilla
Responsable: V. Conci [email protected] (IPAVE)
Paticipantes: C. Lucíani, F. Asinari, M. Celli, M.C. Perotto, K. Torrico, E. Cafrune, L.
Conci, F. Guzman, A. Saavedra Pons
2.17.12.1. Strawberry crinkle virus (SCV)
Se continuó con la identificación y caracterización molecular de SCV y se envió para su
publicación el primer reporte de SCV en Argentina.
Una secuencia parcial del gen L de la polimerasa 1897 nt (Acc. No. KJ748457) fue
depositado en el GenBank.
El SCV es responsable de una importante reducción en el rendimiento y en la calidad de
la fruta. La presencia de SCV fue detectado en Argentina desde 2010 en plantas de
frutilla provenientes de Lules, Tucumán mediante RT-PCR anidado con cebadores
específicos, que amplificaron un fragmento de 573pb. La secuencia de dicho fragmento
reveló 84,1% de identidad con secuencias publicadas en el GenBank.
En este trabajo fue utilizado el par de cebadores mencionado y se diseñaron dos pares
nuevos que amplifican fragmentos de 744nt y 687nt respectivamente. Con los tres juegos
de cebadores mencionados se logró amplificar fragmentos de los tamaños esperados, que
fueron clonados y secuenciados.
El ensamblado de los tres fragmentos genómicos permitió obtener una secuencia
consenso de 1897nt. El porcentaje de identidad con secuencias publicadas en el
GenBank, varió entre 95,2% con un aislamiento de SCV de Alemania (AY250586 -
cobertura 100%) y 89,1% con uno proveniente de los Países Bajos (AY331388 -
cobertura 83%). Se hizo un análisis filogenético con las secuencias publicadas en el
GenBank y la obtenida desde el aislamiento argentino (Figura 12). Los resultados
confirman la presencia del virus en plantas de frutilla de Argentina con altos porcentajes
de identidad con otros aislamientos publicados.
A B
a
b
c
61
Figura12. Arbol filogenético de aislamientos de SCV para un fragmento que codifica una región parcial de
258nt de la proteína polimerasa L. El árbol filogenético se obtuvo por el método de máxima similitud basado
en el modelo Tamura 3 parámetros (Tamura K. 1992) con el programa MEGA6 (Tamura et al. 2013). El
análisis contempló 15 secuencias de nucleótidos.
2.17.12.2. Strawberry mottle virus (SMoV)
Parte de la tesis doctoral de Florencia Asinari (CONICET-IPAVE)
El SMoV se trasmite por áfidos, de manera semi-persistente y los síntomas que
presentan las plantas infectadas pueden ser visibles o latentes. El objetivo de este
trabajo fue caracterizar molecularmente un aislamiento de SMoV proveniente de
Tucumán, Argentina. Para ello, se purificó ARN total de frutilla cv Camarosa infectada
con el virus y se amplificó y secuenció un fragmento de 523pb, correspondiente a la
región 3´ no codificante del ARN2 del virus. Las secuencias de nucleótidos generadas
fueron comparadas con 20 secuencias parciales y dos completas de SMoV disponibles
en el National Center for Biotechnology Information (NCBI). Los datos fueron
analizados con el programa LASERGENE (DNASTAR Inc. vers. 5. 2001, Madison,
WI, USA) y se realizaron alineamientos múltiples progresivos, con el programa Clustal
W (www.ebi.ac.uk/clustalw). Los porcentajes de identidad se obtuvieron a partir del
programa MegAling del paquete DNASTAR. Este análisis arrojó porcentajes de
identidad que variaron entre 84 y 100%, correspondiendo la mayor identidad con un
aislamiento de España. Debido a la escasa información existente respecto a la secuencia
del SMoV, se continúa trabajando para obtener el genoma completo del aislamiento
argentino.
2.17.12.3. Diagnóstico de Strawberry mottle virus (SMoV)
Parte de la tesis doctoral de Florencia Asinari (CONICET-IPAVE)
Hasta el presente, el SMoV se detectó sólo por RT-PCR y no hay disponible suero para
su diagnóstico. Una alternativa más sencilla al RT-PCR, son el uso de sondas de
hibridación molecular no radioactiva marcadas con digoxigenina. Esta técnica, a
diferencia del RT-PCR, permite diagnosticar un elevado número de muestras a la vez.
62
En este trabajo, se diseñó una sonda de hibridación molecular, para diagnosticar la
presencia del virus SMoV en plantas de frutilla.
Para el trabajo se emplearon plantas de frutilla de la variedad Camino Real que
manifestaban enanismo, achaparramiento, mosaico y deformación de hojas las que
fueron evaluadas mediante RT-PCR con primers específicos para SMoV (Thompson et
al., 2003). Aquellas que revelaron la presencia del virus, fueron seleccionadas para
evaluar la sonda desarrollada. Como control negativo se usaron plantas de la indicadora
Fragaria virginiana UC-12 mantenida en invernadero bajo condiciones controladas
(Figura 13).
Figura 13. Fragaria x ananassa con infecciones multiples (derecha) y planta sana, control, indicadora Fragaria
virginiana UC12 (izquierda)
Desarrollo de la sonda de ADNc. Para el desarrollo de la sonda de ADNc, se
diseñaron iniciadores específicos en el extremo 3´ no codificante del genoma viral, que
amplifican una banda de 511 pb. Para el diseño de los mismos, se usaron como
referencias dos ARN genómicos completos publicados en el GeneBank (número de
acceso AJ311875 para el RNA1 y AJ311876 para el RNA2). Para el testeo de los
iniciadores, se realizó un RT-PCR de prueba con el kit Access RT PCR System®
(Promega) siguiendo las instrucciones del fabricante. Las condiciones de ciclado fueron
de un primer ciclo de 45 minutos a 45 °C para la transcripción reversa, seguido de 35
ciclos de 30 seg a 94°C para la desnaturalización, 45 seg a 60°C para la hibridación y 1
min a 68ºC para la extensión, con una extensión final de 7 min a 68ºC. El producto de
RT-PCR fue separado por electroforesis en gel de agarosa al 2% y visualizado bajo luz
ultra violeta luego del teñido con bromuro de etidio. La banda obtenida se purificó a
partir del gel con el kit Wizard SV gel and PCR Clean Up system® (Promega) y se
clonó con pGEM®-T Easy Vectors (Promega). Las colonias obtenidas se analizaron por
PCR como fue descripto previamente. Se purificó el ADN plasmídico con el kit
QIAGEN® Plasmid Purification y se secuenció, para corroborar la identidad de dicho
fragmento. Se linealizó el plásmido con la enzima Sac 1 a 37°C (Biolabs) durante 3
horas. Una vez linealizado el plásmido, se procedió al marcado del mismo con el kit
DIG DNA labeling and detection KIT (Roche), siguiendo las instrucciones del
fabricante.
Puesta a punto de la sonda. A los fines de determinar la concentración de uso de la
sonda obtenida (eficiencia de marcación), se realizaron diluciones seriadas de 1/10 a
1/100.000 de: sonda de concentración conocida (control positivo del kit); ADN sin
marcar (control negativo del kit) y de la sonda obtenida. Se sembró 1 μl de cada
dilución en la membrana, fijándose posteriormente por irradiación con luz UV durante 3
minutos. Se siguió con el desarrollo de la técnica siguiendo las instrucciones del
fabricante. La reacción se detuvo cuando la membrana comenzó a tener saturación de
63
color. Se determinó la concentración relativa de la sonda en estudio, en función de la
semejanza con la intensidad de coloración de la concentración conocida del ADN
marcado del KIT (control positivo). Para ajustar la técnica, se evaluaron un control
negativo a partir de ARN de plantas de cebolla (heterólogo) y controles positivos que
consistieron en ADN plasmídico purificado que incluye los 511 pb del genoma del
SMoV (homólogo al marcado para la sonda) y productos de RT-PCR con cebadores
específicos que levantan los 511 pb del genoma específico del SMoV, desnaturalizados
a 70 y 100ºC respectivamente. Estos últimos controles garantizan la hibridación del
fragmento específico del SMoV, ya que el resto de la marcación está en los 3015pb
correspondiente al plásmido.
Procesamiento del material vegetal. Se probaron diferentes métodos de extracción de
ácidos nucleicos a partir de hojas de frutilla infectadas con SMoV, para seleccionar el
que mejor se adapte para la técnica de la sonda de hibridación molecular. Se evaluó: 1)
extracción de ARN total de planta con el Kit Qiagen (RNeasy Plant Mini Kit); 2)
extracción de ARN total de planta con TRIzol® reagent (Invitrogen) siguiendo las
instrucciones del fabricante; 3) extracción de ácidos nucleicos totales CTAB
modificado; 4) macerado de planta en buffer de extracción frutilla adicionando 2% de
PVPP (Polyvinyl-polipyrrolidone); 5) macerado de planta en buffer de extracción
frutilla (Kaden-Kreuziger et al., 1995) adicionando 2% de PVPP (Polyvinyl-
polipyrrolidone), luego se prosiguió con una extracción con CTAB (Chang et al., 2007)
a partir de 200µl de dicho macerado y 6) Extracción de ARN total de planta con CTAB
- LiCl.
Detección de SMoV en plantas de frutilla con sonda de hibridación molecular. Se
utilizaron como templado, extracciones de ácidos nucleicos totales (CTAB modificado)
conservadas a -80°C. Las muestras se desnaturalizaron a 100ºC durante 3 min y se
transfirieron inmediatamente a hielo por 3 min. Se sembró 1µl de las muestras y de los
controles en membrana de nylon, que previamente se centrifugaron 4 min a 9000 rpm.
Se dejó secar la membrana a temperatura ambiente. Para fijar los ácidos nucleicos a la
membrana, se colocó durante 3 min bajo luz UV. Se prehibridó la membrana en
solución de pre-hibridación (5X SSC pH 7; 1% solución de bloqueo; 0.1% N-
Lauroylsarcosine; 0.02% sodium dodecyl sulfate-SDS-) durante 90 min a 65ºC y en
agitación constante. Se transfirió la membrana a una solución nueva, formada por
solución de prehibridación y sonda desnaturalizada (100°C durante 10 minutos, luego 3
minutos en hielo) a una concentración de 12 ng/ul. Se hibridó la membrana a 65ºC
durante toda la noche en agitación constante. Evitando dejar secar la membrana se
hicieron los lavados posthibridación: a) con bajas condiciones de astringencia, dos
lavados a temperatura ambiente durante 5 minutos en agitación constante en solución de
lavado 1 [0.1% (P/V) SDS; 2X SSC pH: 7]; b) con altas condiciones de astringencia, 2
lavados a 65ºC durante 15 minutos en agitación constante en solución de lavado 2
[0.1% (P/V) SDS; 0.5X SSC pH: 7]. Para la detección inmunológica, se incubó la
membrana en tampón de bloqueo (2% de agente bloqueante del kit en buffer maleico
pH 7,5) durante 30 min en agitación constante; se transfirió la membrana a una nueva
solución de bloqueo, con el agregado de antidigoxigenina-conjugada con fosfatasa
alcalina (relación 1/5000) durante 30 min en agitación constante a temperatura
ambiente. Los siguientes lavados de la membrana fueron dos veces en buffer maleico
pH 7,5 (100mM ácido maleíco; 15mM cloruro de sodio) durante 15 min en agitación
constante. Se equilibró la membrana en buffer de detección pH 9,5 (100mM Tris
cloruro pH 9.5; 100mM cloruro de sodio; 50mM cloruro de magnesio) durante 3 min.
Se reveló la membrana agregando 10 ml de buffer de detección pH 9,5 junto con 200 μl
64
de solución de sustrato de color (NBT/BCIP), sin agitación y en ausencia de luz.
Cuando la reacción fue satisfactoria (determinada por la saturación de color) se detuvo
la reacción lavando la membrana con agua bidestilada estéril.
Con el propósito de corroborar la capacidad de detección de la sonda, se analizaron
diferentes tejidos de la planta. Para ello se probaron hojas jóvenes, maduras y viejas, y
peciolos provenientes de plantas previamente identificadas como infectadas con SMoV.
Resultados
Diseño de cebadores específicos para Strawberry mottle virus. Los primers diseñados
permitieron la amplificación del fragmento genómico esperado (511 pb) a partir de
plantas de frutilla var. Camino Real con síntomas típicos de virus.
Puesta a punto de la sonda. Para evaluar la eficiencia de marcación y la concentración
aproximada de la sonda se determinó mediante valoración cualitativa a través de una
lectura visual, comparando la intensidad de reacción de la sonda sintetizada con el
control positivo de concentración conocida, del kit.
En función de la semejanza de coloraciones, la estimación de la concentración de la
sonda de hibridación molecular fue de 4ng/µl, presentando una intensidad de reacción
decreciente hasta diluciones de 1/1000 (Figura 14).
Como prueba complementaria, se utilizó un control negativo heterólogo y controles
positivos homólogo y producto de RT-PCR desnaturalizado a 70 y 100ºC
respectivamente. Los resultados obtenidos en dicha prueba muestran el correcto
funcionamiento de la sonda de hibridación molecular, mediante la ausencia de reacción
con el control negativo (heterólogo) y los spots de igual intensidad de reacción hasta
diluciones de 1/1000 con el homólogo y reacciones de intensidad decreciente hasta
1/1000 en los productos de RT-PCR, siendo más intensa la reacción para el RT-PCR
desnaturalizado a 100ºC (controles positivos) (Figura 15).
Figura 14. Medición cualitativa de la
concentración de sonda de hibridación molecular
sintetizada, mediante el uso de controles positivos
y negativos provistos por el Kit. (+) control
positivo del Kit (5ng/µl). (S) sonda sintetizada
(4ng/µl). (-) control negativo del Kit
Figura 15. Prueba complementaria para la puesta
a punto de la sonda de hibridación molecular.
(Ho): Homólogo, ADN plasmídico purificado.
(He): Heterólogo, planta de cebolla. P1: Producto
de RT-PCR, amplificado con los primers
específicos, desnaturalizado a 70º por 3 min. P2:
Producto de RT-PCR, amplificado con los primers
específicos, desnaturalizado a 100º por 3 min
Procesamiento del material vegetal. De los diversos protocolos de extracción
probados, tanto de RARN como de ácidos nucleicos totales, el método que mejor se
adaptó a la técnica de hibridación molecular, fue el de CTAB modificado; con
resultados adecuados en la intensidad de reacción de las muestras probadas (Figura 16).
65
Figura 16. Evaluación de diferentes métodos de extracción de SMoV mediante valoración de intensidad de
color de la hibridación con sonda específica en membrana de nylon. Ho: Homólogo, ADN plasmídico
purificado. He: Heterólogo, planta de cebolla. P1: Producto de RT-PCR, amplificado con los primers
específicos, desnaturalizado a 70º por 3 min. P2: Producto de RT-PCR, amplificado con los primers
específicos, desnaturalizado a 100º por 3 min. 1. Extracción de ARN total de planta con el Kit Qiagen (RNeasy
Plant Mini Kit). 2. Extracción de ARN total de planta con TRIzol® reagent (Invitrogen) following the
manufacturer’s instructions. 3. Extracción de ácidos nucleicos totales CTAB modificado. 4. Macerado de
planta en tampón de extracción de frutilla adicionando 2% de PVPP (Polyvinyl-polipyrrolidone). 5. Macerado
de planta en buffer de extracción frutilla adicionando 2% de PVPP (Polyvinyl-polipyrrolidone), seguido de
extracción con CTAB a partir de 200µl de dicho macerado. 6. Extracción de ARN total de planta con CTAB-
LiCl
Detección de SMoV en plantas de frutilla con sonda de hibridación molecular. El
uso de la sonda de hibridación molecular detectó tanto al homólogo como al control
positivo en diluciones de hasta 1/10000, sin reacción con el heterólogo (control
negativo) (Figura 17ª) ni con el testigo sano (Figura 17b). El SMoV fue detectado
mediante el uso de la sonda de hibridación molecular desarrollada, evaluando hojas en
diferentes estadíos fenológicos y pecíolo, y se observó reacción levemente más marcada
en hojas maduras y pecíolo (Figura 18).
a) b)
Figura 17 a) Controles positivos (Ho y P2) y negativo (He) para la sonda de hibridación molecular, en
diluciones seriadas 1: puro; 2: 1/10; 3: 1/100; 4: 1/1000; 5: 1/10000; 6: 1/100000; 7: 1/1000000 y 8: 1/10000000.
Ho: Homólogo, ADN plasmídico purificado. He: Heterólogo, planta de cebolla. P2: Producto de RT-PCR,
amplificado con los primers específicos, desnaturalizado a 100º por 3 min.
b) Muestra pura (P) de planta sana. 1) hoja vieja; 2) hoja madura; 3) hoja joven; 4) pecíolo.
Figura 18. Evaluación de marcación con sonda de hibridación molecular en hojas con diferentes estadíos
fenológicos y pecíolo. Plantas enfermas (planta 1 y 2). P. Muestra pura. 1/10. Muestra diluida 1/10. 1) hoja
vieja; 2) hoja madura; 3) hoja joven; 4) pecíolo.
66
2.17.12.4. Análisis de recombinación de secuencias del gen de la capside
proteica de Strawberry mild yellow edge virus (SMYEV)
Parte de la tesis doctoral de A.K. Torrico (IPAVE)
La recombinación tiene un papel destacado en la evolución de los virus de ARN, debido
a que nuevas variantes genéticas pueden surgir por combinar juntos dos o más genomas
parentales. SMYEV es uno de los patógenos virales más comunes en el cultivo de
frutilla; se conocen numerosos aislamientos del virus que han sido secuenciados en
distintos países. El objetivo de este trabajo fue analizar distintas secuencias del gen de
la cápside proteica (CP) de aislamientos argentinos y de distintas partes del mundo, para
detectar eventos de recombinación. Se trabajó con plantas infectadas con el virus de
forma natural y en infección simple y mixta. Se obtuvieron secuencias de 12
aislamientos de Argentina provenientes de frutillas de Lules (Tucumán); se realizó un
alineamiento múltiple junto con 30 secuencias del gen de la CP citadas en el GenBank,
que fueron analizadas por el programa RDP3. Se logró identificar la presencia de dos
secuencias recombinantes, la primera formada por dos secuencias argentinas, y la
segunda, por una de Chile y otra de origen desconocido, pero semejante a una de
Estados Unidos. Estos análisis confirman la existencia de la variabilidad de SMYEV
por intercambio de material genético.
2.17.13. Acción. Virus que infectan ajo
Responsable: Marcos Celli [email protected] (IPAVE)
Participantes: A.K. Torrico, L. Conci y V.C. Conci
Secuencia genómica del Garlic common latent virus (GarCLV) y análisis
filogenético. Garlic common latent virus (GarCLV) es un Carlavirus frecuentemente
mencionado infectando ajo. En este trabajo se reporta la variabilidad molecular de
diferentes aislamientos del virus en Argentina. Para ello, se clonó y secuenció el gen de
la cápside proteica (CP) de siete aislamientos. El juego de cebadores utilizado CarV3 y
PC-R4 (Tsuneyoshi et al., 1998) permitió amplificar los fragmentos genómicos
esperados que incluyeron el gen que codifica la CP. Fueron identificados los marcos de
lectura de la CP, un codón de inicio y un codón de terminación o “stop”
correspondientes a los tripletes “ATG” y “TGA o TAG”, respectivamente. Las
secuencias de nucleótidos (nt) de la CP obtenidas para los siete aislamientos presentaron
960 nt incluido el codón de terminación, 320 amino ácidos (aa) deducidos, con un peso
molecular calculado de 35,5 kDa.
En el extremo N-terminal de la CP fue encontrada la mayor variabilidad y en el extremo
C-terminal de todas las secuencias fue identificado el motivo AAFD conservado entre
los virus filamentosos de plantas (Koonin and Dolja, 1993) y el motivo TGGXXG
conservado entre los Carlavirus (Hataya et al., 2000).
La comparación de las secuencias con otras 42 depositadas en el GenBank reveló una
identidad de nt que varió entre 80,4 y 97,6% y de aa entre 93,4 y 99,4%, lo que permitió
confirmar la presencia del GarCLV, según los criterios de demarcación de especie
establecidos por el ICTV. El análisis filogenético mostró la existencia de dos grupos o
razas (Figura 18), concordando con los encontrados por Pramesh y Baranwal (2013).
Sin embargo, una secuencia de Alemania (X81138) se separa del resto sugiriendo la
posibilidad de un tercer grupo. En 1998, Tsuneyoshi et al. también realizaron un
análisis filogenético de cuatro secuencias y encontraron que la secuencia de GarCLV
originaria de Alemania se separaba de las demás analizadas.
67
Fajardo et al. (2001) propusieron que el virus GarCLV en Brasil tenía origen de China;
sin embargo en este trabajo vemos, en el análisis filogenético, que los aislamientos de
Argentina y Brasil están muy próximos y que se agrupan junto a secuencias
provenientes de Australia, Holanda, Alemania, y dentro del mismo cluster, aunque un
poco más lejos, de los aislamientos de India y de Corea del Sur.
Figura 19. Árbol filogenético de consenso construido con el programa Mega 5.10 (Tamura et al., 2011) método
Neighbor-Joining por máxima probabilidad, modelo GTR (general time reversible) con G+I (invariant sites and
distributed range) y 1000 repeticiones a partir del alineamiento de secuencias de nucleótidos que codifican la
cápside proteica del Garlic common latent virus (GarCLV). Los valores en las horquillas indican los
porcentajes de 1.000 repeticiones.
HQ873853.China
HQ873852.USA
GQ475420.USA
GQ475422.USA
HQ873861.China
HQ873857.China
GQ475421.USA
HQ873855.China
GQ475419.USA
HQ873859.China
HQ873858.China
HQ873860.USA
HQ873854.China
HQ873856.USA
HQ873862.USA
GQ475423.USA
HQ873863.USA
KF862692.Poland
KF862698.Poland
KF862700.Poland
KF862701.Poland
KF862697.Poland
KF862696.Poland
KF862695.Poland
KF862699.Poland
KF862693.Poland
KF862694.Poland
KF862703.Poland
KF862702.Poland
AB004566.Taiw an
JQ818255.India
JQ818259.India
JQ818256.India
JQ818257.India
JQ818258.India
DQ520092.South Korea
Argentina-Blanco4
Argentina-Blanco3
Argentina-Colorado
KJ124848.Argentina-Morado2
KJ124846.Argentina-Blanco2
KJ124845.Argentina-Blanco1
AF228416.Brazil
AB004805.Germany
JF320810.Australia
KJ124847.Argentina-Morado1
AB004804.The Netherlands
JQ899445.Australia
X81138.Germany
100
100
100
100
75
100
73
72
70
94
66
92
89
94
88
82
100
0,02
68
Referencias:
Fajardo TVM, Nishijima M, Buso JA, Torres AC, Ávila AC, Resende R. 2001.Garlic viral
complex: Identification of Potyviruses and Carlavirus in central Brazil. Fitopatologia Brasileira
26(3):619-626.
Hataya T, Uchino K, Arimoto R, Suda N, Sano T, Shikata E, Uyeda I. 2000. Molecular
characterization of Hop latent virus and phylogenetic relationships among viruses closely
related to carlaviruses. Arch Virol 145:2503-2524.
Koonin EV, Dolja VV. 1993. Evolution and taxonomy of positive- strand RNA viruses:
implications of comparative analysis of amino acid sequences. Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol.
28:375–430.
Pramesh D, Baranwal VK. 2013. Molecular characterization of coat protein gene of Garlic
common latent virus isolates from India: an evidence for distinct phylogeny and recombination.
Virus Genes. [Epub ahead of print].
Tsuneyoshi T, Matsumi KT, Deng TC, Sako I, Sumi S. 1998. Differentiation of Allium
carlaviruses isolated from different parts of the world based on the viral coat protein sequence.
Archives of Virology 143:1093-1107.
2.17.14. Acción. Técnicas moleculares para la detección de diferentes especies de
begomovirus involucradas en infecciones mixtas en tomate
Responsable: Paola M. López Lambertini, [email protected]
Participantes: C.G. Vaghi Medina, N. Puyané, V.A. Bornancini (IPAVE)
En el marco del Proyecto específico AEBIO-242411-INTA-2009 se generaron 29
secuencias completas de begomovirus que infectan tomate presentes en Argentina. La
información de las secuencias de los componentes genómicos ADN-A y de ADN-B
completos se utilizaron para diseñar iniciadores y sondas con el fin de identificar
especies de begomovirus mediante PCR-real time.
2.17.15. Acción. Identificación de virus en pimiento de la Región NOA
Responsable: Paola M. López Lambertini, [email protected]
Participantes: C.G. Vaghi Medina, N. Puyané, V.A. Bornancini (IPAVE)
Los cultivos de pimiento en el NOA presentan un porcentaje de plantas con síntomas
característicos de virosis que oscila entre un 20-30% en todas las campañas. Se purificó
ADN y ARN de hojas de pimiento con síntomas. Se realizó PCR y RT-PCR con
diferentes iniciadores degenerados para detectar begomovirus, tospovirus y potyvirus.
Las muestras positivas para tospovirus se volvieron a analizar mediante Multiplex RT-
PCR para diferenciar especies, resultando positivas para Groundnut ringspot virus
(GRSV). Se continúa amplificando, clonando y secuenciando para determinar las otras
especies virales presentes.
2.17.16. Acción. Obtención de antisuero específico para Leisfonia xyli subsp. xyli en
caña de azúcar
Responsable: R. Haelterman [email protected] (IPAVE)
Participantes: P. Tolocka, F. Giolitti, A. Rago (IPAVE)
El raquitismo de las socas de la caña de azúcar es la principal enfermedad bacteriana
que afecta al cultivo en el mundo, y se presenta en los cañaverales argentinos. Es
causada por Leifsonia xyli subsp. xyli,, siendo de difícil aislamiento debido a su
69
naturaleza fastidiosa, por lo que es necesario confirmar su diagnóstico a través de
diferentes métodos. Uno de los más utilizados son los serológicos con la dificultad de
no contar con reactivos comerciales. Para realizar el antisuero, se caracterizó la cepa
aislada el año anterior. A través de tinción de Gram y solubilidad con KOH las
bacterias se determinaron como Gram (+). Se realizaron las pruebas de catalasa,
hidrólisis de almidón, licuefacción de gelatina, utilización de citrato, crecimiento en
agar nutritivo, Vogues- Proskauer y metabolismo oxidativo-fermentativo de la glucosa,
siendo sólo positivo para catalasa (Figura 19). En observaciones al microscopio
electrónico, se apreciaron bacilos rectos y curvos de dimensiones pequeñas
comprendidas entre 1.0-2.65 μm de largo y 0.20-0.35 μm de ancho, y se manifestó el
pleomorfismo típico de L. xyli subsp. Xyli; además de la presencia de mesosoma y la
carencia de flagelos (Figura 20). Las colonias también fueron evaluadas a través de
PCR con iniciadores específicos CxxITSf-CxxITSr y Cxx1-Cxx2, produciendo las
bandas esperadas de 305 y 438pb respectivamente. Todos estas pruebas permiten
identificar el aislamiento obtenido como L. xyli subsp. xyli .
Figura 20. Pruebas bioquímicas realizadas con aislamiento de Lxx
Figura 21. L. xyli subsp. xyli observadas en el microscopio electrónico en donde se observan los mesosomas.
(fotos: Dra. Claudia Nome.
El inóculo se obtuvo resuspendiendo las bacterias y lavando tres veces con solución
fisiológica, ajustando la concentración a 1x108
UFC. Para las inmunizaciones se
utilizaron dos conejas neozelandesas. Se emulsionó la suspensión bacteriana con
adyuvante incompleto de Freund (1:1) y se realizaron cuatro inyecciones subcutáneas en
el lomo de 0,2ml cada una y dos intramusculares de 0,8 ml de emulsión en cada pata
trasera. Este esquema se repitió cada siete días durante un mes, realizando la sangría a
los 30 días de la primera inyección. Veinte días después se efectuó un booster de 0,8 ml
70
de emulsión en cada pata trasera, sangrando los conejos 11 días después. Empleando la
técnica de dot blot, se pudo detectar Lxx con diluciones del antisuero superiores a
1/1.000.000. Además, los mismos mostraron alta especificidad al no reaccionar frente a
otras bacterias de caña de azúcar como Xanthomonas albilineans y Acidovorax avenae,
causantes de la escaldadura foliar y estría roja, respectivamente. Con estos antisueros se
implementó la técnica de impresión (tissue printing) (Figura 22), y se determinó una
dilución de empleo de 1/7000. Se cuenta con un método de diagnóstico serológico
masivo, rápido y robusto. Es la primera vez que se producen antisueros a partir de un
aislamiento argentino de Lxx, fundamentales para el diagnóstico de esta importante
enfermedad que afecta caña de azúcar en Argentina.
Caña libre de Lxx cañas positivas para Lxx
Figura 22. Técnica de tissue printing
2.17.17. Acción. Caracterización de aislamientos de Huanglongbing en el país
Responsable: P. Tolocka (IPAVE)
Participantes: F. Guzmán, R. Haelterman (IPAVE), B. Canteros (EEA Bella Vista)
El Huanglongbing (HLB) es una enfermedad que afecta la producción de cítricos. Está
asociada a una bacteria localizada exclusivamente en los tubos del floema, Gram-
negativa, denominada Candidatus Liberibacter spp. Se transmite por injerto y a través
de un vector Diaphorina citri.
En América, se la considera como una enfermedad emergente, ya que síntomas de HLB
fueron encontrados por primera vez en plantas de naranjo dulce en Brasil en el 2004.
Posteriormente, apareció en EEUU, República Dominicana, Cuba, México y Nicaragua.
La planta afectada, inicialmente, manifiesta amarillamiento que se extiende de manera
generalizada ocasionando la muerte de la misma en algunos meses o años. Las hojas
presentan manchas irregulares y asimétricas, moteado difuso, asimétría, engrosamiento
y aclaramiento de las nervaduras, con aspecto corchoso. En frutos se produce
deformación y asimetría, reducción del tamaño, aumento de espesor de la cáscara y de
la acidez, inversión de color, reverdecimiento de la cáscara, aborto de semillas, y caída
prematura.
Si bien nuestro país mantiene su condición de libre de HLB, se presentó un brote de la
enfermedad en el Departamento General Manuel Belgrano, al norte de la provincia de
Misiones. A partir de este material, se procedió a realizar la caracterización del
aislamiento detectado en el país. Se purificó ADN total (Plant Mini Kit, Qiagen) a partir
de muestras de plantas de cítricos infectadas con HLB y de planta sana utilizada como
control negativo. Mediante PCR y empleando dos juegos de cebadores: fwHLBas-
rvOi2, y fwD1-rvP1 que corresponde a parte de la secuencia del gen 16S RNA
ribosomal, se amplificaron fragmentos de 1100pb y 1500pb, respectivamente. Los
productos amplificados se clonaron en el vector Pcr®4-TOPO (Invitrogen) se
transformaron células de Escherichia coli DH5α y se secuenciaron varios clones desde
ambos extremos (M13Fw-M13Rv) en secuenciadores automáticos (INTA Castelar).
Hasta el momento, sólo fue posible obtener clones a partir de juego de cebadores
71
fwHLBas-rvOi2. Las secuencias fueron analizadas mediante ClustalW, MegAlign
(DNAstar, versión 8) y BLAST (nucleotide-blast), para calcular el porcentaje de
similitud nucleotídica con otros integrantes de Ca. Liberibacter (depositados en NCBI).
Del análisis de las secuencias, se obtuvo un valor del 99% de similitud con Ca.
Liberibacter var. Asiático, que es la especie predominante en árboles con esta
enfermedad. En este momento, se continúa trabajando en el análisis filogenético basado
en el gen 16S rRNA que permita caracterizar molecularmente el patógeno y también, se
siguen realizando ensayos de clonado con los cebadores fwD1-rvP1.
2.17.18. Acción. Implementación de técnicas serológicas, moleculares y desarrollo
de la técnica de análisis de ácidos grasos, para la identificación de Xylella fastidiosa
causante del CVC
Responsable: P. Tolocka [email protected] (IPAVE)
Participantes: F. Guzmán, R. Haelterman (IPAVE), A. Luque (IFRGV)
La clorosis variegada de los citrus (CVC), causada por Xylella fastidiosa se ha tornado
una limitante para la producción citrícola de naranjas y algunas mandarinas. Su agente
causal es una bacteria que se ubica en el xilema de las plantas afectadas y presenta un
amplio rango de hospedantes. En la actualidad el diagnóstico de esta patología se puede
efectuar a través de técnicas serológicas y moleculares. Otro método de diagnóstico de
bacterias es a través del análisis de ácidos grasos presentes en la pared celular del
organismo patógeno. Los tipos y proporciones relativas de estos ácidos grasos son
específicas de una determinada especie e inclusive de subespecies y patovares,
presentando un patrón característico que facilita la identificación bacteriana.
Los ésteres metilados de ácidos grasos son analizados a través de cromatografía
gaseosa y los perfiles se comparan con bibliotecas internacionales. En el país, no
existen experiencias llevadas a cabo respecto al análisis de ácidos grasos presentes en la
pared celular de los patógenos que permitan su identificación y caracterización.
Para implementar la técnica, se comenzó a trabajar con cepas de Xanthomonas
causantes de cancrosis: grupo A, B y C, ya que aún no se cuenta con aislamientos de
X. fastidiosa. Las cepas se multiplicaron en medio ALB.
Para la extracción de los ácidos grasos, se partió de 40 mg de células bacterianas,
obtenidos mediante la saponificación, metilación y extracción, según lo descripto por
MIDI Sherlock System (Pendergrass, 1998). La primera cromatografía gaseosa se
realizó en el CEPROCOR, ya que no se contaba con los estándares para la
identificación de los ácidos grasos presentes. A la fecha se están analizando los
resultados.
2.17.19. Acción. Identificación de los patógenos asociados a la sintomatología de la
“Rama seca” en olivos del Departamento Arauco, La Rioja
Responsable: R. Haelterman [email protected] (IPAVE)
Participantes: L. Otero, P. Tolocka (IPAVE), B. Canteros (EEA Bella Vista), B. Perez
(IMYZA), M. Roca (SENASA)
En árboles de olivo de más de 50 años, de la variedad Arauco, ubicados en la localidad
de Aimogasta, La Rioja, se venían observando síntomas de decaimiento lento,
coloración verde mate, enrollado y necrosis de las hojas, defoliación parcial y muerte
rápida de brotes y ramas (apoplejía), que se corresponde con el síntoma llamado “rama
seca”, donde está involucrado el hongo Verticilium. En estas plantas también se
72
observaron en copa y “chupones” algunas ramas con hojas secas en el extremo,
mientras que las basales presentaban el ápice necrosado (punta de flecha) (Figura 23 y
24). Se presumió que esta última sintomatología podía ser causada por la bacteria
Xylella fastidiosa, presente en nuestro país en citrus (CVC) y almendros (ALS). Para
confirmar su presencia, se analizaron muestras por medio de técnicas serológicas (DAS-
ELISA) con reactivos de AGDIA y moleculares (PCR) con iniciadores RST31-RST33 y
HL5-HL6 (Figura 25 y 26), utilizando pecíolos y nervaduras de plantas sintomáticas.
Resultaron positivas 10 de las 16 muestras analizadas, provenientes de Aimogasta, Villa
Mazán y San Pedro (La Rioja). Resta establecer si la bacteria sería el agente causal de la
necrosis apical de la hoja de olivo, y que rol cumple dentro del complejo denominado
“rama seca” y determinar su presencia/ ausencia en otros cultivares y regiones.
Figura 23: Síntoma punta de flecha en hojas de olivo positivas para X. fastidiosa
Figura 24: Ramas con hojas secas en el extremo y basales con ápice necrosado (punta de flecha), positivas
para X. fastidiosa
(-) 1 2 3 4,1 4,2 5 7 8 9 TE M
Figura 25. Electroforesis en gel de agarosa (1,5%), de productos de PCR con cebadores RST31-RST33
(-): control negativo (agua), 1: p 237 San Blas de los Sauces , 2: p 238 San Blas de los Sauces, 3: p 239 San Blas
de los Sauces, 4.1: p. 240 Villa Mazán , 4.2: p. 240 Villa Mazán , 5: p 241 Aimogasta, 7: p 242 Aimogasta, 8: p
243 Aimogasta 9: p 253 San Pedro. TE:control positivo ADN X. fastidiosa de cítricos
73
(-) 1 2 3 4,1 4,2 5 7 8 9 TE M
Figura 26. Electroforesis en gel de agarosa (1,5%), de productos de PCR con cebadores HL5-HL6. (-): control
negativo (agua), 1: p 237 San Blas de los Sauces , 2: p 238 San Blas de los Sauces, 3: p 239 San Blas de los
Sauces, 4.1: p. 240 Villa Mazán , 4.2: p. 240 Villa Mazán , 5: p 241 Aimogasta, 7: p 242 Aimogasta, 8: p 243
Aimogasta 9: p 253 San Pedro. TE:control positivo ADN X. fastidiosa de cítricos
2.17.20. Acción. Identificación y caracterización de patógenos nuevos, emergentes
y prevalentes de importancia agrícola en el cultivo de maíz en Argentina e
Identificación de pudriciones de espiga del maíz producidas por Aspergillus sp. en
la zona agrícola central de Córdoba
2.17.20.1. Panorama de enfermedades causadas por hongos en cultivos de maíz en
el período 2013/2014
Responsable: María de la Paz Giménez Pecci [email protected]
(IPAVE)
Participantes: F. Maurino, I.G. Laguna, M. Ferrer Lanfranchi, J. Raspanti, M.S.
Brandimarte, M. Druetta (IPAVE), B. Camilleti (IPAVE-CONICET-FCA.UNC), E.
Lucini (FCA. UNC)
Durante este período, se detectaron plantas de maíz con diferentes síntomas de
enfermedades causadas por hongos. El grupo de trabajo realizó análisis en base a
síntomas y observación de fructificaciones, previa preparación de cámaras húmedas y
cultivos correspondientes. Los síntomas característicos y las fructificaciones se ilustran
en cada caso con imágenes tomadas durante el estudio. Con estos trabajos iniciales este
grupo ofrece un panorama actual de las principales fungosis del maíz a las que se
debería agregar la roya común producida por Puccinia sorghi como un patógeno
siempre presente entre los característicos de planteos en siembra directa:
1. Tizón común del maíz
Esta enfermedad es causada por el hongo Exserohilum turcicum. Uno de los primeros
síntomas consiste en la aparición de manchas pequeñas, ligeramente ovaladas y acuosas
que se producen en las hojas y que son fácilmente reconocibles. Estas lesiones se
transforman luego en zonas necróticas alargadas y ahusadas, que se manifiestan
primeramente en las hojas más bajas y cuyo número aumenta a medida que se desarrolla
la planta. Se puede llegar a producir la quemadura total del follaje. El tizón por turcicum
(o tizón norteño de la hoja) se encuentra distribuido en todo el mundo y ocurre
particularmente en zonas de alta humedad y temperaturas moderadas durante el periodo
de crecimiento (Programa de Maíz del CIMMYT.2004).
Esta enfermedad fue detectada en la mayoría de las localidades muestreadas en las
provincias de Córdoba, Buenos Aires, Santiago del Estero (Figura 26).
74
Figura 27. A. Manchas foliares de muestras de maíz; B. Conidios de las muestras analizadas, observados al
microscopio óptico (vista 40X)
2. Carbón común del maíz
La enfermedad es causada por Ustilago maydis y se caracteriza por la formación de
agallas que pueden ubicarse en diferentes partes de la planta: hojas, vainas, tallo, panoja
y espiga, ya que el hongo ataca cualquier parte de la planta que se encuentre sobre el
suelo.
En las espigas las agallas conspicuas sustituyen a los granos individuales. Con el tiempo
éstas se rompen y liberan masas negras de teleutosporas que infectarán las plantas de
maíz del siguiente ciclo de cultivo (Programa de Maíz del CIMMYT.2004). Las
teleutosporas tienen de 8 a 11 micras de diámetro (White D.G. 1999).
La enfermedad causa daños más graves en plantas jóvenes en estado activo de
crecimiento y puede producirles enanismo o matarlas.
El carbón común se distingue fácilmente del carbón de la espiga por la ausencia de
tejidos vasculares que aparecen en forma de fibras en las mazorcas infectadas por el
último patógeno (Programa de Maíz del CIMMYT.2004).
Esta enfermedad está presente en todas las localidades muestreadas. Se recibieron
consultas de lotes ubicados en Jesús María, Provincia de Córdoba y en Pergamino, Pcia
de Bs. As (Figura 28 y 29).
Figura 28: Agallas en hojas y panojas de las muestras analizadas
Figura 29. Teleutosporas extraídas de las agallas de las muestras observadas al microscopio óptico (vista 40x)
3. Antracnosis de la hoja y el tallo
La antracnosis causada por Colletotrichum graminícola puede afectar a la hoja y al tallo
siendo los síntomas más importantes las manchas alargadas en las hojas (Figura 30, 31
y 32), un marchitamiento que va desde el ápice hacia abajo y la pudrición del tallo. Se
observa primero en las hojas más bajas y luego en las superiores. El marchitamiento
puede ocurrir en una etapa más avanzada del ciclo del cultivo y puede tomar el aspecto
A
B
75
de un daño por helada (OMAFRA Publication 811: Agronomy Guide for field crops.
2009). Las muestras fueron colectadas en Jesús María, Pcia de Córdoba.
Figura 30. Manchas en hojas
en las muestras analizadas
Figura 31. Acérvulas en lesiones
causadas por antracnosis de la
hoja, observadas con lupa
Figura 32. Espora de
Colletothrichum graminícola
(microscopio vista 40x)
4. Mancha gris de la hoja
Esta enfermedad se determinó en muestras de la Pcia de Tucumán. Está causada por el
hongo Cercospora zeae –maydis se presenta en todas las áreas del mundo donde se
cultiva maíz. Esta patología que puede ser muy destructiva y económicamente
importante (OMAFRA Publication 811: Agronomy Guide for field crops. 2009).
En las hojas se producen manchas grises irregulares y manchas angostas en general
cortas tendiendo a rectangulares. Las mismas poseen un centro claro color gris rodeado
por un halo amarillento. Las manchas corren paralelas a las nervaduras; en un comienzo
son pequeñas y luego se van expandiendo hasta alcanzar tamaños más grandes. Es muy
característico el color gris que este patógeno le da a la mancha. La opacidad de estas
lesiones se debe a que el tejido invadido por el micelio del hongo se oscurece y da ese
aspecto a la lesión. Las lesiones, en general, se ubican paralelas a las nervaduras de las
hojas (White, D. G.1999).
Las esporas pueden ser rectas o levemente curvadas y contener entre 3 a 10 septas. Se
diseminan fácilmente con el viento o las gotas de lluvia. Esta enfermedad fue detectada
en La Cocha, Pcia de Tucumán (Figura 33 y 34).
Figura 33. Manchas foliares avanzadas en las
muestras analizadas
Figura 34. Conidióforo de Cercospora zeae-maydis
en las muestras de maíz analizadas
76
5. Mancha por Curvularia
Muestras provenientes de la localidad de Reconquista Pcia. de Santa Fe (Ing. Cracogna,
INTA), presentaron gran cantidad de manchas foliares localizadas. Se muestra la
sintomatología observada y las espora correspondientes (Figura 35 y 36).
Figura 35. Manchas foliares de plantas provenientes
de la localidad de Reconquista
Figura 36. Esporas de Curvularia sp. colectadas sobre
las manchas foliares
2.17.20.2. Patógenos nuevos detectados en el cultivo de maíz. Detección de High
plains virus (HPV) en infecciones simples y mixtas
Responsable: María de la Paz Giménez Pecci [email protected]
(IPAVE)
Participantes: F. Maurino, I.G. Laguna, M. Ferrer Lanfranchi, J. Raspanti, M.S.
Brandimarte, M. Druetta (IPAVE), B. Camilleti (IPAVE-CONICET-FCA.UNC), E.
Lucini (FCA. UNC)
Se observaron plantas de maíz con síntomas de estriado rojizo o clorótico en bordes y
extremos de las hojas, enanismo y muerte de plantas, en casos más severos. Esta
sintomatología fue registrada en cultivos de Buenos Aires y Tucumán en las campañas
2011/12 y 2012/13. Para diagnosticar el agente causal las muestras se procesaron y
analizaron por DAS ELISA resultando positivas para HPV, y algunas de ellas positivas
también a MDMV y SCMV en infecciones mixtas con HPV. MDMV y SCMV son
importantes potyvirus presentes en Argentina frecuentes en infecciones conjuntas con
otros virus. High plains virus es un emaravirus reportado por primera vez en maíz y
trigo en Estados Unidos en 1993 causando severas pérdidas en casos de infecciones
tempranas. Luego se detectó en Israel y Brasil, y en trigo en Argentina. Es transmitido
por el ácaro Eriophydae Aceria tosichella, también vector de Wheat streak mosaic
virus y Wheat spot mosaic virus. Además de estos hospedantes puede infectar cebada,
Setaria spp, Echinochloa spp, Bromus spp. Se considera de importancia el control de
plantas guachas o voluntarias, asimismo este virus puede trasmitirse por semilla. Es la
primera mención del virus en cultivos de maíz en Argentina.
Los resultados sobre Aspergillus sp son informados en PNCYO 1127023.
2.17.21 Acción. Caracterización molecular de rabdovirus y de haplotipos del Mal
de Río Cuarto virus en maíz. Identificación y desarrollo de reactivos serológicos y
moleculares para diagnóstico del rabdovirus emergente Maize yellow striate virus
en maíz
Responsable: María de la Paz Giménez Pecci, [email protected]
(IPAVE)
Participantes: F. Maurino, I.G. Laguna, M. Ferrer Lanfranchi, J. Raspanti, M.S.
Brandimarte (IPAVE) , M. Druetta (IPAVE- EEA Quimilí), M.P. Ruiz Posse (IPAVE-
77
EEA Quimilí),, M.A. García (Univ. Tencológica), B. Camilleti (IPAVE-CONICET-
FCA-UNC), E. Lucini (FCA.UNC).
I) Rhabdovirus
Recolección de plantas enfermas con el rhabdovirus en estudio. Durante diciembre-
enero de 2012-2013 se recolectaron muestras de plantas con síntomas de infección por
rhabdovirus de las localidades de Colonia Caroya y Cañada de Luque, provincia de
Córdoba, y en Los Toldos, provincia de Buenos Aires.
Producción de un reactivo de diagnóstico molecular específico para el virus en
estudio. A partir de la secuencia nucleotídica parcial del gen de la polimerasa L
obtenida, se diseñaron cebadores específicos para el virus en estudio, al cual se
denominó Maize yellow striate virus (MYSV). Mediante la herramienta informática
AmplifX (Nicolas Julien 2004-2008, versión 1.5.0) se probaron los cebadores en
reacciones de amplificación virtuales y se determinó la calidad, especificidad y
temperaturas de óptimas de alineamiento de los mismos. A su vez, los cebadores fueron
probados en reacciones de RT-PCR reales, utilizando como controles ARN extraído de
dos plantas de maíz sin sintomatología alguna de MYSV (testigos sanos), dos plantas
con síntomas de infección por MYSV colectadas a campo y que reaccionaron
positivamente con los iniciadores degenerados para rhabdovirus (Lamprecht et al.,
2009), una de ellas colectada durante la campaña 2011/12 y la otra durante 2012/13
(testigos enfermos); una planta de alfalfa infectada con un rhabdovirus causal de
enaciones y enanismo (GenBank: HQ380230.1), como control negativo de otra especie
de citorhabdovirus y ADN purificado de uno de los clones que se utilizaron para
obtener la secuencia parcial de la polimerasa L.
Detección mediante técnicas moleculares del virus en las plantas muestreadas. Se
extrajeron ARN totales de tejido vegetal sano y enfermo conservado a -70ºC, a partir
del cual se realizó luego RT-PCR en un paso con iniciadores específicos para MYSV.
Los amplicones obtenidos se corrieron en un gel de agarosa al 1,4%, en el cual se
observaron las bandas del tamaño esperado solo en las muestras sintomáticas. De 10
plantas sintomáticas colectadas a camponueve presentaron un resultado positivo para
este rhabdovirus (Figura 37).
Figura 37. Amplicones obtenidos por RT-PCR de ARN total con iniciadores específicos para
MYSV. Calles: 1: CienMarker; 2-3: testigos sanos; 4-5: plantas con síntomas de infección por
MYSV; 6: clon 4; 7: planta infectada con alfalfa dwarf virus (GenBank: HQ380230.1)
Tasas de transmisión del virus por Peregrinus maidis. Se mantienen colonias de
insectos de la familia Delphacidae, de la especie Peregrinus maidis Ashmead traídos de
1 2 3 4 5 6 7
78
Tucumán desde el año 2009. Los individuos sanos son mantenidos en jaulas de cría, en
condiciones controladas de luz y temperatura, para realizar ensayos de transmisión del
virus.
En este período se logró transmitir el virus a plántulas de maíz de 15 días desde la
siembra, con un porcentaje de transmisión de 5,63% (4/71). Esto se logró colocando
cinco individuos por planta, con tiempos de adquisición del patógeno, latencia e
inoculación de 7, 21 y 7 días, constituyendo una transmisión de tipo persistente (Figura
38).
Figura 38. Síntomas de infección por rhabdovirus en plantas de maíz transmitidas
experimentalmente con Peregrinus maidis
Producción de un antisuero específico para MYSV. A partir de aproximadamente 80
g de material vegetal conservado a -70ºC de las muestras 22290 y 22293, se purificaron
las partículas virales según Creamer 1992. Se realizaron DIP para MET en dos
ocasiones distintas del proceso de purificación, antes de realizar el gradiente de sacarosa
y después del mismo (Figuras 39 y 40). Previo al gradiente y en la fracción dos de éste
se observaron partículas virales rotas, mientras que en el resto de las fracciones del
gradiente se observaron sólo membranas y restos de partículas vegetales. Se pondrá a
punto el protocolo en posteriores purificaciones.
Figura 39. Partículas virales observadas al
microscopio electrónico en preparados DIP, en una
instancia de la purificación previa al gradiente de
sacarosa. Magnificación X250000.
Figura 40. Partículas virales observadas al
microscopio electrónico en preparados DIP, luego del
gradiente de sacarosa, fracción 2 del gradiente.
Magnificación X100000.
Reconstrucción de la historia demográfica y determinación de patrones
filogeográficos del rhabdovirus del maíz. En este período se están iniciando los
trabajos de diseño de iniciadores. Para ello, se prevé purificar la proteína de la
nucleocápside (proteína N) del rhabdovirus que afecta al maíz, siguiendo lo descripto
por Massah et al., 2008. Se extraerá el ARN del genoma a partir de las preparaciones de
la purificación mediante el método de SDS-fenol y se colectará mediante precipitación
con etanol. Una vez extraído el ácido nucleico, se amplificará y clonará ADN
complementario mediante la técnica de amplificación al azar con un único cebador
independiente de secuencia (Froussard, 1992). Cada uno de los fragmentos será clonado
en el pGEM-T Easy Vector (Promega). Tres clones independientes que contengan el
inserto del tamaño esperado, de cada uno de los fragmentos amplificados, serán
79
enviados a secuenciar. Si existieran gaps en la secuencia obtenida serán diseñados
cebadores específicos a ambos lados de cada gap para amplificar cada uno de ellos
mediante RT-PCR. Cada uno de los fragmentos amplificados será clonado y
secuenciado como fue descripto anteriormente. Los extremos 5´y 3´ del genoma viral se
amplificarán utilizando el 5´/3´ RACE System for Rapid Amplification of cDNA Ends
(RACE) versión 2.0 (Invitrogen, USA). Los fragmentos amplificados serán clonados y
secuenciados como fue previamente mencionado. Se extraerá ARN total de plantas de
maíz sintomáticas, recolectadas en distintas localidades geográficas argentinas. Para
ello, se utilizará el RNeasy Plant Mini Kit (QIAGEN). La proteína N participa en la
encapsidación del ARN del genoma viral y forma parte de los viroplasmas y de los
complejos de la polimerasa (Luo et al., 2007), y su secuencia es la que se compara
cuando se analiza la variabilidad intraespecífica en este grupo de virus (Kuzmin et al.,
2009). De esta manera, el gen que codifica para la proteína N completa del rhabdovirus
que produce mosaico estriado en maíz será amplificado de cada uno de los aislamientos
geográficos. Para ello se realizará RT-PCR en un solo paso con el Access RT-PCR
System (Promega), utilizando cebadores específicos diseñados a partir de la secuencia
del genoma completo previamente obtenida. Cada uno de los fragmentos amplificados
será purificado a partir del gel de agarosa utilizando el Wizard SV Gel and PCR Clean-
Up System (Promega). El clonado y secuenciado de estos fragmentos se llevará a cabo
como fue previamente mencionado.
Se alinearán las secuencias obtenidas de los distintos aislamientos del virus, a partir del
cual se reconstruirá la filogenia mediante metodología Bayesiana (Holder & Lewis,
2003) y se realizará un análisis de coalescencia con el software Bayesian Evolutinary
Analysis Sampling Trees.
Estudios para detectar nuevos vectores del Maize yellow striate virus. Se están
realizando trabajos para determinar la capacidad vectora del Maize yellow striate virus
de dos especies de delfácidos abundantes en el área de estudio, de esta virosis: Toya
propinqua Fennah y Delphacodes kuscheli, Fennah. Para ello, se realizaron tres viajes
de campo a la zona sur de la provincia de Córdoba, en donde se recolectaron individuos
de la especie D. kuscheli, mediante red entomológica en plantas de trigo y avena. Estos
fueron colocados en una jaula antiáfido y llevados al Instituto de Patología Vegetal para
su identificación bajo lupa estereoscópica. Los adultos colectados fueron criados en
jaulas antiáfido, sobre plantas sanas de avena y trigo en condiciones controladas de luz,
temperatura y humedad. Individuos adultos de la especie T. propinqua fueron tomados
de la misma manera en la ciudad de Córdoba, en plantas de gramón (Cynodon dactylon
L.), y criados sobre plantas de esta misma especie bajo condiciones controladas. Ya que
T. propinqua y D. kuscheli no se alimentan naturalmente del maíz, las condiciones de
transmisión debieron ser ajustadas: ninfas de 1º a 3º estadio fueron colocadas sobre
plantas de maíz enfermas durante 16-18 h para el periodo de adquisición, y luego
transferidas a plantas sanas de Cynodon sp., en el caso de T. propinqua y Avena sativa
para D. kuscheli durante una latencia de 21 días. Los adultos sobrevivientes se pusieron
a transmitir sobre plántulas de maíz de 15 días de edad (cinco adultos por planta), hasta
su muerte. Luego del periodo de acceso a la inoculación se aplicó insecticida a las
plantas y se las mantuvo a 27 ± 2ºC para desarrollo de síntomas. Tras un lapso de al
menos 60 días, se colectaron muestras foliares de cada una de las plantas inoculadas,
parte ellas se mantuvo a -70ºC para posteriores análisis moleculares y la otra se fijó en
solución Karnovsky modificada para microscopía electrónica. Se logró la aparición de
síntomas virales en las plántulas de maíz de 15 días desde la siembra, utilizando
insectos de las especies Delphacodes kuscheli y Toya propinqua. La probable
80
trasmisión del virus se logró colocando cinco individuos por planta, con tiempos de
adquisición del patógeno, latencia e inoculación de 16-18 h, 21 y 7 días,
respectivamente.
Actualmente, se están repitiendo las pruebas moleculares para confirmar la posible
presencia del patógeno en las plantas con síntomas.
II. Haplotipos del virus del Mal de Río Cuarto (MRCV) en maíz mediante estudios
de electroforesis del genoma viral. En un trabajo conjunto con investigadores de la
Univ. Tecnológica de Córdoba, se realizaron estudios para determinar la variabilidad
actual del Mal de Rio Cuarto virus en diferentes áreas del país.
La variabilidad genética es una de las causas más importantes de los diferentes grados
de severidad de las enfermedades causadas por virus ARN y su potencial de
transmisión. El MRCV pertenece a este grupo de patógenos. La plasticidad de estos
patógenos generada por la variabilidad, les permite invadir nuevos tejidos y colonizar
nuevos hospedadores. Al emplear el perfil electroforético de los segmentos genómicos
del MRCV para definir la variabilidad genómica del virus, se registró previamente que
la variabilidad de este virus es muy elevada, presentando 30 haplotipos diferentes que se
han ido detectando a lo largo de los años en forma constante desde 1992/93 hasta
2010/11. En este trabajo, se presentan los análisis de redes de haplotipos con distancias
genéticas entre las variantes electroforéticas, explorados en un proceso de Minería de
datos (KDD) incorporando datos de dos nuevas campañas agrícolas: 2011/12 y 2013/14.
Para ello se analizaron 104 nuevas muestras, pertenecientes a cinco localidades (Suco,
Río Cuarto, Bruzole, Puán y General Pico) de las provincias de Córdoba, Buenos Aires
y La Pampa, ubicadas en las regiones endémica y sur de endémica. En estos estudios, se
registró un nuevo haplotipo (N° 31) debido al cambio de posición del segmento
genómico 3 (que codifica para la proteína mayoritaria del core de la cápside viral) y la
desaparición del segmento genómico 7 (que codifica para dos proteínas no estructurales
reguladoras de genes que afectan la severidad durante la infección viral). El cálculo de
la variabilidad genómica mediante el indicador SDH (distancia entre perfiles genómicos
de haplotipos diferentes) y su valor esperado estimado desde 1989/90 hasta 2008/09
(García et al., 2012), indicó que la variabilidad de este virus fue incrementándose hasta
la gran epidemia de 1996/97, luego de la cual fue disminuyendo. Los nuevos datos
corroboran la tendencia de disminución de variabilidad en el análisis por zona, sin
embargo en el análisis por localidad, se detecta que la variabilidad vuelve a elevarse en
el 40 % de los lotes examinados desde 2010/11. Se concluye que la variabilidad
genómica del MRCV analizada con datos de perfil electroforético del genoma no es
constante a lo largo de los últimos 25 años, y desde 2009/10 se observaron incrementos
puntuales en las localidades mencionadas.
2.18. PNPV 1135023. Estrategias de bajo impacto ambiental para el manejo de
enfermedades de las plantas
Coordinador: Laura Gasoni
Unidad Sede: IMyZA
2.18.1. Acción. Evaluación del impacto de diferentes sistemas de cultivo sobre
poblaciones de antagonistas de fitopatógenos según regiones agroecológicas.
Responsable: Silvina Vargas Gil, [email protected] (IPAVE)
Participantes: D. Chavarría, D. Serri, R. Oberto
Los patógenos son microorganismos que normalmente se encuentran entre los
componentes del suelo, y existen en relativamente baja cantidad en la naturaleza. La
81
comunidad microbiana en la que un agente patógeno se desarrolla es determinante para
la manifestación y posterior evolución de la enfermedad, debido a la naturaleza
biológica de la supresividad del suelo. Muchas estrategias de manejo de enfermedades
como el uso de agroquímicos, se focalizan en el control del patógeno cuando los
síntomas de la enfermedad ya son evidentes, siendo demasiado tarde para un manejo
eficiente. Sin embargo, deberían tenerse en cuenta las condiciones previas a la
infección, creando un ambiente menos favorable para el desarrollo del patógeno. Por
esta razón, se puede inhibir a un patógeno a través de la modificación de las
comunidades microbianas del suelo, mediante el empleo de herramientas que
incrementen la diversidad microbiana edáfica. Las mismas pueden tener un impacto
diferente sobre las características y actividades de las comunidades microbianas, por lo
que su apropiada combinación es fundamental en el manejo de una enfermedad.
La diversidad microbiana del suelo puede contribuir en la inhibición del desarrollo de
hongos de suelo que afectan al cultivo de soja. Teniendo en cuenta que las prácticas
culturales pueden favorecer la diversidad microbiana edáfica, se pueden seleccionar
aquellas que incrementen esta variable en el suelo, lo que restringirá el crecimiento del
patógeno favoreciendo el desarrollo del cultivo. A través de mediciones realizadas en
lotes comerciales localizados en la provincia de Salta, se evaluó el efecto del manejo
cultural, como la rotación de cultivos (soja en monocultivo y rotación soja/maíz), sobre
la diversidad microbiana y su relación con el síndrome de la muerte súbita de la soja
(SMS), causada por un complejo de hongos del género Fusarium. Se evaluó carbono de
la biomasa microbiana (CBM), proteínas del suelo (glomalina, GRSP) y potenciales
biocontroladores (PB). La incidencia de SMS fue 4% mayor en los monocultivos en
relación a la rotación con maíz, a pesar de ser este último un hospedante alternativo al
patógeno. El CBM, la GRSP y los PB Trichoderma spp., Gliocladium spp.,
Pseudomonas fluorescentes, fueron mayores en soja/maíz respecto al monocultivo
(50%, 77%, 65%, 54% y 12%, respectivamente). Algunos autores han reportado la
presencia de agentes causales de SMS en gramíneas siendo asintomáticas a la
enfermedad, por lo que la incidencia podría haber sido similar tanto en monocultivo
como en rotación. Sin embargo, la degradación de las propiedades biológicas del suelo
se asoció a mayor susceptibilidad de las plantas de soja a Fusarium crassispititatum.
2.18.2. Acción. Detección y caracterización de microorganismos simbiontes de
diferentes poblaciones de Diaphorina citri de Argentina.
Responsable: Evangelina Argüello Caro, [email protected] (IPAVE)
Hasta el momento se ha logrado establecer la cría del psílido, tal como se informó en el
PNPV 1135022 (punto 2.17.4).
2.18.3. Acción. Detección de microorganismos endosimbiontes de ácaros eriófidos
vectores de virosis de trigo (Triticum mosaic virus, Maize red stripe virus (sinón.
HPV) y Wheat streak mosaic virus)
Responsable: María Fernanda Mattio, [email protected] (IPAVE)
Participantes: V. Alemandri (IPAVE)
Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV) son virosis que afectan
al cultivo de trigo y que usualmente se encuentran en infecciones mixtas, ya que ambos
son transmitidos por el ácaro Aceria tosichella (Wheat curl mite- WCM). Se ha
comprobado, en otros patosistemas, la intervención de microorganismos
endosimbiontes en la transmisión viral. En relación a esta línea de investigación, como
punto de partida se comenzó con la detección de endosimbiontes en A. tosichella con
cebadores para amplificar el gen 16 rDNA de eubacterias y otro par de cebadores para
82
evaluar la presencia de Cardinium, bacteria encontrada con frecuencia en varios
artrópodos, incluso otros ácaros. Para la puesta a punto de las PCRs se evaluaron
poblaciones de ácaros provenientes de diferentes regiones productoras de trigo. Se
tomaron grupos de 10 ácaros y se realizó la extracción de los ácidos nucleicos
empleando proteinasa K y resina Chelex 5%. La extracción de DNA se comprobó
mediante la amplificación del gen 16S mtDNA del ácaro (16S mtDNA WCM),
observando un fragmento de aproximadamente 400 pb . Dos de las cinco poblaciones de
ácaros analizadas mediante PCR resultaron positivas para el gen ribosomal de
Eubacterias, amplificando un fragmento de 1150 pb que coincidió con el tamaño
esperado. Sin embargo, ninguna de las muestras analizadas amplificó el gen 16 S
específico de Cardinium (Figura 1).
Figura 1. Electroforesis en gel de agarosa al 1.5% de fragmentos de PCR amplificados en
ejemplares adultos de A. tosichella provenientes de diferentes poblaciones geográficas. A:
Amplificación del gen mitocondrial 16S mtDNA WCM del ácaro. B: Amplificación del gen
ribosomal para Eubacterias 16SrDNA
Además, es necesario desarrollar una metodología para la obtención de adultos a partir
de huevos, para asegurar la emergencia de una población de ácaros libre de virus. Para
ello, se aislaron huevos de A. tosichella de plantas de trigo que presentaban síntomas de
virosis, positivas por serología, y se colocaron sobre plantas de trigo sanas para la
obtención de una población sana. Una vez que se consiguió la emergencia de adultos, se
evidenció un rápido establecimiento de la colonia sobre el cultivar BioINTA 3005
(Figura 2). Se visualizó el síntoma característico de “hojas acartuchadas” característico
de la presencia de gran cantidad de ejemplares adultos y huevos en su interior. No se
observaron, hasta el momento, síntoma de virosis en las plantas de cría.
Figura 2. Manipulación y acondicionamiento de huevos de ácaros para la obtención de
poblaciones libres de virus
A B
83
2.18.4 Acción. Ajuste de sistemas y metodologías innovativas para el manejo de
enfermedades en plantas según regiones agroecológicas. Mecanismos de mitigación
del daño de fitopatógenos mediante micorrizas
Responsable: María Lorena Giachero, [email protected] (IPAVE)
Participantes: D.A. Ducasse, M.L. Giachero; N. Márquez (IPAVE)
Durante este año, se llevaron a cabo dos estudios en paralelo:
A - Se completó el ensayo de triple interacción soja/ hongo micorrícico/ Fusarium
virguliforme. Se evaluó el comportamiento de dos genes (gen 22 y 67) previamente
identificados por nuestro grupo de trabajo, por la metodología de cDNA-AFLP, cuyos
niveles de expresión cambiaron durante la interacción soja/patógeno (Giachero, ML and
Ducasse El Síndrome de Muerte Súbita en soja” Editorial Académica Española ISBN
978-3-8454-8192-0; Bressano 2012, “Efectos del estrés hídrico y la micorrización sobre
la interacción soja- Macrophomina phaseolina, doctorado en ciencias biológicas).
Por comparación contra la base de datos del NCBI (National Center for Biotechnology
Information) de las secuencias de nucleótidos correspondiente a los genes mencionados
previamente, se comprobó que el producto del gen 22 presentaba dominios con
homología con una proteína receptora serina/treonina quinasa con regiones repetidas
ricas en leucina (LRR) y que el producto del gen 67 presentaba una alta homología con
la enzima UDP glucosa 6 dehidrogenasa.
A fin de validar estas observaciones, se desarrolló un sistema de cultivo in vitro
parcialmente cerrado (HAM-P) (Voets et al, 2005), utilizando Medicago truncatula,
inoculada con Glomus intraradices (Gi), como donadora de micelio, tal como se
describió en la memoria 2012.
Para poder obtener una buena micorrización de las plantas de soja, los sistemas fueron
mantenidos en cámara de crecimiento a 25ºC con 70-80 % de humedad relativa y un
fotoperíodo de 16/8 h, durante 15 días. Pasado este tiempo, los sistemas fueron
divididos al azar en cuatro grupos: 1) Plantas Control. 2) Plantas inoculadas con
Glumus intraradices (Gi). 3) Plantas inoculadas con Fusarium virguliforme (Fv). 4)
Plantas inoculadas e infectadas con GiFv.
Los tratamientos Fv y GiFv, fueron infectados con un taco de agar (de aprox. 1 cm2)
con micelio fúngico de Fusarium virguliforme proveniente de cultivo fresco en PDA.
Se usaron un total de 36 sistemas. Por cada réplica biológica, se llevaron a cabo tres
repeticiones técnicas.
Se tomaron muestras a dos tiempos post infección. Tiempo1 (T1): en el momento en el
que el hongo patógeno (Fv) entra en contacto con la raíz de las plántulas de soja.
Tiempo 2 (T2): 48 hs luego de que Fv tomara contacto con la raíz de la soja. A su vez,
se eligieron dos zonas diferentes de muestreo: una adyacente y una lejana al punto de
infección con Fv. Las muestras fueron conservadas inmediatamente a -80ºC para hacer
análisis de expresión génica. También se tomaron muestras de raíces de plantas
controles sin inocular y de plantas micorrizadas (Gi).
Las raíces fueron teñidas con azul tripan y por observación al microscopio óptico se
pudo confirmar la presencia de estructuras típicas de hongos micorrícicos arbusculares.
Se observó un porcentaje de micorrización total de 24.3% para los tratamientos Gi y de
16.5% para GiFv.
Para poder analizar, cuantificar y validar el comportamiento de estos genes cuando las
plantas están previamente micorrizadas con Glomus intraradices, y son enfrentadas con
Fv, se hicieron ensayos de PCR en tiempo real utilizando los cebadores específicos. Al
mismo tiempo, se diseñó un juego de cebadores que amplifican la secuencia de un gen
84
calibrador (“housekeeping gene”), el factor de elongación 1α. La secuencia utilizada fue
AK285433, ARNm lineal de 1750 pb, obtenida a partir del NCBI. Éste gen se utiliza
para homogeneizar los valores de cada muestra, ya que su expresión no varía ante los
tratamientos aplicados.
Se hicieron extracciones de ARN total, por el método de TRIZOL. La concentración de
RNA total fue determinada en un espectrofotómetro, NanoDrop®-ND 1000 UV-Vis
(NanoDrop Technologies, Wilmington, USA). La pureza del ácido nucleico fue
estimada a partir de los valores de absorbancia a A260/280. La integridad del mismo se
comprobó mediante geles desnaturalizantes de agarosa (Figura 3). Para realizar los
ensayos de PCR en tiempo real se siguió el protocolo del Kit de Invitrogen EXPRESS
One-Step SYBRR GreenER™.
Figura 3. Muestras de ARN extraído por el método de TRIZOL corridas en gel desnaturalizante de
agarosa al 1,2%. Se comprobó la integridad de las muestras de ARN correspondientes a los
tratamientos C: controles, Gi: plantas micorrizadas, FvA: raíz adyacente a la infección con Fv, en
plantas infectadas con Fv, FvL: raíz lejana a la infección con Fv, en plantas infectadas con Fv,
GiFvA: raíz adyacente a la infección con Fv de plantas micorrizadas, GiFvL: raíz lejana a la
infección con Fv de plantas micorrizadas
Para el cálculo de la expresión relativa de los genes candidatos se usó el método Delta
Delta CT, que supone una eficiencia de reacción de PCR óptima e idéntica (del 100%)
tanto para el gen de interés como para el gen de referencia. Se calculó la eficiencia de
reacción para los diferentes cebadores, y se comprobó que, tanto los cebadores
específicos como el Factor de Elongación 1α, mostraron la misma eficiencia. Para los
cálculos de expresión se utilizó la herramienta del software rotor gene 6000.
Para una observación más clara de los resultados, los niveles de expresión de cada gen
se muestran como relativos al control (sin inocular/sin micorrizar) (Tabla 1).
Tabla 1: Niveles de expresión relativos a los controles obtenidos mediante real time PCR.
Tratamientos Expresión Realtiva Gen 22 ExpresiónRealtiva Gen 67
T1 T2 T1 T2
Gi 0,32 0,115 2,59 0,91
FvL 0,52 0,19 1,40 0,13
FvA -0,02 0,355 0,17 0,20
GiFvL 0,185 1,445 2,62 0,61
GiFvA 0,25 1,62 2,83 0,80
Por otro lado, se llevó a cabo la evaluación estadística de ensayos de micromatrices.
Este ensayo fue descripto en la memoria del año 2011.
85
B- Análisis de los cambios transcripcionales mediante microarreglos de ADNc
En resumen, seis tratamientos fueron considerados:
Plantas Control
Plantas inoculadas con Rhizophagus intraradices (Ri)
Plantas inoculadas con Macrophomina phaseolina (Mp)
Plantas inoculadas con Fusarium virguliforme (Fv)
Plantas inoculadas con Ri+Mp
Plantas inoculadas con Ri+Fv
Cada sistema se consideró como una repetición única y para cada tratamiento se
hicieron tres réplicas biológicas, cada una de las cuales consistía en un pool de raíces de
dos plantas de soja.
Las plantas fueron monitoreadas bajo lupa, cosechadas 48 hs después de la llegada del
hongo patógeno a la raíz. Todas las muestras fueron conservadas a -80ºC hasta llevar a
cabo la extracción de ADN total. En el caso de las plantas micorrizadas, las raíces
fueron divididas en dos, una mitad fue utilizada para estimar la colonización intra-
radical de hongos micorricicos (resultados presentados en memoria 2011), y la otra
mitad fue usada para extracción de ARN total.
Amplificación/marcado de los ADN purificados e hibridización en los chips. La
síntesis de ADNc se realizó con el kit de dos colores Quick Amp Labeling Kit como se
describe en el protocolo de análisis de microarreglos de expresión génica basada en dos
colores (version 5.7) (Agilent Technologies, Santa Clara, EE.UU.).
El plan de hibridación fue diseñado como un bloque incompleto de bloques (chips) de
cuatro arrays cada uno, para poder ubicar tres réplicas de seis tratamientos (Ri+Fv,
Ri+Mp, Ri, Ctrl, Fv, Mp). Los tratamientos Ri y Ctrl tuvieron cuatro réplicas en vez de
tres. La siguiente tabla describe los tratamientos asignados a los chips.
Todas las repeticiones de los tratamientos (incluyendo la de control) se hibridan con un
pool de repeticiones biológica del control marcado con el mismo colorante.
Tabla 2: Diseño de hibridación donde cada columna representa un chip
de soja y las filas las matrices en los chips
Chip 1 Chip 2 Chip 3 Chip 4 Chip 5
Ri + Mp Ri + Mp Ri + Fv Ri + Fv Ri + Fv
Ctrl Ri Ri Ri Ri + Mp
Fv Ctrl Ctrl Ctrl Ri
Mp Mp Mp Fv Fv
Los chips hibridados fueron escaneados utilizando el escáner de Agilent G2505B en alta
resolución de 5 micras a 532 nm (Cy3) y 633 nm (Cy5) longitudes de onda (Agilent
Technologies, Santa Clara, EE.UU.). Las imágenes de los microarreglos fueron
importadas en el software Feature Extraction (FE) (version 9.1.3.1) y alineado con el
conjunto de archivos de plantilla adecuada (015425_D_F_20061105) (Agilent
Technologies, Santa Clara, EE.UU.).
El proceso de hibridación, coloración, lavado y escaneado se desarrolló en la unidad de
servicios para microarreglos del Instituto de Ciencias de la Vida de la Université
Catholique de Louvain.
86
Procesamiento de datos. Lectura y pre-procesamiento de las micromatrices: La matriz
de expresión génica se obtuvo mediante la aplicación de la librería rma implementada
en el paquete “affy” de la plataforma R. Este procedimiento realiza corrección por
background, normalización por ecualización de cuantiles y resumen de las pruebas
(probe summarization).
Procesamiento: El procesamiento de la matriz de expresión génica se realizó en tres
etapas. La primera consistió en eliminar los genes que no tienen comportamiento
diferencial entre tratamientos. Estos fueron la mayoría de los genes evaluados. Para ello
se ajustó un modelo lineal (ANAVA) utilizando el procedimiento lmFit (limma) (R-
package) para calcular los p-valores.
Una vez obtenidos los p-valores iniciales, se retuvieron sólo aquellos genes con p-
valores menores que 0.15. El número de genes retenidos en esta etapa fue, aún, un
número grande. A partir de estos genes “filtrados”, se aplicó una corrección al p-valor
para controlar la tasa de descubrimientos falsos (FDR) aplicando el procedimiento de
Benjamini y Hochberg (1995), implementado en la rutina mt.rawp2adjp (multest) (R-
package) utilizando el nivel de significación usual del 5%. Finalmente, con los genes
seleccionados se aplicaron técnicas multivariadas de reducción de dimensión y
clasificación no supervisada para la identificación de grupos de genes con patrones
similares de expresión en las distintas condiciones experimentales. A partir de estos
análisis se obtuvo una lista de genes candidatos que podrán ser confirmados
posteriormente por pruebas de laboratorio complementarias (qPCR). Todo el
procesamiento se realizó utilizando fgStatistics ya sea como interfaz de R o de manera
directa.
Análisis de expresión diferencial de genes. El análisis estadístico se realizó con un
conjunto de rutinas ad hoc para ajustar un modelo lineal de efectos mixtos, un gen a la
vez. Glicine max (Soja) Oligo Microarray 4x44K incluye cuatro arrays por chip, el
efecto del chip (bloque incompleto) se incluyó como efecto aleatorio. El conjunto de
rutinas mencionadas anteriormente se basaron en la función lme de la biblioteca nlme
de R implementado en el software estadístico InfoStat.
La comparación entre los tratamientos seleccionados se realizó mediante contrastes
apropiados, de manera de poder visualizar el efecto individual de la micorriza y el
patógeno sobre las plántulas de soja, así como también el efecto del patógeno en plantas
micorrizadas y el de la micorriza frente al patógeno. Lista de contrastes:
Ri+Fv - Ri Ri+Fv - Fv Ri+Mp - Mp Fv – Ctrl
Ri+Mp - Ri Ri - Ctrl Mp - Ctrl
Se consideraron como genes diferencialmente expresados aquellos con pValue >0.005
y con un Fold Change (FC) ≥ 3 o ≤ -2. Los términos GO de los genes seleccionados
fueron obtenidos a partir de la aplicación web Mercator Automated Sequence
Annotation Pipeline (http://mapman.gabipd.org/web/guest/app/mercator).
Para llevar a cabo el análisis ontogénico, los términos GO fueron importados en el
software MapMan (http://mapman.gabipd.org/web/guest/mapman) de manera de
obtener una mejor visualización de las vías en las cuales los genes están involucrados.
87
2.19. PNPV 1135024. Defensa en plantas contra fitopatógenos
Coordinador: Ricardo Masuelli
Unidad Sede: EEA Mendoza
2.19.1. Acción. Interacción entre la diversidad genética del Wheat streak mosaic
virus (WSMV) y de su vector Aceria tosichella Keifer en Argentina
Responsable: Vanina Alemandri, [email protected] (IPAVE)
Participantes: G.Truol, M.F. Mattio, S.M. Rodríguez, A. Dumón, P. López Lambertini
En Argentina se han detectado hasta el momento ocho virus en trigo, entre ellos, el
Wheat streak mosaic virus (WSMV), especie tipo del género Tritimovirus (Truol et al.
2004). El WSMV es naturalmente transmitido por el ácaro Aceria tosichella Keifer
(Wheat Curl Mite = WCM). WCM fue detectado en nuestro país en el año 2004, dos
años después de la detección de WSMV. Esta enfermedad fue declarada plaga no
cuarentenaria por el Servicio Nacional de Sanidad según Disposición 9/2003 de la
Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación de la Nación (SAGPyA).
Entre las principales estrategias para el manejo de la enfermedad se destaca la
utilización de genotipos de trigo con resistencia genética al virus. En estudios previos,
se han detectado diferentes razas de WSMV dentro de poblaciones de campo en Estados
Unidos, México y Eurasia. Por otra parte, se ha evidenciado la existencia de diferentes
linajes de A. tosichella con diferentes características biológicas en Australia y Estados
Unidos. Conocer la diversidad genética del WSMV y de su vector en Argentina aportará
al entendimiento de la epidemiología y ecología de este patosistema y al desarrollo de
germoplasma de trigo con resistencia a este virus. En este proyecto se propone estudiar
la interacción entre la diversidad genética de WSMV y de su vector Aceria tosichella
Keifer provenientes de diferentes regiones de Argentina evaluando la eficiencia de
transmisión del vector y la susceptibilidad de los cultivares evaluados. Se realizaron
muestreos dirigidos en cultivos de trigo en la provincia de Buenos Aires, en Entre Ríos
y en Córdoba durante el período 2009 y 2010. Se recolectaron plantas con síntomas
característicos de WSMV. Se establecieron poblaciones de ácaros, colocando hojas
infectadas en macetas con plantas de trigo asintomáticas recién emergidas. Los adultos
de A. tosichella fueron recogidos bajo lupa y preservados en etanol 100% para los
análisis moleculares. Se realizó la extracción de ADN de los adultos de eriófidos. Se
realizó PCR con iniciadores específicos para amplificar dos regiones genómicas
independientes, la 16S de mtDNA y una región Internal Transcribed Spacer (ITS) de
rDNA. El producto fue secuenciado directamente. Se identificaron 27 haplotipos ITS
entre las 134 secuencias ITS analizadas y 18 haplotipos 16S entre las 87 secuencias 16S
analizadas. Los resultados preliminares del análisis filogenético indicaron que las
poblaciones de A. tosichella de trigo de Argentina son muy similares entre si,
agrupándose en uno de los dos linajes descritos anteriormente en América del Sur.
Asimismo, estas poblaciones resultaron en el mismo grupo que poblaciones de A.
tosichella de trigo de Polonia, Brasil y Australia. Se continuará este estudio empleando
otros métodos de análisis filogenéticos e incorporando nuevas secuencias. Por otra
parte, se realizó la extracción de ARN total empleando un kit comercial de las plantas
recolectadas en los muestreos dirigidos. Se llevaron a cabo reacciones de RT-PCR para
amplificar el genoma completo de WSMV. El producto de PCR de cada aislamiento se
corrió en un gel de agarosa 1% y la banda obtenida, de aproximadamente 9384 pb, se
purificó desde el gel y se secuenció mediante la tecnología 454/Roche GS FLX
(INDEAR). Se realizó un análisis filogenético utilizando un fragmento de 1047 pb
correspondiente a la cápside proteica (CP). Se utilizaron las 13 secuencias generadas en
88
este estudio y 86 correspondientes a la CP de WSMV disponibles en GenBank. En los
árboles filogenéticos, todos los aislamientos argentinos forman un grupo monofilético
dentro del clado denominado D para este virus. Además, los aislamientos argentinos de
WSMV comparten un ancestro común reciente con los de Australia y con los
aislamientos ID96 (Idaho), MON96 (Montana), WA99 y WA94 de Washington de la
región del Pacífico noroeste de Estados Unidos (APNW). Ningún aislado argentino se
agrupó con los de Europa Central. Los aislamientos de WSMV provenientes de trigo y
recolectados de la de Región triguera IV y V Norte están más relacionados entre si que
con los del grupo correspondiente a los aislamientos de la región II Sur, III y V Sur de
la Argentina. No se observó que los aislamientos de WSMV se agruparan de acuerdo a
su hospedante.
2.19.2. Acción. Analizar la interacción entre virus (geminivirus y carlavirus),
especies de mosca blanca, endosimbiontes del vector, cultivar de poroto e
insecticida
Responsable: María Fernanda Mattio, [email protected] (IPAVE)
Participantes: V. Alemandri (IPAVE)
En el NOA, la producción de poroto se ve severamente afectada por la presencia de
virus, varios de ellos transmitidos por mosca blanca (Bemisia tabaci). Es por ello que la
aplicación de insecticidas es por momentos excesiva, lo cual impacta sobre el medio
ambiente. Los avances de la última década permitieron observar diferencias en la
población de bacterias endosimbiontes entre las distintas especies (antes biotipos) de
moscas blancas. Aún más, estudios sobre resistencia a insecticidas, señalaron que las
moscas blancas resistentes presentaban diferente población bacteriana con respecto a las
moscas silvestres. Esos estudios, atribuyeron la resistencia a insecticida a la presencia
de endosimbiontes. Dichos antecedentes originan el estudio de endosimbiontes en las
poblaciones de Bemisia tabaci presentes en los cultivos de poroto en la región del NOA
argentino. Durante el último trimestre de este año, se estableció contacto con los
profesionales de la EEA INTA Cerrillos-Salta para coordinar las actividades con el
personal de la EEA INTA Yuto en cuanto a la siembra y preparación de los lotes de
poroto sobre los cuales se hará la recolección de las muestras (hojas sintomáticas y
moscas blancas). Esta línea articula con el proyecto específico PNHFA 1106075.
2.19.3. Acción. Defensa en plantas contra fitopatógenos. Identificación y
caracterización de proteínas potencialmente involucradas en la interacción de
patógenos con su hospedador. Modelo de estudio: fitoplasma
Responsable: Fabiana A. Guzmán, [email protected] (IPAVE)
Participantes: A.B. Saavedra Pons, F.D. Fernández, T. Pérez Grosso (IPAVE), A.
Luque (IFRGV). Apoyo técnico: W. Arce y S. Brandimarte (IPAVE)
Los mecanismos de patogenicidad de los fitoplasmas aún no están claros, pero se ha
demostrado que algunos factores de virulencia secretados (denominados proteínas
efectoras) son dirigidos al núcleo de las células (Bai et al., 2009) alterando el
metabolismo de la planta, por lo que juegan un papel crucial no sólo en el desarrollo de
síntomas (Hoshi et al., 2009) sino también por ejercer un rol crítico en la interacción
patógeno-hospedante y de este modo interferir con diferentes procesos celulares de los
mismos, tales como tráfico intracelular; expresión génica y respuestas de defensa.
Trabajos previos de nuestro equipo, muestran que, en América del Sur, existen
fitoplasmas con características únicas, que se ven reflejadas en la composición del
genoma y en la relación con sus hospedantes. En esta línea de investigación, se está
89
trabajando en la identificación y caracterización de proteínas “candidatas efectoras”
pertenecientes al fitoplasma que estarían implicadas en patogenicidad.
Producir y caracterizar el antisuero específico contra la proteína SAP11ar del AY-
ACLL. Dado que la proteína recombinante SAP11ar de AY-ACLL (11kDa) expresada
en el vector pET-15b (Escherichia coli BL21(DE3)-Codon Plus RIL) fue obtenida en
baja concentración, se modificaron variables tales como: vector de expresión pET-
30ª(+) (Novagen), cepas bacterianas (E. coli BL21-(DE3) y E. coli BL21-(DE3) pLys),
concentraciones de IPTG (desde 400µM a 1 mM) y diferentes condiciones de
temperatura de crecimiento e inducción (28ºC/37ºC). Los resultados obtenidos no
mejoraron la expresión. En este momento se está ajustando un protocolo de purificación
para obtener la proteína recombinante en concentración suficiente para la obtención de
su antisuero específico.
Una vez purificada y cuantificada la proteína recombinante SAP11ar, se procederá a la
inmunización de conejos a fin de producir su antisuero específico. Su especificidad será
evaluada mediante la técnica de Western blot frente a extractos crudos de planta sana y
enferma. Finalmente, se intentará localizar la proteína efectora SAP11ar en tejidos de
planta infectada con el fitoplasma AY-ACLL.
Identificar y caracterizar proteínas efectoras del fitoplasma Aster yellows-
Argentinian Catharanthus Little Leaf (AY-ACLL) y determinar la variabilidad que
presentan con las proteínas homólogas ya identificadas en otros fitoplasmas. Se
está intentando amplificar secuencias correspondientes a otras posibles proteínas
efectoras mediante RT-PCR para, posteriormente, caracterizar su expresión en
diferentes tejidos de planta infectada. A partir de la secuencia ya reportada del
fitoplasma Aster yellows witches’-broom (AYWB) (GenBank Acc. Nº NC_007716) se
diseñaron ocho juegos de oligonucleótidos con los cuales se pretende amplificar, clonar,
secuenciar e identificar proteínas homólogas a las ya reportadas en otras cepas de
fitoplasmas cuyas secuencias genómicas han sido determinadas completamente (Onion
yellows, OY; Aster yellows witches’-broom, AYWB; Candidatus mali, CPmali;
Candidatus australiense, CPau y Strawberry lethal yellows str. NZSb11, SLY) o de
manera parcial (Peanut witches’-broom, PnWB; Vaccinium witches’ broom, VACp;
Italian clover phyllody strain MA, MA1p; Poinsettia branch-inducing strain JR1, JR1p
y Milkweed yellows, MW1p).
Bibliografía
Bai XD, Correa VR, Toruno TY, Ammar ED, Kamoun S, et al. (2009) Mol Plant
Microbe In 22: 18–30.
Hoshi A, Oshima K, Kakizawa S, Ishii Y, Ozeki J, et al. (2009) Proc Natl Acad Sci
USA 106: 6416–6421.
2.19.4. Acción. Diversidad molecular y estructura genética de poblaciones de
potyvirus y su asociación con la patogenicidad y severidad de los síntomas
Responsable: Marcos Celli [email protected] (IPAVE)
Participantes: V. Conci
La obtención de clones infecciosos del genoma viral es una herramienta importante para
el estudio del genoma. El uso de clones infecciosos, y luego mutantes, contribuye en la
identificación de las regiones genómicas involucradas en la inducción de los síntomas y
en de las interacciones planta-virus. Para la construcción de un clon infectivo de OYDV
90
que infecta cebolla, fueron diseñados tres juegos de cebadores específicos que
amplifican el genoma en tres fragmentos. En cada cebador fue agregado un sitio de
corte que posibilita la separación del fragmento amplificado en la etapa posterior al
clonado. Los sitios de corte y respectivas enzimas de restricción presentan un único sitio
de corte en el largo del genoma y permiten la ligación de los 3 fragmentos. La selección
de las enzimas fue basada en los resultados mostrados por el programa NEBcutter V2.0
que encuentra sitios de restricción en secuencias de nucleótidos.
En esta etapa se está poniendo a punto la amplificación de los tres fragmentos con los
cebadores diseñados.
El clon de DNA será clonado en vector de expresión que contiene el promotor viral
CaMV 35S. Los plásmidos recombinantes serán utilizados en pruebas de inoculación
mecánica en cebolla.
2.19.5. Acción. Caracterización del tipo de interacción en infecciones mixtas de
begomovirus. Inoculación por biobalística de plantas de tomate con Tomato yellow
vein streak virus (ToYVSV) y Tomato dwarf leaf virus (ToDLV). Evaluación de la
eficiencia de la fuente de resistencia de los cultivares seleccionados en infecciones
mixtas
Responsable: Paola M. López Lambertini [email protected] (IPAVE)
Participantes: V.A. Bornancini, C.G. Vaghi Medina, N. Puyané, V.V. Ranieri (IPAVE)
Los begomovirus incluyen patógenos de plantas con genoma a ADN simple cadena
empaquetado en partículas gemelas que infectan plantas dicotiledóneas y son
transmitidos por Bemisia tabaci. Su genoma puede ser monopartito (de 2.7-2.8, kb) o
bipartito con dos componentes genómicos de tamaño similar denominados ADN-A y
ADN-B (2,5 y 2,8 kb). Los begomovirus monopartitos se encuentran en el viejo
continente mientras que los bipartitos están distribuidos en América. Los primeros
trabajos sobre begomovirus en tomate realizados por nuestro grupo demostraron la
presencia de una gran diversidad de especies en Argentina. Además, se comprobó que la
ocurrencia de infecciones mixtas de diferentes especies de begomovirus es una situación
común en todas las regiones productoras de tomate. Un virus puede influir de tres
maneras sobre otro ya sea en el hospedante y/o en el vector aumentando (sinergismo),
disminuyendo (antagonismo) o no produciendo cambios en la replicación, el
movimiento, la expresión de síntomas y/o la transmisión. Las infecciones mixtas de
begomovirus en una misma planta tienen implicancias biológicas y epidemiológicas ya
que contribuyen a que diferentes especies de estos patógenos recombinen favoreciendo
la emergencia de nuevas especies más adaptadas a condiciones ambientales cambiantes.
Además, pueden favorecer al quiebre de la resistencia disponible. Los begomovirus no
poseen una eficiente inoculación mecánica por lo tanto una de las alternativas es la
inoculación mediante biobalística. Se seleccionaron diferentes cultivares portadores de
tolerancia a begomovirus que utilizan nuestro productores. Se comenzó con los ensayos
de evaluación de resistencia/tolerancia a begomovirus en tomate.
2.19.6. Acción. Desarrollo de construcciones basadas en microRNAs artificiales
para generar plantas transgénicas de petunias resistentes a Tospovirus y de trigo
resistentes al Wheat streak mosaic virus
Responsable: Humberto Debat [email protected] (IPAVE)
Participantes: D. Ducasse, P.M. López Lambertini, V. Alemandri, V.V. Ranieri, N.
Puyané (IPAVE), M. Pérez de la Torre (Inst. Floricultura)
91
La línea de acción involucra la generación de construcciones génicas por ingeniería
genética, que consiste brevemente en estudios bioinformáticos referentes a la selección
de blancos virales, su conservación, su evaluación in silico de la susceptibilidad de
dichas regiones a ser silenciadas por ARN pequeños, el diseño de microRNAs
artificiales con las regiones seleccionados, el clonado molecular y transferencia a
vectores de expresión en plantas y la eventual evaluación de manera transiente de la
efectividad de las mismas en su capacidad de regular negativamente la expresión de la
región genómica viral blanco. Hasta el momento, se están evaluando in silico diversos
targets virales putativos que presenten mayor capacidad intrínseca de ser silenciados
por ARN de interferencia.
2.19.7. Acción. Análisis de la expresión de genes de defensa en variedades de soja
con diferente comportamiento frente a patógenos radiculares
Responsable: Giachero, María Lorena, [email protected] (IPAVE).
Participantes: D.A. Ducasse, M.L.Giachero, N. Marquéz (IPAVE).
Esta línea de acción fue prorrogada hasta el año próximo.
2.20. PNPV 1135032. Composición, estructura y dinámica de poblaciones y
comunidades de artrópodos en agroecosistemas y desarrollo de instrumentos de
apoyo a la investigación y a la toma de decisiones de manejo
Coordinador: Eduardo Trumper
Unidad Sede: EEA Manfredi
2.20.1. Acción. Mapas y modelos de distribución geográfica de Dalbulus maidis,
vector de tres patógenos del achaparramiento del maíz, en función de variables
espacio-temporales, en Argentina
Responsable: María de la Paz Giménez Pecci
Participantes: I.G. Laguna (IPAVE-CONICET), Macarena Casuso (EEA LAS
BREÑAS), Jorge Raspanti (IPAVE), Marcelo Druetta (IPAVE- EEA Quimilí), Matías
Romaní (EEA Sgo del Estero), Florencia Casse (EEA R.S. Peña), José Marcellino
(AER Río Cuarto), Susana Paradell (Univ. Nac. La Plata), Ana Marino Remes Lenicov
(Univ. Nac. La Plata), Marcelo Otero (UBA).
Durante esta campaña, se iniciaron los monitoreos de cicadélidos con trampas amarillas
en varias localidades de la zona templada y subtropical.
2.21.PNSUELO 1134043 - Caracterización y funcionalidad de la biota del suelo
Coordinador: Silvina Vargas Gil [email protected] (IPAVE)
Unidad Sede: IPAVE
2.21.1. Acción. La diversidad microbiana del suelo en la sustentabilidad de los
agroecosistemas
Responsable: Silvina Vargas Gil, [email protected] (IPAVE)
Participantes: D. Chavarría, D. Serri, R. Oberto
Es indispensable la conservación del recurso suelo para mantener a largo plazo la
sustentabilidad de los agroecosistemas. Para poder conocer el nivel de deterioro de un
suelo, como también el efecto que está produciendo el manejo cultural sobre la calidad
del suelo, se pueden cuantificar los parámetros químicos, físicos y biológicos y
correlacionarlos con la sanidad de los cultivos que se desarrollan en ese suelo, como
resultado de la microbiota del suelo-planta. Los parámetros biológicos representan
propiedades del ambiente o impactos al ambiente, pudiendo referirse a la diversidad
92
funcional o estructural de una comunidad microbiana. En la rizósfera, la actividad
microbiana es elevada, y tanto en cantidad como en diversidad las poblaciones de
microorganismos se encuentran en cambio dinámico a través de la interacción suelo-
planta, de manera que la biodiversidad responde a las condiciones químicas y físicas del
suelo como producto de los manejos del ambiente. Debido entonces a la capacidad que
tiene la microbiota edáfica para responder rápidamente a los cambios ambientales, los
bioindicadores son ideales para cuantificar la salud del suelo. El tipo de cobertura
vegetal (restos de cosecha, enmiendas orgánicas) determinado por el cultivo realizado y
el manejo de los rastrojos, son algunos de los factores que afectan a la magnitud de la
población de microorganismos y en consecuencia a la intensidad de la actividad
biológica. La rotación de cultivos involucra la alternancia temporal de diferentes
cultivos en el mismo espacio, lo cual tiene varios efectos positivos en el sistema
productivo. Desde el punto de vista de la fertilidad del suelo, la rotación hace un uso
balanceado de nutrientes comparado con el monocultivo, evitando desequilibrios
químico s de importancia, aunque se complemente con fertilización química que
contemple las diferentes necesidades de cada cultivo. Desde el punto de vista de las
condiciones físicas del suelo, las rotaciones favorecen su estructura, pues distintos
sistemas radiculares de los cultivos exploran diferentes estratos del perfil, permitiendo
la colonización del suelo con raíces de diferente arquitectura. Esta práctica es
importante para la sanidad de los cultivos, tanto que su efecto sobre los
microorganismos del suelo es explícitamente reconocido como “efecto rotación de los
cultivos”, siendo la más importante herramienta de manejo de enfermedades empleada.
La Tabla 1 presenta la correlación entre parámetros físicos, químicos y biológicos y la
podredumbre carbonosa en soja.
Tabla 1. Análisis de correlación de Pearson
(p≤0,05) entre los principales parámetros físicos,
químicos y biológicos del suelo y la podredumbre
carbonosa de la soja, en distintos sistemas
productivos del norte de la Provincia de Salta
Parámetros físicos,
químicos y biológicos
Podredumbre carbonosa
Macrophomina
phaseolina
Respiración Microbiana 0,01
Carbono de la Biomasa
Microbiana -0,34*
Actividad Deshidrogenasa -0,07
Hidrólisis de Diacetato de
Fluoresceína -0,31*
Trichoderma spp. -0,29*
Gliocladium spp. -0,21
Actinomicetes -0,22
Hongos totales -0,32*
Bacterias totales -0,10
Pseudomonas fluorescentes -0,22
Carbono Orgánico -0,03
Nitrógeno total -0,09
Fósforo extractable
0,14
Estabilidad de Agregados
del suelo -0,16
Densidad Aparente 0,11
Rendimiento 0,07
93
Se evidenció una correlación negativa entre la mayoría de las variables biológicas
evaluadas y la incidencia de podredumbre carbonosa, siendo significativas el carbono
de la biomasa microbiana, hidrólisis de diacetato de fluoresceína y potenciales
biocontroladores como Trichoderma spp. Esto indicaría que a menor actividad y
biomasa microbianas en el suelo, el cultivo se vio mayormente afectado por la
enfermedad. Es fundamental el manejo para incrementar la diversidad y funcionalidad
microbiana nativa a los fines de mejorar la sanidad del cultivo.
Virus en chia (Salvia hispanica L.)
Responsable: Marcos Celli
Participantes: Patricia Rodríguez, María Cecilia Perotto, Julia Martino, Vilma Conci
La chía (Salvia hispanica L.) es una planta herbácea de la familia Lamiaceae oriunda de
América Latina. Su cultivo casi fue exterminado durante la conquista y, en la
actualidad, debido a la demanda de la industria alimenticia y por sus propiedades
beneficiosas para la salud, ha recobrado importancia. La superficie cultivada con esta
especie, de gran adaptación en el Noroeste Argentino (NOA), pasó de 10 mil hectáreas
en 2011 a 50 mil en 2012 y se estima un nuevo incremento en 2013, con una
rentabilidad que superará ampliamente a la de soja. En las últimas campañas se detectó
un gran número de plantas afectadas con síntomas virales en cultivos al norte de Salta.
El objetivo de este trabajo fue identificar los virus responsables de esta patología. Se
tomaron muestras que presentaban síntomas típicos de virosis: hojas arrugadas,
enanismo y clorosis. Se extrajeron los ácidos nucleicos totales utilizando RNeasy Plant
Mini Kit (Qiagen®) y, en base a la hipotética presencia de begomovirus, se utilizaron
los iniciadores degenerados PAL1v1978 - PAR1c496. Estos amplifican un fragmento
de entre 1100 y 1300 pb correspondiente a la región 5’del gen Rep, la totalidad de la
región común y el extremo 5’del gen de CP. En uno de los tres lotes evaluados se
obtuvo un fragmento del tamaño esperado (1100 pb) lo cual confirma la presencia de un
begomovirus. Se continúa trabajando en la secuenciación completa del genoma viral
para completar la caracterización del virus detectado y en estudios para identificar
otro(s) posibles virus presentes en el cultivo.
CARTERA de Proyectos INTA 2009
A continuación se informan los resultados de las acciones contenidos en la Cartera
de Proyectos INTA 2009 que no continúan en la Cartera de Proyectos 2013.
2.22. PNCER PE 022441 Manejo integrado de organismos perjudiciales en cultivos
de cereales y oleaginosas
Coordinador: J. Frana (EEA Rafaela). [email protected]
2.22.1. Acción. Evaluación de cultivares de trigo frente a Wheat streak mosaic virus
(WSMV) y High plains virus (HPV) mediante infección artificial con el vector
Aceria tosichella Keifer
Responsable: G. Truol (IPAVE)
Participantes: V.M. Alemandri, A.D. Dumón; E.B. Argüello Caro; M.F. Mattio S.M.
Rodríguez (IPAVE); G. Donaire; E. Alberione; C.T. Bainotti (EEA M. Juárez)
94
Una importante limitación para la producción de trigo es lo que actualmente se
denomina el complejo de virus transmitidos por ácaros. Este complejo está constituido
por tres virus: Wheat streak mosaic virus (WSMV), Wheat mosaic virus (WMoV)
(anteriormente designado como High Plains virus, HPV) y Triticum mosaic virus
(TriMV). El ácaro Aceria tosichella Keifer es el único vector conocido de este
complejo. Un objetivo de esta línea de investigación fue evaluar la biología de la
transmisión de poblaciones de A. tosichella con diferentes aislados de WSMV en
condiciones de invernáculo. Se multiplicaron dos aislamientos de virus conjuntamente
con la colonia del ácaro vector. Se utilizaron los aislamientos General de Madariaga
(GM) y Marcos Juárez (MJ) en dos ensayos de transmisión realizados en 2011 y 2012
respectivamente en condiciones de invernáculo. Se evaluaron 32 cultivares en ambos
ensayos. Se empleó un modelo generalizado binomial para el análisis de los valores de
porcentajes de plantas infectadas. Se observaron diferencias estadísticamente
significativas (p<0.0001) entre los dos años y entre cultivares. Además, se observó
interacción significativa entre año y cultivar. Mediante gráficos se pudo observar que la
totalidad de los cultivares mostraron mayores porcentajes de plantas enfermas en el
2012 (inóculo MJ) que en 2011 (inóculo GM). Los resultados obtenidos muestran que
existen diferencias en la biología de la transmisión de las dos poblaciones de ácaros con
sus respectivos aislamientos de virus.
Por otra parte, se evaluó el comportamiento de diferentes cultivares de trigo ante
WSMV y WMoV en infecciones artificiales con el vector A. tosichella, bajo
condiciones de campo durante el período 2013. El ensayo se condujo con tres
repeticiones usando parcelas tipo Hill-plots, en la Estación Experimental del INTA
Marcos Juárez. Fue sembrado e inoculado antes del macollaje, aproximadamente 30
días después de la siembra. Se evaluaron 48 cultivares de trigo. Para determinar la
incidencia de WSMV y WMoV en cada cultivar, se recolectó la hoja bandera de cada
planta inoculada y se analizaron por DAS-ELISA con sueros específicos para ambos
virus. Para el análisis de la incidencia de cada virus se utilizará un modelo linear
generalizado entre los distintos cultivares.
2.23. PNFRU-051711. PE Mejoramiento de material base en frutales
Responsable: Carra, María Silvia Hilda
Módulo Olivo.Responsable: Prenol, Luis Victor
2.23.1. Acción. Caracterización morfológica, agronómica y molecular de genotipos
de olivo (Olea europaea L.) seleccionados en los departamentos de Pomán y
Andalgalá, Catamarca
Responsable: Luis R. Conci (IPAVE), [email protected]
Participantes: L. Torres (adscripta de la UNC), R.Taborda (UNC)
La provincia de Catamarca cuenta con olivares tradicionales caracterizados por una
amplia variabilidad de materiales de origen diverso debido a su procedencia o por
derivar de semillas de otros cultivares. La caracterización de cultivares de olivo permite
su identificación inequívoca y la valoración de su aptitud con fines agrícolas. El
objetivo del trabajo fue caracterizar morfológica, agronómica y molecularmente doce
genotipos de olivo seleccionados por su aptitud industrial sobresaliente.
Para la caracterización morfológica se analizaron doce genotipos procedentes de los
departamentos de Andalgalá (An) y Pomán (Po), provincia de Catamarca. La misma se
realizó en base a los descriptores establecidos por el Instituto Nacional de Semillas
(INASE). La caracterización molecular se realizó en 16 genotipos mediante el uso de
95
siete microsatélites de las series DCA (3, 5, 14, 18 y 16), IAS-oli (27) y UDO (43)
amplificados a partir del ADN extraído de hojas jóvenes y visualizados en geles de
acrilamida-bis-acrilamida al 15% bajo luz UV. Paralelamente, se determinaron
caracteres agronómicos/industriales referidos a contenido graso del fruto y estabilidad
oxidativa del aceite y contenido de polifenoles.
Con los datos obtenidos, se realizó un análisis descriptivo de la variabilidad fenotípica y
genética de los materiales, considerando los doce genotipos caracterizados
morfológicamente. La variabilidad genética se evaluó considerando los siete
marcadores en conjunto, y a nivel de marcador. Para cuantificar la asociación entre
ambos conjuntos de datos y visualizar el nivel de consenso entre datos genéticos y
fenotípicos se realizó un Análisis de Procrustes Generalizado.
Para todos los loci analizados en los materiales procedentes de Andalgalá y Pomán, se
obtuvieron amplificaciones de tamaño aproximado según la bibliografía (Figura 1).
Respecto a diversidad genética de los materiales estudiados, el número promedio de
alelos fue de 7,8 mientras que la heterocigosidad promedio fue de 0,58 y la
heterocigosidad insesgada de Nei fue 0,73. El número de alelos varió entre 2 y 14,
siendo DCA 18 el marcador más polimórfico y DCA 14 el menos informativo (Figura
2). La ordenación de consenso obtenida mediante el Análisis de Procrustes
Generalizado (APG) usando ambos tipos de datos (fenotípicos y genéticos) y el
consenso entre la caracterización molecular y fenotípica resultó del 90%. El primer eje
del APG resume un 16% de la variabilidad del consenso y el segundo eje explica un 14
% (Figura 3). La proporción del consenso de los materiales varió entre 83% (27 Po) y
93% (25 An), siendo alta para todos los materiales.
La alta asociación detectada entre la variabilidad genética y fenotípica (morfológica-
agronómica/industrial) confirma el valor taxonómico a los caracteres fenotípicos
utilizados y contribuyen a la caracterización de los genotipos estudiados.
Figura 1: Patrón electroforético en gel de bis-acrilamida 15% correspondiente a productos de PCR
con cebadores del microsatélite DCA 5. M: MPM 50 pb (Fermentas ™); 1-8: Genotipos de
Andalgalá; 9-16: Genotipos de Pomán.
M 1 2 3 4 5 6 7 8 M 9 10 11 12 13 14 15 16
200 pb
96
Figura 2: Diversidad genética obtenida mediante análisis de marcadores microsatélites
analizados en doce genotipos de olivo de las localidades de Andalgalá y Pomán.
Figura 3: Ordenación de consenso entre la variabilidad
genética y fenotípica de 12 genotipos de olivo de
Andalgalá (An) y Pomán (Po).
2.24.AEPV: PE 214022. Caracterización de las interacciones planta patógeno y
mecanismos de resistencia
Coordinador: Ricardo Masuelli, [email protected]
Unidad Sede: EEA Mendoza
2.24.1. Acción. Identificación y caracterización de proteínas potencialmente
involucradas en la interacción de los fitoplasmas con su hospedador
Responsable: F. A. Guzmán (IPAVE) [email protected]
Participantes: L.R. Conci, A.B. Saavedra Pons y F.D. Fernández (IPAVE)
Se logró identificar y expresar la proteína efectora SAP11ar de AY-ACLL
potencialmente involucrada en la interacción planta-patógeno.
97
Clonado, expresión y purificación de una proteína candidata efectora de
fitoplasma. En esta línea de investigación, se está trabajando en la identificación y
caracterización de proteínas “candidatas efectoras” pertenecientes al patógeno que
estarían implicadas en patogenicidad. Se han diseñado oligonucleótidos para amplificar
la secuencia de la proteína SAP11ar correspondiente al fitoplasma Aster yellows-
Argentinian Catharanthus Little Leaf (AY-ACLL; Candidatus Phytoplasma asteris)
presente en plantas de vinca (Catharanthus roseus L.G.Dom). El producto amplificado
por PCR fue clonado y secuenciado identificándose la presencia de un codón de
finalización prematuro. No obstante, fue posible detectar transcriptos del gen en estudio
en plantas infectadas mediante RT-PCR. Para la producción de un suero contra la
proteína efectora, la secuencia (sin codón de finalización) fue clonada en el vector de
expresión pET-15b y expresada en Escherichia coli BL21(DE3)-Codon Plus RIL,
obteniéndose la proteína recombinante SAP11ar de 11kDa (Figura 1). La identidad de
dicha proteína se confirmó mediante análisis de MALDI-TOF.
Figura 1: Inducción de la expresión de la proteína SAP11ar de AY-ACLL en células de E. coli
BL21 (DE·) codon RIL. SDS-PAGE 15% teñido con coomassie brillant blue. M-Page Ruler™
Prestained Protein Ladder. (Thermo Scientific), 1 y 3-Clones inducidos, 2 y 4-Clones s/ inducir. 5-
pET-15b inducido. 6-pET-15b s/ inducir.
Predicción de la función de la proteína del patógeno mediante análisis
bioinformático. Los programas SignalP v.3.0 y TMHMM v.2.0 permitieron predecir la
presencia de una secuencia péptido señal y ausencia de dominios adicionales de
transmembrana, requisitos ambos en proteínas que son secretadas al citoplasma del
hospedador y que podrían tener un rol putativo en la interacción hospedador-patógeno.
El análisis de los resultados reflejó alta variabilidad existente entre las proteínas
efectoras (bajo porcentaje de homologías a nivel de secuencias aminoacídicas). El
programa WoLF PSORT predijo localización subcelular en núcleo (Figura 2).
M L K L K N Q F K M F Y F C L I I S I G L L L V I N N N V M A S P T K E S S S K
K R D N E F V K L E E E N K K Q K A D I K R F F T T H K E F Q G Y S I E K N
N K I I E I L E N P E L M K I L K Q K A E E A G K S S Q E K D S S S E Q P D D S
K K Stop
Figura 2: Predicción, mediante el programa PSORT-versión 6.4, de la secuencia de aa requerida
para direccionar la proteína a núcleo (secuencia de aa subrayada).
M 1 2 3 4 5 6 kDa 70 35 15 10
SAP 11ar
98
2.25. AEPV PE 214012. Identificación, producción de reactivos de diagnóstico,
caracterización y análisis de la variabilidad de patógenos
Coordinador Responsable: Dra Graciela Truol [email protected]
Línea: Caracterización, epidemiología y diagnóstico de Fitoplasmas
Responsable: Luis R. Conci.
Participantes: F.Guzmán (INTA-IFFIVE); C. Nome (INTA-IFFIVE); N. Meneguzzi
(INTA-Famailla); F. Fernández (Becario FONCyT); L. Torres (UNC); E. Galdeano
(UNNE/Conicet); S. Paradell (UNLP); A. Saavedra Pons (CONICET/MinCyT); T.
Pérez Grosso (Becario FONCyT).
2.25.1. Acción. Detección y caracterización del agente causal de “escoba de bruja”
en Bermuda grass (Cynodon dactylon)
En Asia, Australia, Europa y Cuba, los síntomas de “white leaf” en gramíneas, entre
ellas caña de azúcar, sorgo y “bermuda grass” han sido asociados a fitoplasmas del
grupo 16SrX, siendo Candidatus Phytoplasma cynodontis la especie de referencia del
grupo. En Argentina, no existen registros de esta enfermedad en gramíneas cespitosas.
En los alrededores de la localidad de Rio Primero (Córdoba), se observaron plantas de
bermuda grass (C. dactylon) con síntomas asociados a infección con fitoplasmas, tales
como marcado acortamiento de entrenudos y “escoba de bruja”. Para avanzar en la
caracterización e identificación del agente causal de estos síntomas en bermuda grass,
se analizó mediante PCR directo y anidado, con dos juegos de cebadores universales
para fitoplasmas, el ADN de diez plantas sintomáticas de bermuda grass y sanas como
control negativo. Como controles positivos se utilizó ADN de los fitoplasmas ACLLcba
-Argentinian catharanthus little leaf- y ChTDIII -China-tree decline- pertenecientes a
los grupos Aster yellows (16SrI-S, rr-rp, tuf-H) y X-disease (16SrIII-B)
respectivamente.
A partir del ADN de las muestras sintomáticas –BGSI; BG1.1; BG2.1- y de los
controles positivos, se logró amplificar fragmentos de 1240 pb, mediante PCR anidado
con los cebadores 16SrF2/R2 los cuales fueron tratados con las endonucleasas AluI,
HpaII, MseI, RsaI. La digestión produjo patrones de restricción que se visualizaron bajo
luz UV en geles de agarosa de alta resolución, previa tinción con bromuro de etidio
(fig.1). Los perfiles electroforéticos, si bien fueron similares a los presentados por los
fitoplasmas X-disease y Aster yellows según la planta analizada, la ocurrencia de una
combinación de bandas propias de ambos patógenos en una misma planta, sugiere una
posible co-infección de ambos fitoplasmas. Es necesario continuar con el análisis
molecular de las secuencias de el o los fitoplasmas presentes en C. dactylon, para
definir su posición taxonómica.
99
Figura 1: Patrón de restricción de los productos amplificados -1240 pb-, con los cebadores
R16Fn2/R16R2 a partir del ADNr de fitoplasmas detectados en Cynodon dactylon, digeridos con las
endonucleasas AluI, HpaII y MseI. M: marcador de peso molecular 100 bp (Promega).
1- ChTDIII, 2- ACLLcba, 3- BGSI, 4- BG1.1, 5- BG2.1, 6- ChTDIII, 7- ACLLcba, 8-
BGSI, 9- BG1.1, 10- BG2.1, 11- ChTDIII, 12- ACLLcba, 13- BGSI, 14- BG1.1, 15-
BG2.1.
Proyectos Convenio INTA AUDEAS CONADEV
PROYECTO INTA AUDEAS CONADEV Nº 940140. Evaluación de indicadores
de sustentabilidad biológicos, físicos y químicos en diferentes ambientes de la
Región Pampeana.
Responsable científico y administrativo: S. Vargas Gil
Coordinadores de Módulo: M. Basanta (EEA Manfredi), H. Apezteguía (Univ. Nacional
de Córdoba) y C. Fernández Belmonte (Univ. Nacional de San Luis).
Participantes: R. Oberto, J. Miranda, D. Serri, D. Chavarría
En Argentina, la simplificación de los agroecosistemas ha provocado la disminución de
los servicios naturales (como reciclado de nutrientes, captación y almacenamiento de
carbono ©, biodiversidad microbiana, control biológico, neutralización de desechos
tóxicos, etc.), los costos económicos y ambientales pueden ser significativos. Entre ellos
se encuentra la pérdida de recursos, como la disminución de la calidad del suelo,
causada por extracción y escasa reposición de nutrientes, contaminación de suelo por
uso indiscriminado de agroquímicos, aumento de la erosión, entre otros (Documento
Base de Suelos INTA, 2011). Los agroecosistemas estarían perdiendo sus componentes
funcionales básicos, reduciendo su capacidad para subsidiar la fertilidad del suelo,
debiendo sostenerse mediante el consumo de insumos externos costosos, contribuyendo
así a la contaminación ambiental.
AluI HpaII MseI
M 1 2 3 4 5 6 7 8 M 9 10 11 12 13 14 15
M
100
Ante esta situación, deben implementarse estrategias de manejo, como la siembra
directa y la rotación de cultivos, que tiendan a mejorar la productividad de los
agroecosistemas, en un marco de producción sustentable. Particularmente en la Región
Pampeana de nuestro país, que concentra la mayor producción de cereales y
oleaginosas, la realidad no escapa a lo expresado anteriormente. Esta Región presenta
además marcadas diferencias en las condiciones edafo-climáticas de los ambientes que
la conforman por lo que las prácticas culturales deberían adaptarse a cada ambiente y
garantizar la conservación del recurso suelo, favoreciendo la productividad de los
principales cultivos en estos ambientes. La información generada sobre variables
indicadoras de la calidad del suelo en los ambientes bajo prolongados períodos de
agricultura continua es parcial. En consecuencia, el conocimiento sobre los efectos de la
agriculturización en estos ambientes resulta escaso, es decir, que no se ha cuantificado
el nivel de deterioro que tiene el suelo como consecuencia del manejo, en comparación
con suelos prístinos.
A partir de los cultivos más frecuentes para cada ambiente, se evaluaron secuencias de
cultivo (soja-maíz, soja-cultivos de cobertura-maíz y soja-pasturas-maíz) bajo siembra
directa. En todos los ensayos se determinaron un conjunto de indicadores de calidad de
suelo con la finalidad de seleccionar, en cada ambiente, los que resulten más sensibles a
los cambios en las condiciones del suelo como resultado del manejo, tomando como
referencia el suelo de monte nativo (situación prístina) o una pastura o un parque sin
disturbar (situación semiprístina). Además, se cuantificó la productividad y la
indicencia de enfermedades causadas por hongos de suelo en soja. Se planteó la
caracterización de diferentes ambientes agroclimáticos (semiáridos y subhúmedos) de la
Región Pampeana bajo bosque nativo, mediante indicadores biológicos, físicos y
químicos edáficos. Fue efectuado el primer muestreo de suelo y se están realizando las
primeras determinaciones en laboratorio.
Programa de Cooperación Internacional INTA – EMBRAPA
1.-INTA/EMBRAPA. Impacto del cambio climático sobre enfermedades y plagas
de cultivos de importancia para la agroindustria de Argentina y Brasil
Responsable por la contraparte Argentina: Alejandro Rago
Participantes por Argentina: Alejandro Valeiro (EEA Famaillá); Guillermo March
(IPAVE), Cristina Morales (EEA Famaillá); Cristian Simon (EEA Las Breñas); Paola
Fontana (EEA Famaillá); Claudio Oddino (UNRC); Cinthia Conforto (IPAVE); Raúl
Cáceres Díaz (EEA Las Breñas); Germán Herrera (EEA Las Breñas); Matías Bisonard
(Fundación ArgenINTA)
Para el patosistema maní “viruela del maní”, se generaron tablas con las condiciones
ambientales favorables para la ocurrencia de la enfermedad, según diferentes
parámetros climáticos. La que mejor ajustó en base a epidemias ocurridas en el cultivo,
fue la tabla elaborada con temperatura media y precipitaciones. Se crearon los mapas
para la serie histórica 1961/1990 que fueron validados con los fitopatólogos
especialistas en el cultivo. Con esta información ajustada se elaboraron los mapas
epidémicos previstos para los escenarios A2 (pesimista) y B1 (optimista) para los
períodos 2011/2040; 2041/2070 y 2071/2100 según la previsión de cambio climático
del IPCC (Figura 1). Los resultados obtenidos indican que en el actual área productora
de maní (sur de la provincia de Córdoba, norte de La Pampa, este de San Luis y norte de
101
Salta), continuarán las condiciones favorables para la enfermedad durante los próximos
100 años para los dos escenarios. Esta información plantea la necesidad de seguir
trabajando en mejoramiento genético buscando resistencia a la viruela del maní y en
control químico, investigando en nuevas moléculas con mayor eficiencia de control.
En “picudo del algodonero” se validaron los escenarios actuales y fajas de condiciones
favorables para el insecto. Se está avanzando en el diseño tendiente a generar y validar
las Fajas de Favorabilidad de plagas y enfermedades en escenarios futuros de acuerdo a
los Escenarios previstos por IPCC.
Última etapa del Proyecto. Se generó una tabla con las condiciones ambientales
favorables para el “picudo del algodonero”, que resultó del análisis de la información
disponible sobre la biología del insecto, la cual fue confrontada con los datos de campo
para su validación y ajuste, en base a las dos campañas algodoneras, 2010/2011 y
2011/2012, opuestas en sus aspectos climáticos y en el comportamiento del insecto.
Como resultado de este análisis se elaboró una tabla de condiciones de favorabilidad,
que fue insumo para la elaboración de los borradores de mapas epidémicos de la plaga,
que se están validando con en la actual campaña agrícola.
Para las “royas marrón y anaranjada de la caña de azúcar”, se encuentran en proceso de
ajuste las ecuaciones para elaborar los mapas epidémicos de ambas enfermedades en
función de las condiciones históricas de favorabilidad.
Una vez ajustadas las fajas de condiciones favorables y detectado el parámetro que
mejor ajusta para cada caso en estudio, se elaborarán los mapas epidémicos para dos
escenarios climáticos futuros contrastantes para los intervalos 2011/2040; 2041/2070 y
2071/2100.
El proyecto se desarrolla sin inconvenientes existiendo una fluida comunicación entre
los responsables de ambas instituciones, como también entre los participantes de las
diferentes unidades de INTA con el coordinador.
La Ing. Cristina Morales (EEA Famaillá) realiza su tesis de Maestría Interdisciplinar en
Gestión Ambiental de la Facultad de Ciencias Naturales e IML de la Universidad
Nacional de Tucumán. Título: “Impacto del cambio climático sobre enfermedades en el
cultivo de caña de azúcar para la agroindustria de Argentina”.
EMBRAPA Medio Ambiente brindó una Capacitación de dos semanas en el mes de
mayo en Jaguariuna, SP, Brasil sobre “Geoprocesamiento en estudios de cambio
climático y distribución espacial y temporal de enfermedades y plagas de plantas”.
Participaron dos profesionales involucrados en el Proyecto, Ing. Raul Cáceres de la
EEA INTA Las Breñas y el Biól. Matías Bisonard del IPAVE.
Del avance del proyecto se presentó un resumen en el 46 Congreso Brasilero de
Fitopatologia: “Mapas da distribuição espacial da cercosporiose do amendoim na
Argentina nos cenários climáticos futuros” Bisonard, M; Hamada, E; Cazón, I; Rago, A.
realizado en Ouro Preto, Brasil. Que fue presentado por Ignacio Cazon, participante del
proyecto. Figura 1.
102
Figura 1. Mapas epidémicos para la ocurrencia de la viruela del maní en Argentina para los
escenarios B1 (optimista) y A2 (pesimista) para el mes de febrero para los períodos 1961-1990,
2011-2040, 2041-2070 y 2071-2100
2. EMBRAPA- INTA: Nº 4
Monitoreo y diagnóstico del complejo Aceria tosichella Keifer / Wheat streak
mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), contribución argentina para la
comprensión y manejo de un patosistema en expansión en Sud América
Líder INTA: Graciela Truol (IPAVE-CIAP) [email protected]
Líder EMBRAPA trigo: Douglas Lau (EMBRAPA Trigo, Passo Fundo)
Participantes: Paola L. Lambertini, (IPAVE-CIAP-INTA), Vanina Alemandri (IPAVE-
CIAP-INTA), Fernanda Mattio (IPAVE-CIAP-INTA), Analía Dumón (CONICET),
Evangelina Arguello (CONICET), Mónica Rodríguez (IPAVE-CIAP), Carlos Bainotti
(EEA. INTA, M. Juárez), Beatriz Formica (EEA. INTA, M. Juárez), Jorge Fraschina
(EEA. INTA, M. Juárez), Enrique Alberione (EEA. INTA, M. Juárez), Guillermo
Donaire (EEA. INTA, M. Juárez), Dionisio Gómez (EEA. INTA, M. Juárez), Ana Clara
Pontaroli (EEA INTA, Balcarce), Pablo Abatte (EEA INTA, Balcarce), Máximo
Lorenzo (EEA INTA, Balcarce).
Parte de los resultados son informados en el PNPV 1135024 (punto 2.19.1).
2.1. El complejo Aceria tosichella Keifer Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High
Plains virus (HPV), situación en Argentina
El cultivo de trigo, en la actualidad, es el cereal de invierno de mayor importancia
económica en el país, tanto por la superficie sembrada, 3,8 millones de ha, como por la
103
producción de granos (13,87 millones de toneladas). La producción de trigo es afectada
por diferentes factores limitantes, tanto abióticos como bióticos. Entre los primeros,
revisten gran importancia el déficit hídrico y nutricional, y temperaturas extremas en
estados críticos del cultivo. Entre los bióticos, se destacan las enfermedades fúngicas y
virales. Entre ellas, Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High Plains virus (HPV)
usualmente se encuentran en infecciones mixtas, ya que ambas son transmitidos por
Aceria tosichella Keifer (Wheat curl mite, WCM), el cual produce el enrollamiento de
la hoja de trigo. En Argentina se han detectado ambos virus y su vector. Hasta el
momento, la presencia de WSMV se ha reportado en ocho provincias argentinas.
Además de trigo, este virus se ha detectado en otras gramíneas cultivadas o espontáneas
de Argentina, tales como Avena sativa L., Hordeum vulgare L., Zea mays L., Setaria
italica (L.) Beauv., Digitaria sanguinalis L., Echinochloa crusgalli L., Panicum sp,
Brachiaria sp., Grama sp, Cynodon dactilon L. y Sorghum halepense L. En el año 2006
se identificó por primera vez en el país el High Plains virus (HPV), actualmente
conocido como Wheat mosaic virus (WMoV) en Corral de Bustos (Córdoba) y
posteriormente en la provincia de Bs. As. Es frecuente encontrar ambas virosis en
infecciones mixtas, ya que A. tosichella puede transmitir ambos virus produciendo un
daño más severo. El objetivo general del proyecto es conocer la situación del complejo
A. tosichella Keifer / Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High Plains virus (HPV) en
Argentina, relacionada a la presencia de ambos virus,y a la caracterización del ácaro y
de los virus transmitidos, y estimar su impacto por medio de la evaluación de la
susceptibilidad de cultivares de trigo para establecer medidas de manejo adecuadas a
estas enfermedades.
2.2. Prospección y evaluación de la incidencia y prevalencia de Wheat streak mosaic
virus (WSMV) y High Plains virus (HPV)
El complejo de virus trasmitidos por el ácaro Aceria tosichella Keifer afecta cultivos de
cereales en todo el mundo. Entre ellos, se destacan Wheat streak mosaic virus (WSMV)
y Wheat mosaic virus (WMoV) en cultivos de trigo y otros cereales. WMoV
anteriormente fue nombrado como High Plains virus (HPV) y actualmente se propone,
(aunque aún no fue aceptado) como Maize red stripe virus, MRSV. Si bien las pérdidas
de rendimiento causadas por A. tosichella pueden alcanzar el 30% en cultivos de trigo,
el principal daño es causado por las virosis que transmite. El WSMV es el agente causal
de una de las enfermedades virales más importante en trigo. Debido a que WSMV y
HPV son transmitidos por el mismo vector, son frecuentes las infecciones mixtas,
dificultando de esta manera la estimación de pérdidas asociadas a cada virus. Se ha
demostrado que WSMV se transmite por semilla en trigo, que juega un papel
importante en la introducción del virus en nuevas áreas. En Australia, se reportó que el
porcentaje de transmisión por semilla de WSMV en trigo fue de 1,5%, similar a lo
obtenido en Argentina. Es importante considerar la relevancia del intercambio de
semillas, ya sea en áreas donde aún no fueron detectadas estas virosis, o en aquellas
donde se encuentren, con la posibilidad de introducción de cepas más virulentas. Entre
las estrategias de manejo de estas enfermedades se destaca el control de las poblaciones
de los ácaros vectores. Debido a que A. tosichella no puede sobrevivir más de 24 horas
sin alimentarse, es importante el control de malezas gramíneas y plantas espontáneas de
trigo, principalmente durante el período que transcurre entre la cosecha del maíz cultivo
que actúa como puente verde y la siguiente siembra de trigo. En Argentina, en las
localidades de Jesús María y Marcos Juárez, se ha mostrado la presencia de WSMV en
maíces y trigos espontáneos, respectivamente. Asimismo, se detectó HPV en maíces
espontáneos en lotes de trigo de la provincia de Córdoba. Por otra parte, separar la fecha
104
de siembra del trigo de la cosecha de maíz disminuye las posibilidades de que insectos
infectados pasen a los nuevos lotes. En este trabajo se presentan los resultados de una
prospección de estas dos virosis en las provincias de Córdoba, Buenos Aires y Salta, en
el período 2011, en cultivos de trigo y los de su incidencia en la localidad de Balcarce
según cultivar y cinco fechas de siembra.
Se realizaron muestreos al azar y/o dirigidos en cultivos de trigo en distintos puntos
geográficos de la región triguera argentina (Córdoba, Buenos Aires y Salta) durante la
campaña 2011. Se tomaron 30 hojas por lote cuando el muestreo fue al azar. Como
método de detección viral, se aplicó la técnica serológica de DAS-ELISA con sueros
específicos para ambos virus. Las lecturas de absorbancia se realizaron a 405nm
utilizando un espectrofotómetro. Se consideraron como enfermas las plantas que
superaron el límite de corte, resultante de la media de absorbancia de los testigos sanos
más tres veces el desvío estándar. Se determinó la incidencia (nº de plantas enfermas/ nº
de plantas analizadas) de WSMV y HPV, en el caso de los lotes con muestreos al azar.
Cuando se recolectaron solamente plantas con síntomas se determinó presencia de la
enfermedad. Se muestrearon diferentes cultivares de trigo u otros hospedantes aledaños
a lotes de trigo (sorgo de alepo, triticale, maíz espontáneo, cebada, Avena fatua, Pasto
ovillo) y se establecieron los valores de incidencia de ambas virosis para cada localidad
muestreada.
Por otra parte, se realizó un muestreo en un ensayo de evaluación de cultivares de trigo
en cinco fechas de siembra, en la EEA INTA Balcarce, durante el período 2011. Cada
parcela consistió de un surco de 1 m de largo. Se determinó la incidencia (nº de plantas
enfermas/ nº de plantas analizadas) de WSMV y HPV. Las plantas estuvieron en
condiciones naturales de infección, según la presión de inóculo presente en el lugar. Las
cinco fechas de siembra analizadas fueron: 1º= 10/6/11, 2º= 7/7/11, 3º= 20/7/11, 4º=
2/8/11, 5º= 16/8/11. Como método de detección viral se aplicó la técnica de DAS-
ELISA, como se describió anteriormente. Se empleó la técnica estadística análisis de
correspondencia para la exploración de los datos. Se utilizó el software estadístico
InfoStat.
Se detectaron ambos virus en las tres provincias estudiadas. En Salta se observaron
mayores valores de incidencia de HPV en diferentes cultivares. Por el contrario, en
Córdoba, los mayores valores de incidencia se obtuvieron para WSMV, especialmente
en Marcos Juárez. En Buenos Aires, se observaron altos valores de incidencia de HPV
en cebada en Balcarce y en trigo Baguette 31, en Otamendi. Se detectaron infecciones
mixtas en un 14%, 25% y 37% en las provincias de Salta, Córdoba y Buenos Aires
respectivamente. El análisis de correspondencia realizado evidenció que las fechas de
siembra 1º, 2º y 3º están asociadas a la presencia de los dos virus (WSMV y WMoV),
mientras que las fechas 4º y 5º están asociadas a plantas sanas. Por otra parte, los
cultivares BioINTA 3005, Klein Chajá, Baguette 18, Baguette 19, triticale Espinillo y
cebada Scarllet están asociados a plantas enfermas (WSMV y HPV) en las fechas de
siembra 1º, 2º y 3º. Por el contrario, los cultivares Buck SY100, Buck Taitá, ACA 201,
Baguette 30 y BioINTA 2005 están asociados a plantas sanas en las fechas 4º y 5º.
Se concluye que, durante el período 2011, HPV se detectó con mayor incidencia en las
provincias de Salta y Buenos Aires, mientras que las mayores incidencias de WSMV
fueron observadas en Córdoba. La presencia de HPV en maíz espontáneo, sorgo de
alepo, triticale, avena fatua y pasto ovillo, y la de WSMV en cebada, muestra la
importancia de la presencia de estos hospedantes en la epidemiología de estas dos
enfermedades, actuando como reservorio tanto del vector como de los virus. Por otra
parte, se observó una asociación entre presencia de las dos virosis con las tres primeras
fechas de siembra. Esto remarca la importancia de separar la fecha de siembra del trigo
105
de la cosecha de maíz disminuyendo las posibilidades de que insectos infectados pasen
a los nuevos lotes. Por tal motivo, serían recomendables las fechas de siembra 4º y 5º
como estrategia en el manejo de WSMV y WMoV. De la misma manera, el análisis
mostró una asociación entre diferentes cultivares con presencia de enfermedad.
2.3. Mejoramiento de trigo para resistencia al Wheat streak mosaic virus (WSMV)
y High Plains virus (HPV). Desarrollo y evaluación de germoplasma argentino y
brasileño en infecciones naturales y artificiales.
El control de enfermedades virales se basa en el uso de estrategias de manejo preventivo
de la enfermedad y en el desarrollo de resistencia genética en cultivares. El desarrollo y
uso de trigo resistente o tolerante es la estrategia más eficiente y económica y se basa en
la evaluación sistemática de germoplasma para determinar su comportamiento frente a
la enfermedad e identificar fuentes de resistencia. La evaluación anual dentro del
programa de mejoramiento permite eliminar los materiales susceptibles y seleccionar
los resistentes. La actividad interdisciplinaria entre mejoradores, biotecnólogos,
patólogos, virólogos, entomólogos, ecofisiólogos, agrónomos, etc. es clave para lograr
avances en el desarrollo de variedades con tolerancia o resistencia a virosis.
El Grupo de Mejoramiento, Biotecnología y Patología de trigo de la EEA Marcos
Juárez junto al Grupo de Interacción Vector-enfermedades virales de trigo del IPAVE,
realizan una serie de actividades con el objetivo de caracterizar y desarrollar
germoplasma de trigo con resistencia al WSMV: a - Caracterización anual de
germoplasma de trigo argentino y brasileño a campo y en invernáculo con inoculaciones
artificiales e infección natural frente a WSMV y HPV en Marcos Juárez, Balcarce y
fuera de estación en Balcarce, y en invernáculo en IPAVE Córdoba. b - Introducción de
fuentes de resistencia a virus y al vector y desarrollo de germoplasma resistente,
mediante selección asistida por marcadores moleculares, el cual es evaluado frente a
aislamientos locales de los virus y vector en el IPAVE.
Fuentes de resistencia genética a la enfermedad.
Resistencia genética al virus WSMV:
Gen Wsm-1. Origen: Thinopyrum intermedium como translocación o sustitución
cromosómica. Materiales donores: CI17881/82/83/84/85/86 KS93WGRC27, MACE.
Características: efectivo a temperaturas por encima de los 18°C. Existe marcador
disponible para selección asistida del gen en poblaciones segregantes.
Gen Wsm-2. Origen: Thinopyrum intermedium como translocación o sustitución
cromosómica. Materiales donores: CO 960293-2, pedigree
PI222668/TAM107//CO850034 y RonL, pedigree Trego/CO960293. Características:
pierde efectividad por encima de los 18°C en cultivo.
Gen Wsm-3. Origen: Thinopyrum intermedium como translocación o sustitución
cromosómica. Material donor: KS12WGGRC59 confiere resistencia a WSMV entre
18ºC - 24ºC y a TriMV a 18ºC pero no efectivo sobre los 24ºC. Germoplasma en
trámite de introducción al Programa de mejoramiento.
Resistencia genética al vector WCM:
Gen Cmc3 translocación 1ª/1R de Secale cereale L. Materiales donores: AMIGO,
TAM107. Características: Ubicado en el cromosoma 1ª como translocación 1AL/1RS.
Puede utilizarse esta translocación para selección indirecta del gen por la técnica de A-
PAGE.
106
Gen Cmc4 Origen: Aegilops tauschii (Coss.) Schmal. Materiales donores:
KS96WGRC40, pedigree KS93U69*3/TA2397, KS93U69, pedigree
TAM107*3/TA2460. Características: Ubicado en el cromosoma 6DS, es elmás efectivo
de los genes de resistencia a colonización de WCM. Puede utilizarse el microsatélite
xgdm141 para selección asistida del gen en poblaciones segregantes.
Se caracterizaron anualmente 15 variedades y líneas de trigo argentino, cuatro
poblaciones F3 – 4 con genes de resistencia introducidos en germoplasma local, cuatro
líneas con diferentes fuentes de resistencia introducidas y 30 variedades brasileñas a
campo y en invernáculo con inoculaciones artificiales con vector infectado con virus e
infección natural. Durante el año 2013 se recibió nuevo germoplasma brasileño, el cual
será incorporado el próximo año de evaluación. Se caracterizó germoplasma utilizando
marcadores moleculares asociados a fuentes de resistencia a la enfermedad. Se
desarrolló germoplasma mediante cruzamientos empleando diferentes fuentes de
resistencia con distintos fondos genéticos con material local adaptado y se realizó
selección asistida por marcadores moleculares de individuos portadores de los genes
Wsm-1 y Cmc3 en poblaciones segregantes (piramidización). Se lograron cuatro
poblaciones F5 con 250, 500, 500 y 100 líneas, respectivamente. A futuro se sumaran
los genes Wsm-3 y Cmc4. Los resultados de evaluación de cultivares argentinos y
brasileros en el período 2011 y 2012 en infecciones artificiales y naturales evidenciaron
diferentes comportamientos según aislamientos, poblaciones de ácaros, cultivares e
interacción con el ambiente. En base a los avances obtenidos y la relevancia de la
enfermedad, es importante que estas actividades se continúen en Argentina e inicien en
otros países productores de trigo del Cono Sur.
2.4.Acaro eriófido sobre Stipa sp. en bordes de cultivos de trigo infectados con
Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High Plains virus (HPV) en Argentina.
La importancia económica de los ácaros eriófidos (Acari: Eriophyoidea) está
aumentando en todo el mundo debido a su comportamiento como plagas directas o
como vectores de patógenos. En estudios previos, nuestro gurpo de trabajo analizó
secuencias de la región Internal Transcribed Spacer (ITS) de eriófidos recolectados en
un hospedante alternativo, Stipa sp., ubicado en bordes de lotes de trigo infectados con
WSMV y HPV. Las secuencias obtenidas en dicho estudio no se agruparon con las de
A. tosichella y resultaron suficientemente diferentes como para sospechar que puede
tratarse de una especie diferente. Se realizaron estudios morfológicos de esos ácaros
asociados a gramíneas para su determinación taxonómica. Los eriófidos se colectaron
en Stipa sp., en la localidad de Necochea y fueron montados en medio Berlese
modificado. Se realizaron mediciones y captura de imágenes utilizando un microscopio
óptico de contraste de fase y de interferencia diferencial (DIC) con cámara clara
acoplada a una cámara digital, con objetivo de 100x. Se midieron 70 estructuras
morfológicas de 10 hembras y un macho. Se elaboraron diseños de aspecto dorsal,
ventral, lateral, patas, genitalia, empodio y detalles de otros caracteres importantes para
el diagnóstico. Los resultados obtenidos hasta el momento indican que estos ácaros
pertenecen a la Superfamilia: Eriophyoidea, Familia: Eriophyidae, Subfamilia:
Phyllocoptinae, Tribu: Anthocoptini y Género: Aculodes Keifer, 1966. Asimismo, los
resultados muestran que pertenecen a un nuevo taxón para la especie, cuya descripción
está en elaboración. A pesar de conocer que ninguna especie de este género es vector de
virosis, se procederá a la cría y evaluación de dicha capacidad para transmitir Wheat
107
streak mosaic virus (WSMV) y Wheat mosaic virus (WMoV) (anteriormente conocido
como High Plains virus, HPV).
2.5. Presencia de Cardinium en A. tosichella y interacción A. tosichella-virus-planta
que se establece frente a la presencia del simbionte
Los resultados son presentados en el proyecto PNPV 1135023 (Acción 2.28.1).
Acción. Implementación de un Sistema de Gestión de Calidad en el IPAVE
Elaboración de los documentos necesarios para el futuro Manual de Calidad del Sistema
de Gestión de Calidad del IPAVE:
Documento aprobados y en funcionamiento:
1. Presupuesto
2. Formulario Recepción de Muestras
3. Formulario Cliente y Material
4. Formulario Resultado Análisis
Documentos redactados:
1. Elaboración y control de documentos
2. Puestos y perfiles de trabajo
3. Compromiso de confidencialidad del personal
4. Control y gestión de equipos
5. Listado de equipos
6. Instructivo de uso de los diferentes equipos
108
PROYECTOS CON SUBSIDIOS/APORTES
EXTRA PRESUPUESTARIOS
109
3.- PROYECTOS CON SUBSIDIOS/APORTES EXTRA-INTA
3.1 NACIONALES
3.1.1. Proyecto FONCyT PICT 2007-00143-02 “Variables relacionadas con la
aparición y distribución de Spiroplasma kunkelii en cultivos de maíz del NOA”.
Nodo 2 del PICT- 2007-00143 “Epidemiología del Achaparramiento del maíz.
Importancia de la diversidad poblacional del vector, sus enemigos naturales y
variables que influyen en la incidencia de la enfermedad”. 2009-13
Investigador Responsable. E. Virla.
Investigador Responsable de nodo.: Dra María de la Paz Giménez Pecci
Los resultados son informados en PNCYO 1127034
3.1.2. FONCyT. PICT Nº 2008-945. Re-emergencia de la viruela del maní.
Cuantificación y causas
Investigador Responsable: Alejandro Rago
Grupo Responsable: A. Rago; G. March; A Marinelli (UNRC)
Participantes: Erica Conforto (IPAVE), Claudio Oddino (UNRC), Mónica Zuza
(UNRC), Clara Cragnolini (UNC).
Actividad: Sensibilidad in vitro de Cercosporidium personatum frente a fungicidas
utilizados para el control de la viruela del maní
Participantes: Bisonard, E.M.; Cazón, I.; Oddino, C.; Edwards Molina, J.; March, G. y
Rago, A.
El objetivo de esta actividad fue desarrollar una metodología de evaluación de la
sensibilidad de C. personatum ante los fungicidas empleados para su control.
Fueron obtenidos aislamientos de C. personatum a partir de hojas de maní con lesiones
típicas de viruela tardía. La superficie de las hojas fueron desinfectadas con hipoclorito
de sodio al 0,5%, luego se enjuagaron con agua destilada estéril y colocaron en cámara
húmeda con la superficie abaxial hacia arriba por 48 horas (25ºC + luz constante).
Después de este período, se raspó con un bisturí la superficie de cada lesión para separar
los conidios y cuerpos de fructificación, los que se suspendieron en agua destilada
estéril. Se colocaron 10 l de la suspensión en un portaobjetos y, con la ayuda de una
aguja y bajo microscopio óptico (10x) en cámara de flujo laminar, se recolectaron
cuatro cuerpos de fructificación y ubicaron equidistantes en una placa de Petri con
medio POA (Peanut Oatmeal Agar). Se incubó a 23 ºC con fotoperíodo de 12 horas
durante 21 días. De las colonias resultantes del aislamiento, se obtuvo una suspensión
de conidios que se incubaron nuevamente en medio POA + Dextrosa a 23 ºC con
fotoperíodo de 12 horas durante 14 días. Una vez desarrolladas las colonias, se les
agregaron 10 ml de agua destilada estéril con Tween 80 (2 gotas/100 ml de agua) a cada
caja de Petri y se liberaron los conidios con espátula de Drigalski. El líquido excedente
se filtró con gasa para separar el micelio, obteniendo una suspensión pura de conidios.
Se preparó una suspensión a 1 x 104 conidios/mL. Se adicionaron 500 l de ésta última
a cada caja con las diferentes concentraciones de los fungicidas, carbendazim,
tebuconazole, pyraclostrobin y pyraclostrobin+epoxiconazole, en agar-agua (50; 10; 1;
0,1 y 0 g.ml-1). Las mismas se incubaron a 23 ºC con fotoperíodo de 12 horas, durante
7 días. Para la evaluación, se eligieron al azar 24 conidios por caja y se consideraron
dos respuestas posibles: conidio germinado (presencia de tubo germinativo igual o
110
mayor al largo del conidio o esporulación) o conidio no germinado (sin presencia de
tubo germinativo o crecimiento del mismo menor al tamaño del conidio) (Figura 1).
Puede considerarse que un conidio germinado tiene potencial capacidad para originar
una nueva lesión en el tejido vegetal. Con el total de conidios germinados se calculó la
proporción de germinados del total y este valor fue relativizado respecto al testigo para
el cálculo de inhibición de germinación conidial (IGC) según la fórmula:
Figura 1: Conidios de C. personatum sin emisión del tubo germinativo (A), con tubo germinativo
mayor al largo del conidio (B), germinación múltiple (C) y esporulación (D).
La metodología empleada para evaluar la sensibilidad del aislamiento resultó ser
adecuada permitiendo estimar la DE50 en condiciones in vitro. Los cuatro fungicidas
testeados demostraron alta eficacia para inhibir el proceso germinativo de conidios de
C. personatum en condiciones in vitro. Las DE50 de los mismos fueron: 0,008, 0,02;
0,02; 0,07 µg.ml-1 para Pyraclostrobin en combinación con Epoxiconazole,
Pyraclostrobin, Tebuconazole y Carbendazim, respectivamente (Figura 2). Los bajos
valores obtenidos (<0,1 µg.ml-1) indicarían que en condiciones in vitro el aislamiento
estudiado de C. personatum mostró alta sensibilidad ante los principios activos
testeados.
Figura 2: Curvas dosis-respuesta (Inhibición de la germinación de conidios de C. personatum) de los
fungicidas Carbendazim, Tebuconazole, Pyraclostrobin y Pyraclostrobin + epoxiconazole.
111
Este tipo de trabajo debería ampliarse a mayor número de aislamientos para estimar el
patrón de distribución de los DE50 de las poblaciones presentes en cada región. Esto
permitirá monitorear la evolución de la resistencia del patógeno, aportando a un uso
más racional de los fungicidas disponibles en el mercado, manteniendo la eficiencia de
los mismos por más tiempo, principalmente en el caso de benzimidazoles y
estrobilurinas, que pueden sufrir resistencias de tipo disruptivas y dejar de ser efectivos
en poco tiempo. Las dosis utilizadas in vitro muy probablemente tendrán escasa
relación con las dosis de campo ya que la sensibilidad in vitro es siempre mayor. Para
algunos pruebas in vivo las dosis de campo podrían ser aplicables, por lo que sería de
gran utilidad desarrollar estas metodologías; siendo también pertinente realizar estudios
in vitro apropiados al modo de acción de los diferentes fungicidas (crecimiento micelial,
germinación de esporas) para evaluar cada principio activo en particular.
En base a estos resultados se realizarán nuevos trabajos para evaluar las dosis de control
de un mayor porcentaje de unidades infectivas, ya que en condiciones de alta presión de
la enfermedad, controlar sólo el 50% (DE50), dejaría elevada cantidad de inóculo para
infecciones secundarias, llegando a valores de severidad que causen pérdidas
significativas de producción.
3.1.3. PID 2010: Resolución HCD MINCyT 113/2011. Evaluación de la interacción
virus-hospedante-vector- endosimbiontes y su influencia en la transmisión del Mal
de Río Cuarto en infecciones simples y mixtas con el Cereal Rhabdovirus.
Ministerio de Ciencia y Tecnología, Gobierno de la Provincia de Córdoba- Período:
2011-2013.
Investigador Responsable: Graciela Truol (IPAVE)
Grupo Responsable: Maríana Del Vas (Inst. de Biotecnología).
Participantes: Analía Dumón, Evangelina Argüello Caro, Fernanda Mattio, Vanina
Alemandri (IPAVE).
Para evaluar la participación de los endosimbiontes en la transmisión del MRCV, se
diseñaron cebadores específicos a partir de secuencias completas de GroEL de
delfácidos disponibles en bases de datos genómicos. Con esta herramienta se procederá
a comprobar la unión entre dicha simbionina de Wolbachia y la proteína viral mediante
la técnica de Y2H (Yeast two hybrid). Se diseñarán dos constructos utilizando
levaduras. Uno de ellos contendrá el gen de GroEL y un sitio de unión al ADN de la
levadura. El otro, portará el gen de la proteína del MRCV y un factor de transcripción.
La unión de GroEL y el MRCV se comprobará a través de la expresión del gen
reportero.
Los resultados restantes son informados en PNBIO 1131023 (punto 2.2).
3.1.4. FONCyT. PICT-2012-0391. Interacción del Virus del Mal de Río Cuarto
con gramíneas e insectos vectores: su influencia sobre la sintomatología y la
transmisión viral.
Investigador Responsable: Maríana Del Vas (Inst. de Biotecnología).
Grupo Responsable: Graciela Truol (IPAVE)
Participantes: Analía Dumón, Evangelina Argüello Caro, Fernanda Mattio (IPAVE);
Gabriella LLauger, Luis de Haro (Inst. de Biotecnología).
112
Los resultados son informados en PNBIO 1131022 (punto 2.1.1) y PNBIO 1131023
(punto 2.2.1).
3.1.5. PICT PRM 2008-00311. Estudios de la susceptibilidad de nuevas variedades
de frutilla, arándano y moras híbridas a la acción de patógenos frecuentes en
sistemas productivos del Nor-Oeste Argentino (NOA). Agencia de Promoción
Científica y Tecnológica. Ministerio de Ciencia tecnología e Innovación Productiva.
Responsable: Natalia Meneguzzi
Función: Investigadora participante Angélica Dal Zotto
En el IPAVE, se analizaron plantas de mora y arándanos con síntomas, procedentes de
la EEA INTA Famaillá (Tucumán), en la primavera 2013. En moras, fueron
observados: aclaramiento de nervaduras, clorosis internerval, y ampollamiento en
ambas caras de las hojas. En arándanos, se observó una clorosis generalizada. Las
moras fueron analizadas con anticuerpos para tres virus Raspebrry bushy dwarf
virus,(RBDV), Arabic mosaic virus (ArMV), Tobacco ringspot vius (TRSV), los cuales
arrojaron resultados negativos, con una sola muestra dudosa (M8- mora lochness B4- 5
N). Los arándanos fueron analizados para los virus, Blueberry scorch virus (BSCV),
Blueberry streak virus (BlshV) y Tobacco streak virus (TSV), siendo los resultados
negativos para los tres virus. Simultáneamente, se realizaron técnicas de microscopía
electrónica, de leaf dip, y cortes ultrafinos, para observaciones al microscopio. En
preparaciones frescas (leaf dip) se observaron partículas redondas muy pequeñas a
60.000x de magnificación, que pueden ser atribuidas a virus. En los cortes ultrafinos no
se apreciaron partículas que puedan ser atribuibles a virus en el citoplasma celular.
3.1.6. PICT-2010-0604. Epidemiología, fisiopatología y genómica de
enfermedades causadas por fitoplasmas. 2011-2014
Investigador Responsable: L. Conci
Grupo Responsable: E. Galdeano, F. Guzmán.
Partipantes: M. Melchiorre, N. Meneguzzi, Franco Fernández, S. Paradell, L. Torres,
M. Catalano, V. Conci, C. Nome Docampo, C. Nikolaus, A. Saavedra Pons, R.
Medina, M. Perez Vidakovics.
Los resultados son informados en PNPV 1135024, PE AEPV-214022 y AEPV-PE
214012.
3.1.7. FONCyT. PICT Nº 2006-904. Estudio de enfermedades relevantes y de
aspectos fisiológicos para el manejo sustentable del cultivo de frutilla.
Investigador Responsable: V. Conci
Grupo Responsable: V. Conci, L. Conci, D. Kirschbaum, M.Arias
Partipantes: F. Fernández, F. Guzmán, N. Meneguzzi, K. Torrico, E. Cafrune, C.
Perotto, S. Salazar.
Los resultados son informados en AEPV-PE 214012 y PNHFA-PE 061281
3.1.8. SECyT-UNC. 2012-2014. Caracterización molecular de cultivares
regionales de olivo (Olea europaea L.) mediante marcadores microsatélites.
Dir.: R.J. Taborda. Código 05/G507. Desde 01/01/2012 hasta 31/12/2014. Co-
directora:
113
3.1.9. MinCyT de la Provincia de Córdoba. Estudio del patosistema geminivirus -
moscas blancas, Bemisia tabaci (Hemiptera Aleyrodidae) en cultivos de soja. Directora: Patricia Rodríguez Pardina
Co-Directora: Liliana Di Feo
Participantes: Irma Graciela Laguna, Ramón E. Campos
3.1.10. Proyecto PID MinCyT Córdoba. Caracterización biológica y molecular de
un rhabdovirus causal de mosaico estriado amarillo, en maíz en la Pcia de
Córdoba. Convocatoria 201. Res MINCyT 185/11. 2013-14.
Director: M. P. Giménez Pecci
Los resultados son informados en PNPV 1135022
3.1.11. PROTRI (Programa de Transferencia de Resultados de la Investigación y
Comunicación Pública de la Ciencia): Producción, multiplicación y manejo de
propágulos de batata de sanidad controlada. Res. 000058 MinCyT Pcia Córdoba.
Oct. 2013. Ministerio de Ciencia y Tecnología. Gob. Pcia. de Córdoba.
Responsable: Liliana Di Feo (Investigadora y Directora).
3.1.12. PID 2011 Nº 000113. Etiología e importancia económica de una nueva
enfermedad viral de batata en la provincia de Córdoba. Ref. Res. MINCyT Cba)
(2012-2014). Ministerio de Ciencia y Tecnología. Gob. Pcia. de Córdoba.
Responsables: Directora: Liliana Di Feo. Codirectora: Patricia R. Pardina.
3.1.13. FONCyT - PICT 2011 Nº 1170. Análisis de la biodiversidad de patógenos de
frutilla y consideraciones ecofisiológicas en diferentes áreas de producción. (2012-
2015). Monto solicitados $ 280.000.
Investigador Responsable: V. C. Conci
Grupo Responsable: Luis Conci, Marta Arias (Univ. Nac. Tucumán)
Partipantes: D. Kirschbaum, F. Fernández; F. Guzmán; N. Meneguzzi; K. Torrico, E.
Cafrune, C. Perotto, S. Salazar
Los resultados son informados en PNPV 1135022 y PNHFA 1106073.
3.1.14. PIP Nº 112-20110111016. CONICET Caracterización de la diversidad de
Potyvirus responsable de enfermedades en especies de importancia regional y
nacional. 2012-2014. Otorgado por resolución 1675 del 06/06/2012. Monto solicitado $
180.000.
Responsable: Vilma C. Conci
Co-responsable: María Cecilia Perotto
Participantes: Soledad de Breuil, Marcos Celli, Fabián Giolitti
Los resultados son informados en PNPV 1135022 y PNHFA 1106074.
3.1.15. PICT 2010-0127. Joven Investigador. Diversidad de virus que afectan a las
especies de cucurbitáceas de importancia económica. 2011-2013
Responsable: María Cecilia Perotto
Participantes: Vilma C. Conci, Marcos Celli
Los resultados son informados en PNPV 1135022, PNPV 1135024 y PNHFA 1106072.
3.1.16. PFDT-PRH N75-13 FONCyT-INTA-UNC. Diversidad genética de
begomovirus. Responsable: Paola M. López Lambertini. Becario: Carlos Gastón Vaghi Medina.
114
3.1.17. Proyecto PID UTN 1219. Caracterización del Sistema Mal de Río Cuarto
del Maíz mediante Minería de Datos y Análisis de Redes. Disp. Homologación
SCyT 186/10. Secretaría de Ciencia y Tecnología del R Rectorado de la Universidad
Tecnológica Nacional. Director M. García. Dpto. Sistemas de Información. Co-Director
01/05/2010-30/04/13. 2010-13
Los resultados son informados en PNPV 1135022.
3.1.18. Subsidio MINCyT: Selección de genotipos del olivar de la provincia de
Córdoba de comportamiento promisorio en suelos infestados con Verticillium dahliae.
Responsable: Dra. Laura Otero.
Participantes: Biol. MSc. Laura Torres y Dr. Ricardo Taborda, Ing. Agr. Valeria
González.
3.1.19. Proyecto PID UTN 1685. Análisis de datos de enfermedades infecciosas
transmitidas por Hemiptera Auchenorrhyncha. Disposición SCTyP N° 99/13.
Secretaría de Ciencia y Tecnología del Rectorado de la Universidad Tecnológica
Nacional.
Director M. García. Dpto. Sistemas de Información. Investigador participante
01/01/2013 - 31/12/2014. 2013-14
Los resultados son informados en PNPV 1135022
3.1.20. PIP Nº 112-20110111016 - CONICET. Caracterización de la diversidad de
Potyvirus responsables de enfermedades en especies de importancia regional y
nacional. 2012-2014.
Responsable: V.C. Conci. Co-responsalbe: M.C. Perotto.
Participantes: S. de Breuil, M.G. Celli, N. Bejerman, E. Cafrune, A.K. Torrico.
3.2- INTERNACIONALES
3.2.1. Red interdisciplinaria de manejo integrado de plagas y enfermedades de
frutales de hueso, peral y cítricos con enfoque en el intercambio de conocimientos,
la innovación y la transferencia de tecnología. (RED-MIFRUT). Programa
Iberoamericano de Ciencia y Tecnología para el Desarrollo. CyTED nº P111RT0642.
Director: Dr. Adalecio Kovaleski.
Participantes del IPAVE: Luis Conci, R. Haelterman, F. Guzman, F. Fernandez
3.2.2. Action FA0807: Integrated Management of Phytoplasma Epidemics in
Different Crop Systems en el programa de la European Cooperation in the Field of
Scientific and Technical Research (COST). 2012-2013
(http://w3.cost.esf.org/index.php?id=181&action_number=FA0807)
Coordinadora: Dra. Assunta Bertaccini
Participantes del IPAVE: Dr. Luis Conci
3.2.3. Fondo Argentino de Cooperación Sur-Sur y Triangular. Training on
Research Collaboration on Use of RNAi or related techniques on plant
biotechnology.
Responsable por la contraparte Argentina: Dr. Sebastián Asurmendi
Participantes del IPAVE: Biól. Humberto Debat
115
PUBLICACIONES
116
4.- PUBLICACIONES
4.1.- CIENTIFICAS
4.1.1.- REVISTAS CON REFERATO NACIONALES
Dumón, A.D.; Argüello Caro, E.B.; Alemandri, V.M.; Mattio, M.F.; Donaire, G.;
Alberione, E.; Bainotti, C.T.; Rodríguez, S.M.; Truol, G. 2013. Comportamiento de
diferentes cultivares de trigo a Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus
(HPV) mediante infección artificial con el vector Aceria tosichella Keifer bajo
condiciones de campo. Revista RIA 39 (1). ISSN on line: 1669-2314.
Ramallo, A.C.; López Lambertini, P.M. y Ducasse D.A. 2013. Aportes para el manejo
del corcovo del tabaco en la región del NOA. Ciencia y Tecnología de los Cultivos
Industriales 4: 29-34 (ISSN: 1853-7677).
Rodríguez Pardina, P.; Ojeda, M.; Biderbost, E.; y Di Feo, L. 2013. Detection and
characterization of a Cucumber mosaic virus isolate infecting peperina, a species native
to Argentina. AgriScientia 2013: 30 (2): 79-85.
Torres, L.; Bima, P.; Costero, B.; Ordoñez, A.; Turina, C.; Martino, C., Soave, J.A.;
Soave, S.J.; Oddino, C.; Faustinelli, P.C.; Moresi, A.; Buteler, M.I. 2012. Anfdiploide
sintético desarrollado para ampliar la base genética del maní cultivado (Arachis
hypogaea). Ciencia y Tecnología de los Cultivos Industriales. 1 (3): 309-315.
4.1.2.- REVISTAS CON REFERATO INTERNACIONALES
Argüello Caro, E.B., Maroniche, G.A., Dumón, A.D., Sagadin, M.B., del Vas M. and
Truol, G. 2013. High viral load in the planthopper vector Delphacodes kuscheli
(Hemiptera Delphacidae) is associated with successful transmission of Mal de Río
Cuarto virus. Annals of the Entomological Society of America 106(1):93-99.
Bejerman, N.; Giolitti, F.; de Breuil, S. y Lenardon, S. 2013. Development of a full-
length infectious clone of Sunflower chlorotic mottle virus (SuCMoV). Archives of
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Bejerman, N.; Giolitti, F.; de Breuil, S. y Lenardon, S. 2013. Sequencing of Sunflower
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Campos, R.E., Bejerman; N., Nome, C.; Laguna, I.G.; Rodríguez Pardina, P. 2013.
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Carloni, E.P. Carpane, Paradell, S. Laguna, I. Giménez Pecci M.P. Presence of
Dalbulus maidis (Hemiptera: Cicadellidae) and of Spiroplasma kunkelii in the
Temperate Region of Argentina J. Econ. Entomol. 106 (4): 1574Ð1581 (2013); DOI:
http://dx.doi.org/10.1603/EC12323.
Carpane, P.; Melcher, U.; Wayadande, A.; Giménez Pecci, M.P.; Laguna, G. Dolezal,
W.; Fletcher, J. 2013. An Analysis of the Genomic Variability of the Phytopathogenic
Mollicute Spiroplasma kunkelii Phytopathology 103:129-134.
117
Celli, M.G.; Torrico, A.K.; Kiehr, M.; Conci, V.C. 2013. Striking differences in the
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16SrIII group phytoplasmas in Argentina. Predominance of subgroups 16SrIII-J and B
and two new subgroups 16SrIII-W and X. European Journal of Plant Pathology. 137
(4):753–764.
Guzmán, F.; Giolitti, F.; Fernández, F.; Nome, C.; Lenardon S. and Conci, L. 2014.
Identification and molecular characterization of a phytoplasma associated with
sunflower in Argentina. European Journal of Plant Pathology. 138:679-683 (DOI
10.1007/s10658-013-0352-y).
Fernández, F.; Guzmán, F.; Curzel, V.; Bejarano, N. and Conci, L. 2013. Detection and
molecular characterization of a phytoplasma. affecting Prunus persica L. in Jujuy,
Argentina. European Journal of Plant Pathology. 135:627–631.
Fontana, P.D.; Rago, A.M.; Fontana, C.; Vignolo, G.M.; Cocconcelli, P.S. and Mariotti,
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infected sugarcane in Northwestern Argentina. European Journal of Plant Pathology.
137 (3): 525-534.
Marini D.B.; Farrando R.J.; Ojeda M.E.; Dal Zotto, A. 2013. Preliminary results on
Studies of resistance to Plum pox virus-D in Prunus in Argentina. PETRIA 22 (3): 399-
404. ISSN: 1120-7698.
Manacorda, C.; Mansilla, C.; Debat, H.; Zavallo, D.; Sanchez, F.; Ponz, F.; Asurmendi,
S. 2013. Salicylic acid determines differential senescence produced by two Turnip
mosaic virus strains involving reactive oxygen species and early transcriptomic
changes. Molecular Plant-Microbe Interactions, 26(12), 1486-1498.
Verdenelli, R.A.; Conforto, C.; Pérez Brandán, C.; Chavarría, D.; Rovea, A.; Vargas
Gil, S. y Meriles, J. M. 2013. Integrated multivariate analysis of selected soil microbial
properties and their relationships with mineral fertilization managements in a
conservation agriculture system. Acta Agriculturae Scandinavica. Section B Plant and
Soil. 63(7): 623-632.
4.1.3.- REVISTAS SIN REFERATO INTERNACIONALES
Conforto, C.; Correa, O.S.; Rovea, A.; Boxler, M.; Rodríguez Grastorf, S.;
Minteguiaga, J.; Meriles, J. y Vargas Gil, S. 2013. La actividad microbiana del suelo en
respuesta a la fertilización inorgánica en maíz. Revista de Informaciones Agronómicas
de Hispanoamérica (IPNI) ISSN: 2222-016X. Diciembre, 18-21.
Grümberg, B.; Conforto, C.; Pérez Brandán, C.; Rovea, A.; Boxler, M.; Rodríguez
Grastorf, S.; Minteguiaga, J.; Luna, C.; Meriles, J. y Vargas Gil, S. 2013. La
118
fertilización inorgánica y su efecto sobre los hongos micorrícicos en el cultivo de maíz.
Revista de Informaciones Agronómicas de Hispanoamérica (IPNI) ISSN: 2222-016X.
Diciembre, 22-26.
4.1.4.- CONGRESOS NACIONALES
Asinari, F., Cafrune, E.E., Torrico, A. K. y Conci, V.C. 2013. Avances en la
caracterización molecular de un aislamiento argentino de Strawberry mottle virus en
frutilla. III Simposio Internacional de Fruta Fina en le marco del XXXVI Congreso
Argentino de Horticultura (ASAHO). Del 24 al 26 de septiembre, San Miguel de
Tucuman.
Avila, A.L., Torrico, A.K., Perotto, C., Ortego, J. y Conci, V.C. 2013. Presencia de
áfidos y su relación con Strawberry mild yellow edge virus en plantas de frutilla, en Tafí
del Valle, Tucumán, Argentina. Presentado en el XXXVI Congreso Argentino de
Horticultura ASAHO. II Congreso Internacional de Plásticos Agrícolas. 24 al 26 de
septiembre de– Tucumán.
Avila, A.L., Vera, M.A., Ortego, J., Forns, A., Lobo, R. y Conci, V.C. 2013. Afidos
asociados al cultivo de papa en tres regiones de tucumán. XXXVI Congreso Argentino
de Horticultura (ASAHO). Del 24 al 26 de septiembre, San Miguel de Tucuman.
Avila, A. L., Torrico, A. K., Perotto, C., Ortego, J. y Conci, V.C. 2013. Presencia de
áfidos y su relación con Strawberry mild yellow edge virus en plantas de frutilla, en Tafí
del Valle, Tucumán, Argentina. III Simposio Internacional de Fruta Fina en le marco
del XXXVI Congreso Argentino de Horticultura (ASAHO). 24 al 26 de septiembre, San
Miguel de Tucuman.
Bisonard, E.M.; Cazón, I.; Oddino, C.; Edwards Molina, J.; March, G. y Rago, A. 2013.
Sensibilidad in vitro de Cercosporidium personatum frente a fungicidas utilizados para
el control de la viruela del maní. XXVIII Jornada Nacional del Maní. Gral. Cabrera,
Córdoba. pp. 54-56.
Campos, R. E.; Gerónimo, L. M.; Laguna, I. G.; Rodríguez Pardina P.E. 2013.
Evaluación de cultivares y líneas experimentales de poroto frente a infecciones
naturales de virus. Actas XXXVI Congreso Argentino de Horticultura, Tucumán, 24-26
de septiembre de 2013. Pp 335.
Cazón, I.; Bisonard, E. M.; Conforto, C.; March, G. y Rago, A. 2013. Estrategias para el
manejo del carbón del maní. XXVIII Jornada Nacional del Maní. Gral. Cabrera,
Córdoba. pp. 28-30.
Chavarría, D.; Muñoz, E.; Conforto, C.; Restovich, S.; Andriulo, A.; Meriles, J. y
Vargas Gil, S. Actividad microbiana en respuesta a la inclusión de cultivos de cobertura
en sistemas agrícolas de la Pampa húmeda. IX Reunión Nacional de Biología de Suelos
y I Congreso Nacional de Biología Molecular de Suelos. Santiago del Estero, 4 al 6 de
Septiembre de 2013.
Chavarría, D.; Muñoz, E.; Conforto, C.; Restovich, S.; Andriulo, A.; Meriles, J. y
Vargas Gil, S. Efecto de la diversificación de sistemas agrícolas de la Pampa húmeda
119
sobre la concentración de glomalina del suelo. IX Reunión Nacional de Biología de
Suelos y I Congreso Nacional de Biología Molecular de Suelos. Santiago del Estero, 4
al 6 de Septiembre de 2013.
Chavarría, D.; Muñoz, E.; Conforto, C.; Restovich, S.; Andriulo, A.; Meriles, J. y
Vargas Gil, S. Diversidad de perfiles de consumo de fuentes carbonadas en respuesta a
la inclusión de cultivos de cobertura en sistemas agrícolas de la Pampa húmeda. IX
Reunión Nacional de Biología de Suelos y I Congreso Nacional de Biología Molecular
de Suelos. Santiago del Estero, 4 al 6 de Septiembre de 2013.
Celli, M. G., Perotto, M. C., Nome, C. F., Pardina, P. R., Martino, J. A., Flores, C. R. y
Conci, V.C. 2013. Detección de begomovirus en cultivo de chia. XXXVI Congreso
Argentino de Horticultura (ASAHO). 24 al 26 de septiembre, San Miguel de Tucuman.
Conci, L. 2013. Asistencia y Participación del XIII Curso Taller sobre Producción,
Comercialización e Industrialización de Ajo. Mendoza 14-17 de agosto.
de Breuil S., La Rossa, R., Giudici, A. C., Baldessari, J., Giolitti, F., Bejerman, N.,
Trucco, V., Lenardon, S. 2013. Dinámica poblacional de trips (Thysanoptera:
Thripidae) en el cultivo de maní. XXXVIII Jornada Nacional de Maní. Gral. Cabrera,
Córdoba. 19 de septiembre. pp: 60-61.
Fernández, F. D.; Meneguzzi, N.; Conci, V. C.; Kirschbaum, D.; Conci, L. 2013.
Evaluación de la incidencia y prevalencia del “enrojecimiento letal de la frutilla” en
lotes productivos de la región de Lules, Tucumán. En Actas del XXXVI Congreso
Argentino de Horticultura. Tucuman 24-26 de setiembre.
Giménez, M., Conci, V. y García Lampasona, S. 2013. Analisis de los cambios
genéticos y epigeneticos originados durante el cultivo in vitro de plantas. Congreso de
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Pérez Brandán, C.; Huidobro, J.; Álvarez, M. D.; Meriles, J.; Vargas Gil, S. Actividad
enzimática en suelos degradados bajo manejo conservacionista. IX Reunión Nacional
de Biología de Suelos y I Congreso Nacional de Biología Molecular de Suelos. Santiago
del Estero, 4 al 6 de Septiembre de 2013.
Pérez Brandán, C.; Huidobro, J.; Álvarez, M. D.; Meriles, J. y Vargas Gil, S. Caídas de
atributos biológicos en sistemas agrícolas del este de la provincia de Salta. IX Reunión
Nacional de Biología de Suelos y I Congreso Nacional de Biología Molecular de
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Pérez Grosso, T.; Virla, E.; Conci, L. 2013. Determinacion del ciclo biológico de
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Actas de de las XIX Jornadas Científicas de la Sociedad de Biología de Córdoba; La
Falda 8-10 de agosto.
120
Perotto, M.C.; Manglli, A.; Zicca, S.; Della Gaspera, P.; Fernández, F.M.; Lavanderos
D.; Rodríguez Torressi, A.O.; Tomassoli, L. y Conci, V. 2013. Relevamiento de
enfermedades virales en cultivos de cucurbitaceas. Presentado en el XXXVI Congreso
Argentino de Horticultura ASAHO. II Congreso Internacional de Plásticos Agrícolas.
24 al 26 de septiembre. Tucumán.
Prenol, L.V.; Torres, L.E.; Molina S.M.; Taborda, R.J.; Aybar V.E.; Montalván L.D.
Teich, I.; Costero, B.; González, V.; Conci, L.R. 2013. “Asociación de la
caracterización morfológica, agronómica y molecular de genotipos de olivo (Olea
europea L.) seleccionados en los departamentos de Pomán y Andalgalá, Catamarca”.
XXXVI Congreso Argentino de Horticultura. San Miguel de Tucumán.
Taborda, R.J.; Torres, L.E.; Teich, I.; Costero, B.; González, V.; Paccioretti, M.; Conci
L.R; Cisneros, M.; Franceschini, L.I. 2013. Caracterización morfológica y molecular de
cultivares de olivo (Olea europea L.) difundidos en el noroeste de la provincia de
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plantines de batata de sanidad controlada en Argentina. XXXVI Congreso Argentino de
Horticultura. Pág. 344. 24-27 de septiembre de 2013. San Miguel de Tucumán.
Torres, L.; Costero, B.; Teich, I.; Taborda, R. J.; Cisneros, M.; Franceschini, L.; De
Blas, F.; Soave, S. J.; Buteler, M.; Faustinelli, P. C. 2013 “Marcadores SSR y EST-SSR
aplicados al análisis del genoma de especies silvestres del género Arachis, y el
anfiploide sintético [(A. correntina X A. cardenasii) X A. batizocoi ]4X .” XXVIII
Jornada Nacional de maní. 19 de septiembre de 2013. Gral. Cabrera. Córdoba.
Torres, L.; Costero, B.; Teich, I.; Taborda, R.J.; Soave, S. J.; Faustinelli, P. C.; Buteler,
M. I.; Cisneros, M.; Franceschini, L.; González, V.; Menduni, F. 2013. “Retención de
genomas de especies silvestres del género Arachis en un híbrido y su anfiploide
derivado”. XLII Congreso Argentino de Genética. III Reunión Regional SAG-NOA.
Salta. 20/10/2013.
Uribe Echevarría, A.*; Saravia M. E.; Nome, C.; Rodríguez, I. A.; Rozas, C.; Uribe
Echevarría, J. Detección de Caries intracavitaria con Método FACE y su Eliminación
con Fresas de Polímero. XLVI Reunión Anual de la Sociedad Argentina de
Investigación Odontológica. 7 al 9 de noviembre de 2013 Mar del Plata, Buenos Aires
Resumen p. 84.
Verdenelli, R.A.; Chavarría, D.; Pérez Brandán C.; Rovea, A.; Gallo, S.; Vargas Gil, S.;
Meriles, J.M. Impacto a largo plazo de la fertilización mineral sobre la estructura de las
comunidades microbianas del suelo. IX Reunión Nacional de Biología de Suelos y I
Congreso Nacional de Biología Molecular de Suelos. Santiago del Estero, 4 al 6 de
Septiembre de 2013.
Zanini, A.; Rodríguez Pardina, P.; Luque, A.; Di Feo, L. 2013. Primer informe de virus
de mandioca en Argentina. XXXVI Congreso Argentino de Horticultura. Pag. 376. 24-
27 de septiembre de 2013. San Miguel de Tucumán.
121
4.1.5.- CONGRESOS INTERNACIONALES
Alemandri, V; López Lambertini, P.M. e Truol, G. Caracterización de la diversidad
genética del Wheat streak mosaic virus (WSMV) en Argentina. En: Workshop:
Cooperação Internacional Embrapa/INTA. 17 e 18 de setembro de 2013, Passo Fundo,
Brasil. Livro de Resumos. p.15-18.
Alemandri, V; Mattio, M.F.; Argüello Caro, E., Dumón, A.; Abbate, P.E.; Pontaroli
A.C.; Bainotti, C. e Truol, G. Prospección y evaluación de la incidencia y prevalencia
de Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), y elaboración de
mapas de presencia para ambos virus y su vector. En: Workshop: Cooperação
Internacional Embrapa/INTA. 17 e 18 de setembro de 2013, Passo Fundo, Brasil. Livro
de Resumos. p.8-10.
Alemandri, V; Mattio, M.F.; Dumón, A.; Argüello Caro, E.; López Lambertini, P.M.;
Bainotti, C., Formica, B.; Rodríguez, S.M. e Truol, G. El complejo Aceria tosichella
Keifer, Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High Plains virus (HPV), situación en
Argentina. En: Workshop: Cooperação Internacional Embrapa/INTA. 17 e 18 de
setembro de 2013, Passo Fundo, Brasil. Livro de Resumos. p.7.
Alemandri, V; Truol, G.; Santos de Mendonça, R. e Navia, D. Determinación de la
diversidad de secuencias a nivel nuclear y mitocondrial de poblaciones de Aceria
tosichella Keifer vectores de Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus
(HPV) en Argentina. En: Workshop: Cooperação Internacional Embrapa/INTA. 17 e 18
de setembro de 2013, Passo Fundo, Brasil. Livro de Resumos. p.19-22.
Alemandri, V.; Mattio, M.F.; Dumón, A.D.; Argüello Caro, E.B.; Rodríguez, S.M.;
Fraschina, J.; Bainotti, C. y Truol, G. 2013. Presencia de un poacevirus, nuevo género
de virus recientemente propuesto, en trigos de argentina. En: XXII Congreso Peruano y
XVII Congreso Latinoamericano de Fitopatología, 1 al 5 de Octubre. Lambayeque,
Perú. p. 120.
Alemandri, V.; Mattio, M.F.; Dumón, A.D.; Argüello Caro, E.B.; Rodríguez, S.M. y
Truol, G. 2013. Transmisión del complejo viral WSMV-WMoV-TriMV y
características biológicas de poblaciones de Aceria tosichella Keifer originarias de
Argentina. En: XXII Congreso Peruano y XVII Congreso Latinoamericano de
Fitopatología, 1 al 5 de Octubre. Lambayeque, Perú. p.121.
Argüello Caro, E.B.; Dumón, A.D.; Mattio, M.F.; Alemandri, V.; y Truol, G. 2013.
Identificación molecular de especies de delfácidos (Insecta: Hemiptera: Delphacidae)
vectores del Mal de Río Cuarto a través de PCR-RFLP. XXII Congreso Peruano y XVII
Congreso Latinoamericano de Fitopatología, 1 al 5 de Octubre. Lambayeque, Perú, pp.
121-122.
Bainotti, C.; Formica, B.; Helguera, M.; Vanzetti, L.; Fraschina, J.; Salines, J.;
Alberione, E.; Gómez, D.; Donaire, G.; Pontaroli, A.C.;, Alemandri, V. e Truol, G.
Mejoramiento de trigo para resistencia al Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High
plains virus (HPV). Desarrollo y evaluación de germoplasma argentino y brasileño en
infecciones naturales y artificiales. En: Workshop: Cooperação Internacional
122
Embrapa/INTA. 17 e 18 de setembro de 2013, Passo Fundo, Brasil. Livro de Resumos.
p.11-14.
Bisonard, M.; Hamada, E.; Cazón, I.; Rago, A. 2013. Distribuição espacial da
cercosporiose do amendoim na Argentina nos cenários climáticos futuros. 46º
Congresso Brasileiro de Fitopatologia. CD ROM Resumo:599-2.
Campos, R.E.; Bejerman, N.; Nome, C.; Laguna, I.G.; Rodríguez Pardina. 2013.
Detection of Bean yellow mosaic virus, in soybean crops of Argentina. Actas World
Soybean Research Conference IX, Durban Sud Africa, February 17th
-22nd
. Abstract 430.
Celli, M.G.; Torrico, A.K.; Conci, L.R.; Perotto, M.C. y Conci, V.C. 2013.
Caracterización molecular del gen de la cápside proteica de aislamientos de Garlic
common latent virus (GarCLV) de Argentina. En: XVII Congreso Latinoamericano de
Fitopatología, del 1 al 5 de octubre, Lambayeque, Perú.
Celli, M.G.; Perotto, M.C.; Flores, C.R.; Conci, V.C y Nome, C.F. 2013. Posible
carlavirus en el cultivo de chía. 46º Congresso Brasileiro de Fitopatologia. Del 20 al 25
de octubre. Ouro Preto, Brasil.
Conci, L.; Guzmán, F.; Fernández, F.; Galdeano, E.; Pérez Grosso T.; Saavedra Pons,
A.; Torres, L.; Meneguzzi, N. 2013. Advances in the knowledge of phytoplasma
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in Different Crop Systems dentro del programa de la European Cooperation in the Field
of Scientific and Technical Research (COST). Lisboa, Portugal 29/09-02/10.
Conforto, C.; Cazón, I.; Fernández, F.; Marinelli, A.; Oddino, C.; Rago, A. 2013.
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46º Congresso Brasileiro de Fitopatologia. CD ROM. Resumo:599-1.
Dal Zotto, A.; Marini, D.; Mazzitelli, E.; Farrando, R.; Raigon, J.M.; Peña Malavera, A.
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September, 2013.
de Breuil S., Cañizares Sales J., Blanca Postigo J.M., Bejerman N., Trucco V.M.
Giolitti F., Ziarsolo P., Lenardon S. 2013. Deep-sequencing of small RNAs from a
Groundnut ringspot virus infected peanut. “Seqüenciamento massivo de pequenos RNA
do Groundnut ringspot virus no amendoim”. Congresso de Fitopatologia Brasileiro-11ª
Reunião Brasileira de Controle Biológico. Ouro Preto, Brasil. 20 al 25 de octubre p:
687-1. (http://www.adaltech.com.br/testes/46cbfito/resumos/R0687-1.html).
Dumón, A.D.; Argüello Caro, E.B.; Mattio, M.F.; Alemandri, V.; del Vas M. y Truol,
G. 2013. Influencia de un Cytorhabdovirus sobre la proporción de insectos virulíferos
para Mal de Río Cuarto virus en infecciones mixtas. XXII Congreso Peruano y XVII
Congreso Latinoamericano de Fitopatología, 1 al 5 de Octubre. Lambayeque, Perú, pp.
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123
Marinelli, A.; Oddino, C.; García, J.; March, G.; Rago, A.; Tarditi, L. and Ferrari, S.
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World Soybean Research Conference IX. Durban, South Africa. Abstract: 279 – E.1.
Marini, D.; Farrando, R.; Porcel, L.; Ojeda, M.E.; Picca, C.; Fuentes, C.; Dal Zotto, A.;
Teich, I. 2013. Monitoring of Plum pox virus concentration at different plant heights
throughout the year in prunes (Prunus domestica) in Argentina. 2nd
International
Symposium on Plum Pox virus. Olomouc, Czech Republic. 3-6 September, 2013.
Mattio, F.; Alemandri, V. e Truol, G. Endosimbiontes de Aceria tosichella Keifer e
interacción vector-virus-planta. En: Workshop: Cooperação Internacional
Embrapa/INTA. 17 e 18 de setembro de 2013, Passo Fundo, Brasil. Livro de Resumos.
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Perotto, M.C.; Lanati, S.†, Panonto, S.; Di Rienzo, J.A. y Conci, V.C. 2013.
Distribución espacial de potyvirus y áfidos vectores en cultivo de ajo. Presentado en el
“XXII Congreso Peruano y XVII Congreso Latinoamericano de Fitopatología”. Del 1 al
5 de octubre. Lambayeque, Perú.
Perotto, M. C.; Zicca, S.; Manglli, A.; Celli, M. G.; Conci, V.C y Tomassoli, L. 2013.
Variabilidad intraespecífica de la cápside proteica del Watermelon mosaic virus. 46º
Congresso Brasileiro de Fitopatologia. Del 20 al 25 de octubre. Ouro Preto, Brasil.
Porcel, L. B.; Picca, C. N.; Fuentes,
J. C.; Marini,
D.B.; Teich
I.; Dal Zotto, A. 2013.
Distribución temporo-espacial de Plum pox virus en un monte de ciruelo europeo de
Prunus domestica cv D´agen de Mendoza, Argentina. Actas de las XVII Congreso
latinoamericano de Fitopatología. Lambayeque. Perú. 1-5 Octubre de 2013.
Tolocka, P. A.; Barbero, J. J.; Nome, C. F.; Rago, A. M. y Haelterman, R. M. 2013.
Aislamiento e identificación bioquímica, morfológica y molecular de Leifsonia xyli
subsp. xyli en Argentina. Libro de resúmenes XXII Congreso Peruano y XVII Congreso
Latinoamericano de Fitopatología.
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124
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tomo 3 pg.121-214. ISBN 978-987-679-225-7. En “100 temas sobre producción de ajo”
Editor. J.L. Burba, ISBN Obra Completa 978-987-679-235-6 OC. Ed. INTA.
Conci, V.C., Cafrune E.E., Perotto M.C., Torrico A.K. y Celli M.G. 2013. Virus que
infectan el cultivo de ajo. Aspectos epidemiológicos y manejo de la enfermedad. In
Burba, J. L. (ed). 100 temas sobre producción de ajo. Vol 3. Cap 3: 165-187. La
Consulta, Ediciones INTA. ISBN: 978 987 679 224-0.
4.2.- DIVULGACION
4.2.1.- NACIONALES
Estrategias para el manejo del carbón del maní. Simposio “El carbón del Maní”.
XXVIII Jornada Nacional de Maní, 19 de septiembre de 2013.
Alemandri, V.; Mattio, M.F.; Argüello Caro, E.; Dumón, A.; Abbate, P.E.; Pontaroli
A.C.; Bainotti, C. y Truol G. 2013. Virus transmitidos por el ácaro Aceria tosichella
Keifer: Wheat streak mosaic virus (WSMV) y Wheat mosaic virus (WMoV). Revista
Apresid Nº 120, Pp.44-48. ISSN 1850-1559.
Di Feo, L. 2013. Hoja Informativa trimestral (Nº 22-23-24) CIAP-INTA.
Di Feo, L. Enfermedades virales de batata. 12 pp. Folleto dirigido a productores y
extensionistas de la región productora de batata de Reconquista y aledaños. 14 de
noviembre de 2013.
Di Feo, L. Manejo de virosis de batata. 10 pp. Apunte de clases del Módulo 3 del Curso
de Sanidad en Cultivos Intensivos 2013 sobre “Batata, arveja, hortalizas de hoja y
aromáticas: no hay sencillez que no esconda sus vueltas. EEA San Pedro, 23 de octubre
de 2013.
Druetta, M.; Vicondo, M.; Maurino, F.; Raspanti, J.; Virla, E.; Zalazar, N.; Ruiz Posse,
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Río Cuarto virus (MRCV) y Spiroplasma kunkelii (CSS) en muestras de maíz.
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Vicondo, M., Druetta, M.; Maurino, F.; Raspanti, J.; Virla, E.; Zalazar, N.; Ruiz Posse,
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chicharritas en cultivos de maíz en la campaña 2012/13. Maíz en SD. AAPRESID
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Vicondo, M., Druetta, M.; Maurino, F.; Raspanti, J.; Virla, E.; Zalazar, N.; Ruiz Posse,
E.; Laguna, I.G.; Giménez Pecci M.P. Hoja informativa. Distribución de
125
enfermedades transmitidas por chicharritas en cultivos de maíz en la campaña 2012/13.
Jornada Maíz + Sorgo, Bolsa de Cereales de Córdoba - Agroverdad. Cba, 6 junio 2013,
2 pg.
4.2.2.- INTERNACIONALES
Gil Niño, P.; Ricon Otero, R.; Ortega Pecharromán, I.; Martín Guillen, C.; Conci, V. y
Lunello, P. 2013. La sanidad del ajo y su potencial agronómico real. Tierras.
Agricultura demoagro. Fitosanitarios ´13. LESA, nº 205:27-31.
Truol, G. Libro de resúmenes. Workshop: Cooperação Internacional Embrapa/INTA.
Projeto desenvolvido no Brasil e Argentina pela Embrapa e INTA para compressão e
manejo de um patossistema em expansão na América do Sul. Passo Fundo, Brasil,
2013. ISBN 978-85-7035-307-8. Soporte en CD-ROM.
4.2.3.- PUBLICACIONES ON LINE
Cafrune, E.; Perotto, M.C.; Lunello, P.; Nome, S.F.; conci, V. 2013. Enfermedades de
Allium ampeloprasum var. puerro (puerro). En: Atlas Fitopatológico Argentino. Eds:
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(Duchesne) Duchesne (frutilla, fresa). En: Atlas Fitopatológico Argentino. Vol. 1 al 3,
Actualizaciones trimestrales Nº 1 al 4 (marzo, junio, septiembre y diciembre). Eds:
Nome, S.F.; Docampo, D.M.; Conci, L.R. ISSN 1851-8974. Córdoba, Argentina. URL:
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manera responsable. Estación Experimental Agropecuaria San Pedro (ISBN 978-987-
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modulo-2.
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de Glycine max (L.) Merrill (soja, soya, poroto soja, frijol soja). En: Atlas
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D.M.; Conci, L.R. y Laguna, I.G. ISSN 1851-8974. Córdoba, Argentina.
Truol, G. y Douglas, L. EMBRAPA. Notícias da Embrapa-Trigo na internet. Octubre,
2013. Pesquisadores do Brasil e da Argentina unem esforços no controle de praga
agrícola. (Entrevista en EMBRAPA Passo Fundo en el marco del Workshop realizado
en septiembre del 2013 en la ciudad de Passo Fundo (Brasil)).
www.cnpt.embrapa.br/noticias/2013/not1346.htm
Truol, G.; Mattio, M.F. y Alemandri, V. INTA. Noticias del IPAVE. Octubre, 2013.
IPAVE presente en Cooperación Internacional Bilateral INTA-Embrapa.
http://inta.gob.ar/noticias/ipave-presente-en-la-cooperacion-internacional-bilateral-inta-
embrapa
Wolkan, S; Conci, V.; Nome, C.; Grego, P. 2013. Enfermedades de Dianthus
caryophyllus (clavel). En: Atlas Fitopatológico Argentino. Vol. 1 al 3, Actualizaciones
trimestrales Nº 1 al 4 (marzo, junio, septiembre y diciembre). Eds: Nome, S.F.;
Docampo, D.M.; Conci, L.R. ISSN 1851-8974. Córdoba, Argentina. URL:
http://rian.inta.gov.ar/atlas/#/Inicio.
127
4.2.4.- ENTREVISTAS PARA RADIO Y TV
-Programa “Agrotevé”. Canal 2 de Jesús María y radio local de Colonia caroya.
Reportaje: “Batatas libres de virus”. Su importancia en la zona del Dpto. Colón. 1 de
marzo 2013.
-Entrevista Sanidad del maíz en este de Santiago del Estero. Programa televisivo
Quimili Agropecuario, DYD Producciones, Quimili Agropecuario/ Estudio Abierto., 30
de abril 2013, Quimilí, Santiago del Estero. Disertante: Dra María de la Paz Giménez
Pecci.
-Radio Real de Jesús María. Reportaje: “Viabilidad del manejo de las virosis en Colonia
Caroya mediante el uso de plantines libres de virus para la plantación de batata”. 19 de
mayo 2013. Ocasión : 13ª. Fiesta Regional de la batata”. Colonia Caroya. Entrevistado:
Dra. Liliana del Valle Di Feo.
128
TESIS
129
5.- TESIS
5.1.- TESIS DE DOCTORADO FINALIZADAS
Argüello Caro, E.B. Tesis Doctoral, 2013. “Aspectos asociados a la transmisión del Mal
de Río Cuarto por Delphacodes kuscheli Fennah. Prevalencia de Wolbachia en
diferentes especies vectoras” G. Escuela de Biología de Facultad de Ciencias Exactas,
Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba. Doctorado en Ciencias
Biológicas. Directora: Dra. Truol.
Dumón, A. Tesis Doctoral, 2013. Título: “Estudio de la interacción del virus del Mal de
Río Cuarto (MRCV) y su vector Delphacodes kuscheli Fennah en infecciones simples y
mixtas con virus de la familia Rhabdoviridae”., M. Facultad de Ciencias Exactas
Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba. Doctorado en Ciencias
Biológicas. Directora: Dra. Truol G. Codirectora: Dra. del Vas.
5.2.- TESIS EN EJECUCIÓN, ACEPTADAS POR LAS ESCUELAS DE
POSTGRADO
Franco Daniel Fernández. Tesis de Doctorado Tema: “Caracterización molecular y
epidemiología de fitoplasmas pertenecientes al grupo 16Sr XIIII (Mexican periwinkle
virescence group; MPV) presentes en la Argentina”. Facultad de Ciencias Exactas
Físicas y Naturales de la Universidad Nacional de Córdoba. Director: Dr. Luis Conci.
César Martín Padovan. Maestría en Producción Vegetal. Título: Caracterización de las
enfermedades en el cultivo de la caña de azúcar (Saccharum spp.) en la provincia de
Misiones. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional del Nordeste. Director:
Ing. Agr. MSc Alejandro Rago.
Tomás Pérez Grosso. Tesis de Doctorado. Tema: Insectos vectores de fitoplasmas.
Estudios biológicos, parámetros de transmisión e interacción patógeno-insecto en el
patosistema de la “escoba de bruja de la alfalfa”. Facultad de Ciencias Exactas Físicas y
Naturales de la Universidad Nacional de Córdoba. Director: Dr. Luis Conci.
Cristina Morales. Maestría Interdisciplinaria en Gestión Ambiental. Título: Elaboración
de mapas epidémicos de la roya marrón y naranja de la caña de azúcar en los escenarios
climáticos futuros. Facultad de Ciencias Naturales e Instituto Miguel Lillo. Universidad
Nacional de Tucumán. Inicio: 2012. Inicio: 2011. Inicio: 2013. Director: Ing. Agr. MSc
Alejandro Rago.
Ignacio Cazón. Maestría en Tecnología de Semillas. Título: Detección molecular de
Thecaphora frezii. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de
Córdoba. Director: Ing. Agr. MSc Alejandro Rago.
Verónica M. Trucco. Doctorado en Ciencias Biológicas. “Achaparramiento de la alfalfa,
una nueva enfermedad viral en Argentina”. Facultad de Ciencias Exactas Físicas y
Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. Admisión abril 2013. Resolución 000083-
T2013. Director Dr. Fabián Giolitti.
Alemandri, Vanina. Tesis Doctoral, en curso. Título: “Contribución biológica y
molecular al manejo integrado de la enfermedad mosaico estriado del trigo”. Escuela
para Graduados de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de
130
Córdoba. Lugar de Trabajo: Instituto de Patología Vegetal IPAVE. Directora: Dra.
Truol, G. Codirectora: Dra. López Lambertini, P.
Analía Faroni (Inst.de Recursos Biológ. INTA-Castelar). Tesis Doctoral Título:
Caracterización de la raza Sweet potato feathery mottle virus (SPFMV) que afecta a
batata (Ipomoea batatas (L.) Lam) en Argentina y establecimiento de un método rápido
de diagnóstico en plantas in vitro. Fac. de Agronomía. Univ. Nac. de La Plata.
Directora: Liliana Di Feo.
Andrea Zanini. Tesis de Grado. Tema: Estudios preliminares relativos a la
identificación y caracterización de virus de mandioca (Manihot esculenta Crantz) en
Argentina. Fac. Cs. Ex. Fís. y Nat. Univers. Nac. Córdoba. Directora: Liliana Di Feo;
Co-directora: Patricia Rodríguez Pardina.
Julia Martino. Tesis de Grado. Tema: Variabilidad de begomovirus que afectan al
cultivo de batata, Ipomoea batatas (l.) Lam, en Argentina.. Fac. Cs. Ex. Fís. y Nat.
U.N.C. Directora: Patricia Rodríguez Pardina. Codirectora: Liliana Di Feo.
Daniela Martinelli. Tesis de Grado. Tema: Caracterización biológica y serológica de
Sweet potato virus G (SPVG) que infecta a cultivos de batata en Argentina. Producción
de reactivos para su diagnóstico. Fac. Cs. Ex. Fís. y Nat. Univers. Nac. Córdoba.
Directora: Liliana Di Feo; Co-directora: Patricia Rodríguez Pardina.
Ada Karina Torrico para optar al Grado Académico Doctor en Ciencias Biológicas en la
Fac. de Ciencias Exactas Físicas y Naturales de la Universidad Nacional de Córdoba.
Tema: Diversidad de especies virales en plantas de propagación agámica (ajo y frutilla),
aspectos biológicos, y estudio de distribución y abundancia. 2009-hasta la fecha.
Director: Dra. Vilma C. Conci.
Ana Lucía Avila para optar al Grado Académico Doctor en Ciencias Biológicas en la
Facultad de Ciencias Naturales e IML de la Universidad Nacional de Tucumán. Tema:
“Identificación y ecología de áfidos y su relación con la transmisión de virosis en
cultivos de propagación agámica en la provincia de Tucumán”. 2010-hasta la fecha.
Director: Dra. Vilma C. Conci.
Magalí Diana Giménez para optar al grado académico de Doctor. Facultad de Ciencias
Agrarias, Universidad Nacional de Cuyo. Tema: Stress y cambios asociados a la
metilación de ADN en plantas de ajo (Allium sativum L.) cultivadas in vitro. 2011-hasta
la fecha. Director: Sandra García Lampazona, Codirector: Dra. Vilma C. Conci.
Florencia Asinari. Doctorado en Ciencias Agropecuarias UNC. Tema: Strawberry
mottle virus en frutilla. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de
Córdoba. Dirección Vilma Conci. Codirección Eva Cafrune.
Giachero, M. L. Doctorado en Ciencias Biológicas. Título: Rol de las Micorrizas
Arbusculares en la protección de la soja [Glycine max (L.) Merr.] contra el síndrome de
la muerte súbita causada por Fusarium virguliforme. Facultad de Ciencias Exactas,
Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. Director: Ing. Agr. PhD Daniel
Ducasse.
Márquez, N. Doctorado en Ciencias Biológicas. Título: Análisis de cambios
transcripcionales en soja micorrizada y no micorrizada frente a la invasión de
Macrophomina phaseolina. Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales.
Universidad Nacional de Córdoba. Director: Ing. Agr. PhD Daniel Ducasse.
131
Valeria Mariel González. Doctorado en Ciencias Agropecuarias. Título: Selección de
genotipos de olivo de comportamiento promisorio frente a la “Verticilosis del Olivo”.
Univ. Nac. de Córdoba. Directora: Dra. Laura Otero. Codirectora: Laura Torres.
Maurino, Fernanda. Doctorado en Ciencias Biológicas. Título: Caracterización
biológica y molecular de un rhabdovirus causal de mosaico estriado amarillo en maíz
(Zea mays L.) en Argentina. Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales.
Universidad Nacional de Córdoba. Desde 2011. Director: Dra. Irma Graciela Laguna.
Camiletti, Boris. Doctorado en Ciencias Agropecuarias. 2013. Título: Control de
Aspergillus flavus y Penicillium sp. en poscosecha de maíz mediante la aplicación de
aceites esenciales.. Facultad de Cs Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba.
Director. Dra. M.P. Giménez Pecci, Co-director: Dr. E.I. Lucini.
Oleszczuk, José Darío. Maestría en Protección Vegetal. 2013. Título: Resistencia al
achaparramiento del maíz causado por Spiroplasma kunkelii y a su vector Dalbulus
maidis en híbridos de maíz templados y tropicales sembrados en la región subtropical
argentina. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional del Nor Este. Director:
Dr. P. Carpane, Co-Director: Dra M.P. Giménez Pecci.
132
VINCULACIONES TECNOLÓGICAS
133
6.- VINCULACIONES TECNOLÓGICAS
6.1- NACIONALES
Carta Acuerdo de Cooperación Técnica entre el Servicio Nacional de Sanidad y
Calidad Agroalimentaria y el Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria.
Proyecto de trabajo y cronograma de actividades prospección de los viroides “Peach
latent mosaic viroid”, “Apple scar skin viroid” y “Pear blister canker viroid”. Res.
032/2013.
Investigador Responsable por parte de INTA: C. Nome
Partipantes: Claudia Nome, Diana Marini, Mirta Rosini, Ramon Suasnabar
Consultoría técnica: Karina Torrico
Los resultados son informados en PNFRU-052831.
Convenio de Asistencia Técnica. (INTA - Fundación Maní Argentino). 2012-2015:
Influencia del control químico del carbón del maní según estrategias reactivas y
preventivas (SA 21679).
Responsable: Ing. Agr. MSc Alejandro Rago.
Participantes: Lic. Biotec. Ignacio Cazón (IPAVE), Biol. Matías Bisonard (CIAP). Ing.
Agr. Juan Andrés Paredes. Fundación ArgenINTA. Ing. Agr. Guillermo March
(IPAVE)
ACVT (INTA-SENASA) 2012-2013: Diagnóstico fitosanitario, manejo y control de la
enfermedad de sharka. (autorización resol. 017/2011).
Responsables: Dra. Mirta Rossini (INTA), Ing. Agr. Fernanda Wagner (SENASA)
Participante: Dra. Angélica Dal Zotto (IPAVE).
Convenio de Comisión de Estudios SA 21512. Período: 17/07/2012-17/07/2014.
INTA- IPAVE- CIAP y Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de
Córdoba. Comisión de Estudios. Responsable: M.P. Giménez Pecci.
Acuerdo SA 21600 INTA-CIAP - INTEA, 05/01/2012-05/01/14, Acuerdo para la
comercialización de servicios y productos tecnológicos del CIAP.
Convenio de Asistencia Técnica SA 21059 Acta Complementaria 3° 08/09/2013-
08/09/2014. INTA IPAVE CIAP– SURSEM, Manejo agronómico adecuado para
favorecer condiciones de infección por MRCV a campo. Responsable M.P. Giménez
Pecci.
Convenio de Cooperación Técnica 2012-2014, firmado entre la Fundación Maní
Argentino (FMA) y el Instituto de Patología Vegetal (IPAVE-CIAP).
“Aspectos epidemiológicos del Groundnut ringspot virus en el cultivo de maní”.
Responsable: Dra. Soledad de Breuil.
Participantes: Dr. Fabián Giolitti, Dr. Nicolás Bejerman, Lic. Verónica Trucco, M.Sc.
Francisco R. La Rossa. Dr. Sergio Lenardon.
6.2- INTERNACIONALES
Convenio Internacional de Asistencia Técnica 2009-2012 firmado entre el INTA
(Argentina) e IGARASHI S. A. (Brasil) para la producción de plantas de ajo libres de
virus.
134
Responsable en el INTA, Dra. Vilma Cecilia Conci
Participantes: Dra. Cecilia Perotto, Dra. Eva Cafrune, Ing. Agr. Msc.José l. Burba,Téc.
Lab. Valeria Quevedo, Téc. Lab. Gisella Téc. Lab. Strumia, Soledad Brandimarte.
Convenio INTA-INIA. Identificación de virus de soja en Uruguay
Responsable en Argentina INTA Dra. Patricia Rodríguez Pardina
Contraparte Dra. Silvina Stewart, INIA La Estanzuela
En el marco de este convenio se recorrieron 13 lotes de producción de soja del Uruguay
(Figura 3). En total se recolectaron 38 muestras com sintomas de vírus, que
posteriormente se analizaron, en el IPAVE, mediante técnicas serológicas (DAS-ELISA
o PTA) para la detección de los siguientes vírus: Soybean mosaic vírus (SMV), Alfalfa
mosaic vírus (AMV), Tobacco streak vírus (TSV) y Groundnut ringspot vírus (GRSV).
Figura 3: Puntos de recolección de muestras con síntomas. Uruguay. Marzo 2013
Se detectó al SMV con una prevalencia del 7% e incidencia relativa del 2.6% y al AMV
con 92% de prevalencia y 37% de incidencia relativa (Tabla 3). Se concluye que el
Alfalfa mosaic virus es el virus más difundido en cultivos de soja del Uruguay,
posiblemente porque la soja comparte área de producción con la actividad ganadera, por
lo que hay cultivos de alfalfa cercanos que sirven como fuente principal de inóculo
135
Tabla 3: Resultado de análisis serológico de muestras de soja provenientes de
diferentes lotes de producción de Uruguay
Lote Localidad o Paraje Muestra Resultado
1 Chracra Nº2 - La Estanzuela - Colonia 1 AMV
2
3
2 Chacra Nº30 - Le Estanzuela - Colonia 4
5 AMV
6 AMV
7 AMV
8 AMV9
3 Chacra Semillas - La Estanzuela - Colonia 10 AMV
11 AMV
12
13
4 Chacra PMS - La Estanzuela 14
15
5 San Pedro - Colonia 17 AMV
18 AMV
6 San Pedro - Colonia 19
20 AMV
7 Ruta 55 - Colonia 21
22
23 AMV
24
8 Arroyo del Medio - Ruta 55 - Soriano 25
26
9 Ruta 2 - Rodó - Soriano 27 AMV
10 Palmitas - Soriano 28
11 Cortada R2 a R21 - Soriano 29 SMV
30
12 Ruta 21 - Soriano 32 AMV
3334
353639
13 Ruta 21 - Colonia 32
37
38
136
RELACIONES INSTITUCIONALES
137
7.- RELACIONES INSTITUCIONALES
7.1-UNIDADES DE INTA
AER Aimogasta (La Rioja)
AER Cerro Azul (Misiones)
AER El Bolsón
AER Jesús María (Córdoba)
AER Puerto Rico (Misiones)
AER Río Cuarto
AER Río Primero (Córdoba)
AER San Martín (San Juan)
CR Misiones
Chacra Experimental Barrow
Chacra Experimental Miramar
EEA Alto Valle (Río Negro)
EEA Anguil (La Pampa)
EEA Balcarce (Bs. As.)
EEA Bella Vista (Corrientes)
EEA Catamarca
EEA Cerro Azul (Misiones)
EEA Concordia (Entre Rios)
EEA Chilecito (La Rioja)
EEA Chubut
EEA El Colorado (Formosa)
EEA Este de Santiago del Estero. Quimilí
EEA Famaillá (Tucumán)
EEA Hilario Ascazubi
EEA Junín
EEA La Consulta (Mendoza)
EEA Luján de Cuyo (Mendoza)
EEA Manfredi (Córdoba)
EEA Marcos Juárez (Córdoba)
EEA Mendoza
EEA Montecarlo (Misiones)
EEA Pergamino (Bs. As.)
EEA Pocito (San Juan)
EEA Rafaela (Santa Fe)
EEA Rama Caída (Mendoza)
EEA Salta
EEA San Pedro (Bs. As.)
EEA Santiago del Estero
EEA Yuto (Jujuy)
EEA Zumalao (Catamarca)
IMyZA - CNIA
Instituto de Biotecnología CNIA – CICVyA
Instituto de Fisiología y Recursos Genéticos Vegetales (IFRGV)
Instituto de Investigación Animal del Chaco Semiárido (IIACS)
Instituto de Recursos Biológicos. Castelar
138
7.2- NACIONALES EXTRA-INTA
Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, IMBIV-CONICET.
Universidad Nacional de Córdoba
Dr. José M. Meriles
Contraparte: Dra. Silvina Vargas Gil
Facultad de Ciencias Agropecuarias.
Universidad Nacional de Córdoba
Dr. Hernán Apezteguía
Contraparte: Dra. Silvina Vargas Gil
Facultad de de Ingeniería y Ciencias Económico Sociales.
Universidad Nacional de San Luis
Ing. Agr. María Cecilia Fernández Belmonte
Contraparte: Dra. Silvina Vargas Gil
Facultad de Agronomía y Veterinaria.
Universidad Nacional de Río Cuarto
Ing. Agr. Carmen Cholaky
Contraparte: Dra. Silvina Vargas Gil
Facultad de Agronomía y Veterinaria, Cátedra de Fitopatologia y Cátedra de Terapéutica
Vegetal.
Universidad Nacional de Río Cuarto
Ing. Agr. MSc. Marcelo Kearney/Ing. Agr. MSc Claudio Oddino
Contraparte en el IPAVE: Ing. Agr. MSc Alejandro Rago
Facultad de Agronomía y Veterinaria.
Universidad Nacional de Río Cuarto. Cátedra de Fitopatología
Dr. Sergio Lenardon
Contraparte en IPAVE: Dr. Fabián Giolitti
Universidad Nacional del Sur
Departamento de Agronomía
Dr. Miguel Cantamutto, Dra. Mónica Poverene
Contraparte en IPAVE: Dr. Fabián Giolitti
Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, Escuela de Biología
Universidad Nacional de Córdoba
Dr. Walter Almiron
Contraparte en el IPAVE: Dra. Vilma Cecilia Conci
Estación Experimental Agroindustrial Obispo Colombres - EEAOC
Dr. Daniel Ploper, Ing. Agr. Eduardo Willi, Biol. Avila, Ana Lucía.
Contraparte en el IPAVE: Dra. Vilma C. Conci
Facultad de Ciencias Agrarias
Universidad Nacional de Cuyo, Mendoza
Dra. Sandra García Lamapasona, Ing. Agr. Magalí Diana Giménez
Contraparte en el IPAVE: Dra. Vilma C. Conci
139
Facultad de Ciencias Naturales e IML
Universidad Nacional de Tucumán
Dra. Marta Arias
Contraparte en el IPAVE: Dra. Vilma C. Conci
Facultad de Agronomía y Zootecnia
Universidad Nacional de Tucumán.
Escuela de Postgrado
Contraparte en el IPAVE: Dra. Vilma C. Conci
SENASA
Fernanda Wagner, Leonardo Beldgorosky, María Elena Mana
Contraparte en el IPAVE: Dra. Angélica Dal Zotto
SENASA sede Santiago del Estero. Ing. Agr. Ramón Costa
Contraparte en el IPAVE: Dra. Liliana Di Feo
SENASA
Mónica Roca
Contraparte en el IPAVE: Dra. Laura Otero- Raquel Haelterman
SENASA
Ing. Guadalupe Montes
Contraparte en IPAVE: Claudia Nome
SENASA La Rioja. Ing. Agr. Mónica Roca
Contraparte en el IPAVE: Dra. Laura Otero
SINAVIMO
Pablo Cortese
Contraparte en el IPAVE: Dra. Angélica Dal Zotto
INASE
Karina Ascciuto
Contraparte en el IPAVE: Dra. Angélica Dal Zotto
INASE sede San Pedro (Bs. As.) Ing. Agr. Silvana Babbit
Contraparte en el IPAVE: Dra. Liliana Di Feo
ISCAMEN
Susana Emili
Contraparte en el IPAVE: Dra. Angélica Dal Zotto
Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cátedra de Genética.
Universidad Nacional de Córdoba
Biól. MSc. Laura Torres. Contraparte en el IPAVE: Dr. Luis Conci
Escuela de la Familia Agrícola
Colonia Caroya. Pcia Córdoba. Ing. Agr. Gimena Marcattini.
Contraparte en el IPAVE: Dra. Liliana Di Feo
CONICET
140
Personal del IPAVE perteneciente a la Carrera del Investigador Científico (CIC)
Dra. María Cecilia Perotto
Dra. Soledad de Breuil
Dra. Silvina Vargas Gil
Dr. Nico Bejerman
Dra. Vilma Cecilia Conci
Universidad Nacional de Córdoba
Facultad de Ciencias Agropecuarias, Laboratorio de Calidad, Genética y Sanitaria.
Biól. MSc. Laura Torres y Dr. Ricardo Taborda.
Contraparte en el IPAVE: Dra. Laura Otero
Univ. Nac. de Chilecito (UNdeC), La Rioja. Lab. Alta Complejidad (LACC).
Ing. Agr. MSc. Daniel Moriconi.
Contraparte en el IPAVE: Dra. Laura Otero
Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cátedra de Química Biológica
Universidad Nacional de Córdoba
Ing. Agr. Dr. Enrique Lucini
Contraparte en el IPAVE: Dra. M. Giménez Pecci
Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cátedras de Topografía y Matemática
Universidad Nacional de Córdoba
Ing. Agr. MSc. Eduardo Ruiz Posse y Lic. Mónica Bocco
Contraparte en el IPAVE: Dra. M. Giménez Pecci
Facultad de Fisica, Catedra de Física, Universidad Nacional de Buenos Aires
Dr. Hernán Solari y Dr. Marcelo Otero
Contraparte en el IPAVE: Dr. Giménez Pecci
Facultad Regional Córdoba, Cátedra de Minería de Datos
Universidad Tecnológica Nacional
Ing. Alejandro García
Contraparte en el IPAVE: Dra. M. Giménez Pecci
Museo de La Plata, Cátedra de Entomología
Universidad Nacional de La Plata
Dra. Ana María Marino de Remes Lenicov y Dra. Susana Paradell
Universidad Católica de Córdoba, Cátedra de Fitopatologia
Contraparte en el IPAVE PhD Daniel Ducasse
7.3- INTERNACIONALES
EMBRAPA Meio Ambiente. Jaguariúna, San Pablo. Brasil
Dra. Emília Hamada
Contraparte en el IPAVE: Ing. Agr. MSc Alejandro Rago
Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária (EMBRAPA) Trigo:
Dr. Douglas Lau, Dr. Paulo Roberto Valle da Silva Pereira
141
Contraparte en el IPAVE: Dra. Graciela Truol, Dra. María Fernanda Mattio, Magister
Vanina Alemandri
Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária (EMBRAPA) - CENARGEN.
Dra. Denise Navia
Contraparte en el IPAVE: Dra. Graciela Truol, Dra. María Fernanda Mattio, Magister
Vanina Alemandri
Universidad de Passo Fundo (UPF)
Dra. Jurema Schons
Contraparte en el IPAVE: Dra. Graciela Truol, Dra. María Fernanda Mattio, Magister
Vanina Alemandri
Commonwealth Scientific and Industrial Research Organisation (CSIRO) Ecosystem
Sciences, Australia
Dr. Paul De Barro
Contraparte en el IPAVE: Dra. Graciela Truol, Magister Vanina Alemandri
University of Queensland (QAAFI) Brisbane, Australia
Dr. R. Dietzgen
Contraparte en el IPAVE: Dr. Nicolás Bejerman
University of Cape Town. Faculty of Health Sciences. Institute of Infectious Disease and
Molecular Medicine.
Dr. Darren Martin
Contraparte en el IPAVE: Dra. Paola M. López Lambertini
Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas,
Cuba
Dariel Cabrera Mederos (MSc.)
Contraparte en el IPAVE: Dr. Fabián Giolitti
IVIA
Dr. Maríano Cambra
Contraparte en el IPAVE: Dra. Angélica Dal Zotto
Centro Internacional de la Papa. (CIP). Perú.
Contraparte en el IPAVE: Dra. Liliana Di Feo
Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAP). Colombia
Contraparte en el IPAVE: Dra. Liliana Di Feo
Escuela Superior de Agricultura Luiz de Queiroz (Esalq)
Universidad de San Pablo (NAP/MEPA - ESALQ/. USP)
Prof. Dr. Elliot W. Kitajima
Contraparte en IPAVE: Claudia Nome
Instituto de Biología Molecular y Celular de Plantas (UPV-CSIC), Universidad
Politécnica de Valencia (UPV)
Prof. Ricardo Flores Pedauyé
Contraparte en IPAVE: Claudia Nome
142
Université Catholique de Louvain (UCL), Faculté d’ingénierie biologique, agronomique
et environnementale.
Drs. Declerck Stéphane, Cranenbrouck Sylvie, Dupré de Boulois Hervé.
Contraparte en el IPAVE: Ing. Agr. PhD. Daniel Ducasse
7.4- COORDINACIONES CON SEDE EN EL IPAVE
Coordinación de Programa Nacional:
Programa Nacional de Protección Vegetal (PNPV) del INTA
Coordinador: Ing. Agr. (PhD) Daniel Ducasse
Coordinación de Proyectos Integradores:
PNPV PI 1135021. Generación de conocimientos para el manejo de enfermedades para
una producción agroecológica
Coordinadora: Dra. Graciela Truol
PNIND PI 1108071. Estrategias de manejo de sistemas productivos resilientes.
Coordinador: Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago
Coordinación de Proyectos Específicos:
PNPV PE 1135022. Identificación y desarrollo de protocolos para la detección de
patógenos de importancia agrícola
Coordinadora: Dra. Raquel Haelterman
PNSUELO PE 1134043. Caracterización y funcionalidad de la biota del suelo.
Coordinadora: Dra. Silvina Vargas Gil
PNIND PE 1108072. Epidemiología de plagas y enfermedades en cultivos industriales
con enfoque al desarrollo de estrategias de manejo integrado
Coordinadora: Dra. Eva Cafrune
PNCYO PE 1127034. Evaluación y desarrollo de sistemas de Manejo Integrado de las
Plagas en cultivos de cereales y oleaginosas
Coordinador: Jorge Frana – Dra. María de la Paz Giménez
Coordinación de Módulos en Proyectos Específicos:
PNPV PE 1135022. Módulo 1:
Coordinador: Dra. Patricia Rodríguez Pardina
PNPV PE 1135022. Módulo 2:
Coordinador: Dra. Angelica Dal Zotto
PNPV PE 1108072. Módulo:
Coordinador: Dra. Soledad de Breuil
Atlas Fitopatológico Argentino
Responsable: Dr. Luis Conci
143
Editor responsable: Ing. Agr. MSc Sergio Nome (personal Asociado del IPAVE)
Red Nacional de Protección Vegetal
Coordinación: Dra. Graciela Truol
Asociación Argentina de Fitopatólogos
Presidente: Dr. Luis Conci
Tesorera: Dra. Raquel Haelterman
144
CAPACITACIÓN BRINDADA
145
8.- CAPACITACION BRINDADA
8.1.- CURSOS DICTADOS
-Dictado Curso de Postgrado “La Escritura Científica en Inglés: EL artículo de
investigación de diseño experimental”. Coordinado por Dra. Silvina Vargas Gil y
dictado por Prof. MSc. Iliana Martinez. Convenio entre el CIAP y la Facultad de
Ciencias Humanas, Universidad Nacional de Río Cuarto. Sede: CIAP 18 al 22 de
noviembre 2013. 40 horas.
-Dr. Fabián Giolitti y Dra. Vilma Conci. Tema “Virología” en el curso “Fundamentos
de Fitopatología”, ofrecido por la Maestría en Producción Vegetal. Escuela para
Graduados Ing. Alberto Soriano, Facultad de Agronomía, Universidad de Buenos Aires
(FAUBA). Ana María Romero 20 y 21 de noviembre de 2013.
-Dra. Patricia Rodríguez Pardina. Taller de Capacitación “Enfermedades en cultivos de
maíz y soja”. Tema: Enfermedades de soja en Argentina. EEA Este Santiago del
Estero. Quimilí, 29 y 30 de abril.de 2013.
-Dra. Liliana Di Feo. Curso de Sanidad en Cultivos Intensivos 2013 (módulo 3: “Batata,
arveja, hortalizas de hoja y aromáticas: no hay sencillez que no esconda sus vueltas”.
Tema: “Manejo de virosis en el cultivo de batata”. 23 de octubre de 2013. EEA INTA
San Pedro.
-Dra. Liliana Di Feo. Curso de Posgrado de Especialización en Protección Vegetal.
Módulo: “Herramientas para el manejo de organismos perjudiciales”. Tema dictado:
“Conceptos generales y métodos clásicos de mejoramiento genético para resistencia
genética al estrés” y “Métodos de mejoramiento para resistencia y/o tolerancia a
fitopatógenos en batata”. 23 de agosto 2013. 5hs. Universidad Católica de Córdoba.
-Curso de Posgrado “Bioinformática: Introducción al Análisis de Secuencias”.
Organizado por IPAVE-INTA. Financiado por INTA y avalado por la Facultad de
Ciencias Agropecuarias UNC. Docentes: Dr. Joaquín Cañizares Sales y Dr. José M.
Blanca Postigo. Grupo de Genómica y Bioinformática de la Univ. Politécnica de
Valencia, España. Coordinador Soledad de Breuil (IPAVE). (Res. Nº 306/13 y 427/13
del H.C.D. FCA-UNC). 22 de julio al 2 de agosto de 2013 para 25 profesionales de
diversas unidades de INTA, con evaluación y proporción a créditos para estudios de
posgrado.
-Taller “Introduccion a la Normas ISO 17025”. Organizado por DNA Sistema de
Informacion, Comunicación y Calidad. Gerencia de Proceso y Calidad e IPAVE –
INTA. 1 al 2 de octubre de 2013. IPAVE Córdoba Argentina. Evaluación (16 h).
-Taller “Lineamientos para la Validación de Métodos de Ensayo”. Organizado por DNA
Sistema de Informacion, Comunicación y Calidad. Gerencia de Proceso y Calidad e
IPAVE - INTA. 3 de octubre de 2013. IPAVE Córdoba Argentina. Evaluación (8 h).
-Dra. Paola M. López Lambertini. Curso de Sanidad en cultivos intensivos 2013.
Módulo 2 sobre “tomate y pimiento” Tema: virosis emergentes transmitidas por mosca
blanca” Coordinador: Dra Mariel Mitidieri. Responsable: EEA-INTA San Pedro,
Buenos Aires. 11 de setiembre de 2013.
146
-Dra. Raquel Haelterman. Jornada de capacitación para estudiantes de la Fac. de
Ciencias Agropecuarias de la UN de Catamarca: enfermedades bacterianas en cítricos
HLB, cancrosis y clorosis variegada de los cítricos. 4 de octubre de 2013.
-Dra. Patricia Tolocka y Dra. Raquel Haelterman. Capacitación brindada al técnico
Lautaro Nizzero (SENASA): Enfermedades bacterianas de cítricos y adiestramiento en
la técnica de PCR y qPCR para el diagnóstico de las distintas variantes de HLB. 12 al
13 de septiembre.
-Dra. Raquel Haelterman. Capacitación sobre qPCR para diagnóstico de HLB en la
EEA Bella Vista. Corrientes. 5 de noviembre de 2013.
-Curso de Posgrado “Actualización en Diagnóstico y Manejo de Enfermedades de Soja
y Maíz”. 40 hs. Disertante en el tema “Virología”. Universidad Nacional del Noroeste
de Buenos Aires, Escuela de Ciencias Agrarias, Naturales y Ambientales. Pergamino,
27 al 29 de noviembre 2013. Dra. María de la Paz Giménez Pecci.
-Capacitación “Enfermedades en cultivos de maíz y soja”. Tema: Enfermedades en
maíz en Argentina. EEA Este de Santiago del Estero. Quimilí, 29 al 30 de abril 2013.
Responsable: Dra. María de la Paz Giménez Pecci. 8 hs.
-Curso de postgrado “Bioinformática: Introducción al Análisis de Secuencias” (22 de
julio al 2 de agosto). Docentes: Dr. Joaquín Cañizares Sales y Dr. José M. Blanca
Postigo, ambos integrantes del Grupo de Genómica y Bioinformática del Instituto para
la Conservación y Mejora de la Agrodiversidad Valenciana (COMAV). Universidad
Politécnica de Valencia, España. Coordinadora: Soledad de Breuil (Res. Nº 306/13 y
427/13 del H.C.D. FCA-UNC).
8.2.- DOCENCIA
8.2.1- DOCENCIA DE POSTGRADO
Dra. Argüello Caro, E.B. Profesor asistente Universidad Nacional de Córdoba. Escuela
de Postgrado de la Facultad de Ciencias Agropecuarias. Curso-Taller “Metodología de
Investigación”. Primera edición 24 al 28 de julio de 2013 y segunda edición 9 al 13 de
septiembre de 2013. Carga horaria: 40 horas.
Dra. Liliana Di Feo. Profesora Adjunta a Término. Universidad Católica de Córdoba.
Facultad de Ciencias Agropecuarias. Posgrado de Especialización en Protección
Vegetal. Carga horaria: 5 horas.
Dra. Paola M. López Lambertini. Docente de Postgrado en Horticultura. Facultad de
Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Cuyo. INTA-Centro Regional Gran Cuyo.
Módulo: Producción de Tomate Industrial. Tema: “Principales virosis y su transmisión
al cultivo de tomate”. 15 de agosto de 2013.
147
8.2.2- DOCENCIA DE GRADO
Dra. Argüello Caro, E.B. Profesor Ayudante A. Universidad Nacional de Córdoba
Departamento de Protección Vegetal. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Cátedra de
Zoología Agrícola.
Dr. Conci, Luis. Dictado Clases Teóricas de la Asignatura Genética para la carrera de
Agronomía. Facultad de Agronomía y Veterinaria. Universidad Católica de Córdoba.
Dra. Liliana Di Feo. Profesora Titular Interina. Universidad Católica de Córdoba.
Facultad de Ciencias Agropecuarias. Mejoramiento Vegetal. Tercer año.
Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago. JTP. Universidad Nacional de Río Cuarto. Facultad de
Agronomía y Veterinaria. Cátedra de Fitopatología.
Microbióloga Márquez, N. Jefe de Trabajos Prácticos. Universidad Católica de
Córdoba. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Ingeniería Agronómica. Cátedra de
Fitopatología
Microbióloga Márquez, N. Docente invitado. Universidad Católica de Córdoba.
Facultad de Ciencias Agropecuarias. Ingeniería Agronómica. Cátedra de Microbiología.
Dra. Soledad de Breuil. Jefe de Trabajos Prácticos. Dedicación Simple.
Universidad Católica de Córdoba. Facultad de Ciencias Agropecuarias.
Cátedra de Genética.
Asignatura “Virología” Escuela de Biología. Carrera Ciencias Biológicas, Facultad de
Ciencias Exactas Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. Res 542 HCD
2013.
Docente responsable: Dr. Walter R. Almirón (FCEFyN - UNC)
Docentes a cargo: Dra. Vilma Conci (Instituto de Patología Vegetal, IPAVE - INTA) y
Dra. Marta Contigiani (Instituto de Virología FCM - UNC)
Docentes participantes: Docentes del Instituto de Patología Vegetal (IPAVE): Dra.
María Cecilia Perotto, Dra. Claudia Nome, Dra. Eva Cafrune, Dr. Fabián Giolitti, Dr.
Luis Conci, Dra. Paola López Lambertini, Dra. Graciela Truol, Dra. Soledad de Breuil,
Dra. Liliana Di Feo.
8.3.- PASANTÍAS Y PRACTICANATOS
Pasantía del Ing. Agr. MSc. Dariel Cabrera Mederos de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias, Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas, Cuba. Tema:
“Clonado y secuenciación de genes de aislamientos geográficos cubanos del Papaya
ringspot virus (PRSV)”, 4 de junio al 29 de noviembre de 2013. Responsable: Dr.
Fabian Giolitti.
Ing. Agr. Diego Chavarría. Practicanato en Ciencias Agropecuarias. Responsable: Dra.
Silvina Vargas Gil. Enero a abril de 2013.
Juan Paredes. Estudiante de Ingeniería Agronómica. Practicanato de la Facultad de
Ciencias Agropecuarias. UNC. Tema: Métodos de diagnósticos de enfermedades de
caña de azúcar. Inicio: julio 2012 enero 2013. Responsable: Ing. Agr. MSc Alejandro
Rago.
Ing. Agr. Pozzi, pasantía en el marco del Convenio de Comisión de Estudios entre la
Facultad de Ciencias Agropecuarias de la UNC y INTA. Responsable: Dra. María
Cecilia Perotto. Agosto de 2013.
148
Lautaro Nizzero. Técnico SENASA. Entrenamiento en técnicas de diagnóstico de virus.
9 al 13 de Septiembre de 2013. Duración: 40 horas. Responsable: Dra. María Cecilia
Perotto. Tutor: Fabián Giolitti.
Pasantía Ing. Agr. (M. Sc.) Andrea Salvalaggio. EEA Balcarce. Tema: Diagnóstico de
tospovirus. 9 al 11 de diciembre 2013. Responsable: Dra. Paola M. López Lambertini.
Ing. Agr. Julieta J. Barbero. Practicanato Agronómico Optativo. Ordenanza Honorable
Consejo Directivo Nº 1/98. Tema: “Técnicas serológicas y moleculares para identificar
enfermedades bacterianas en cítricos”. Octubre 2012 abril 2013. Responsable: Dra.
Raquel Haelterman.
Ing. Agr. Mauro Paccioretti. Practicanato Agronómico Optativo. Ordenanza Honorable
Consejo Directivo Nº 1/98. INTA-IPAVE (CIAP) Córdoba. Tema: Prueba de
comportamiento de variedades de olivo. Responsable: Dra. M. Laura Otero. 10/2012-
12/2013.
Pasantía de la Ing. Agr. Maríana Ferrer Lanfranchi. Practicanato Agronómico Optativo.
Tema: Diagnóstico y Detección de Virus y mollicutes por Técnicas Serológicas y
detección de hongos patógenos del maíz. 10 de mayo de 2013 duración: 1 año.
Responsable: Dra. M. P. Giménez Pecci.
Jorge Raspanti: Estudiante de Agronomía: Pasante. Entrenamiento en técnicas de
Fitopatología y Virología Vegetal para diagnósticos de sanidad en maíz. 1 de enero de
2013. Dirección: María de la Paz Giménez Pecci.
Ing. Agr. Marcelo Druetta. Pasante. Entrenamiento en técnicas de fitopatología y
virología vegetal para diagnósticos de sanidad en maíz. Dirección: María de la Paz
Giménez Pecci.
149
8.4.- BECARIOS CON SEDE DE TRABAJO EN EL IPAVE
Apellido y nombre
Legajo
INTA Área de Investigación Tipo de Beca Director
TRUCCO, Verónica M. 20967 Virología INTA Formación Giolitti Fabian
VAGHI MEDINA,
Carlos G. 20672
Interacción Planta-Patógeno-
Vector PFDT López L. Paola
CAZON, Luis Ignacio 21462 Micología y Bacteriología INTA Formación Rago Alejandro
SERRI, Dannae Lilia 21181 Micología y Bacteriología INTA Formación
Vargas Gil
Silvina
MIRANDA, Julio 22020 Micología y Bacteriología
INTA-AUDEAS-
CONADEV
Vargas Gil
Silvina
OBERTO, Rodrigo S. ---- Micología y Bacteriología
INTA-AUDEAS-
CONADEV
Vargas Gil
Silvina
ARGUELLO,
Evangelina ----
Interacción Planta-Patógeno-
Vector
CONICET
postdoc Truol Graciela
GIOVANI CELLI,
Marcos ---- Virología
CONICET
postdoc Conci Vilma
DUMON, Analia ----
Interacción Planta-Patógeno-
Vector
CONICET
postdoc Truol Graciela
MARQUEZ, Nathalie ----
Interacción Planta-Patógeno-
Vector CONICET Ducasse Daniel
MAURINO, Fernanda ---- Micología y Bacteriología CONICET
Giménez M.
Paz
ASINARI, Florencia ---- Virología CONICET Conci Vilma
SAAVEDRA PONS,
Amalia ---- Micología y Bacteriología
CONICET
postdoc Conci Luis
CHAVARRÍA, Diego
N. ---- Micología y Bacteriología CONICET
Vargas Gil
Silvina
BORNANCINI,
Verónica ----
Interacción Planta-Patógeno-
Vector CONICET López L. Paola
LUCÍANI, Cecilia
Elizabeth ---- Virología FONCyT Conci Vilma
PEREZ GROSSO,
Tomas ---- Micología y Bacteriología FONCyT Conci Luis
GONZALEZ, Valeria
M. ---- Micología y Bacteriología SECyT Otero Laura
8.5.- CONFERENCIAS POR INVITACIÓN
Magister Vanina Alemandri. Disertante en: Workshop de Cooperación Internacional
INTA-EMBRAPA. Monitoreo y diagnóstico del complejo Aceria tosichella Keifer /
Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), contribución argentina
para la comprensión y manejo de un patosistema en expansión en Sud América. Tema:
Caracterización de la diversidad genética de aislamientos de WSMV recolectados de
diferentes regiones productoras de Argentina. Passo Fundo, Brasil, 17 y 18 de
septiembre de 2013.
Dra. María Fernanda Mattio. Disertante en: Workshop de Cooperación Internacional
INTA-EMBRAPA. Monitoreo y diagnóstico del complejo Aceria tosichella Keifer /
Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), contribución argentina
para la comprensión y manejo de un patosistema en expansión en Sud América. Tema:
Endosimbiontes de Aceria tosichella Keifer e interacción vector-virus-planta. Passo
Fundo, Brasil, 17 y 18 de septiembre de 2013.
150
Dra. Graciela Truol. Disertante en: Workshop de Cooperación Internacional INTA-
EMBRAPA. Monitoreo y diagnóstico del complejo Aceria tosichella Keifer / Wheat
streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), contribución argentina para la
comprensión y manejo de un patosistema en expansión en Sud América. Tema: El
complejo Aceria tosichella Keifer, Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High Plains
virus (HPV), situación en Argentina. Passo Fundo, Brasil, 17 y 18 de septiembre de
2013.
Dra. Graciela Truol. Disertante en: Workshop de Cooperación Internacional INTA-
EMBRAPA. Monitoreo y diagnóstico del complejo Aceria tosichella Keifer / Wheat
streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), contribución argentina para la
comprensión y manejo de un patosistema en expansión en Sud América. Tema
Prospección y evaluación de la incidencia y prevalencia de Wheat streak mosaic virus
(WSMV) y High Plains virus (HPV). Passo Fundo, Brasil, 17 y 18 de septiembre de
2013.
Dra. Graciela Truol. Disertante en: Workshop de Cooperación Internacional INTA-
EMBRAPA. Monitoreo y diagnóstico del complejo Aceria tosichella Keifer / Wheat
streak mosaic virus (WSMV) y High plains virus (HPV), contribución argentina para la
comprensión y manejo de un patosistema en expansión en Sud América. Tema
Mejoramiento de trigo para resistencia al Wheat streak mosaic virus (WSMV) y High
Plains virus (HPV). Desarrollo y evaluación de germoplasma argentino y brasileño en
infecciones naturales y artificiales. Passo Fundo, Brasil, 17 y 18 de septiembre de 2013.
Dr. Luis R. Conci. Seminario dictado en el CNR (Consiglio Nazionale delle Ricerche).
Tema: Fitoplasmi in Argentina. Situazione attuale. Torino. Italia. 02 de octubre 2013.
Dr. Luis R. Conci. Disertación en el “Final Meeting of Integrated Management of
Phytoplasma Epidemics in Different Crop Systems” en el programa de la “European
Cooperation in the Field of Scientific and Technical Research” (COST). Tema:
Advances in the knowledge of phytoplasma diseases in Argentina. L. CONCI; F.
GUZMAN; F. FERNANDEZ; E. GALDEANO; T. PEREZ GROSSO; A. SAAVEDRA
PONS; L. TORRES; N. MENEGUZZI. Lisboa, Portugal 29/09-02/10/2013.
Dra. Angélica Dal Zotto. Seminario de Formación “Actualización en enfermedades de
frutales”, dictado a los alumnos de grado de la carrera de Ingeniería Agronómica.
Universidad Nacional de San Juan. San Juan 7 de junio de 2013.
Dra. Liliana Di Feo. Virosis de batata. Características, generalidades y manejo, dirigida
a productores de Romang, Malabrigo, Reconquista y Las Palmas, pcia. de Santa Fe
Jornada organizada por EEA INTA Reconquista (Ing. Agr. Virginia Ramoa). 13 y 14 de
noviembre de 2013. Club Las Palmas. Las Palmas. Pcia de Santa Fe.
Dra. Vilma Cecilia Conci. Expositora en el III Simposio Internacional de Fruta Fina.
Mesa Herramientas para el Manejo Integrado del Cultivo de Frutilla. XXXVI Congreso
Argentino de Horticultura (ASAHO). 24 al 26 de septiembre 2013. San Miguel de
Tucumán, Argentina.
Dra Irma G. Laguna. Tema: Rhabdovirus emergente en maíz: Maize yellow striate
virus: desarrollo de reactivos de diagnóstico serológicos y moleculares. Maurino, MF.,
Druetta, M., Laguna I.G. y M. P. Giménez Pecci. Taller de Enfermedades del Cultivo de
maíz. Fac. Ciencias Agropecuarias. Universidad Católica de Córdoba, Córdoba,
26/04/13.
151
Dra. Vilma Cecilia Conci. Disertante y Coordinadora del Consultorio de Sanidad del
cultivo de Ajo. XIII Curso Taller sobre Producción, Comercialización e
Industrialización de Ajo.14 al 16 de agosto 2013. Mendoza. Argentina.
8.6.- ORGANIZACIÓN DE JORNADAS
Dra. María de la Paz Giménez Pecci. Jornada de Capacitación “Enfermedades en
cultivos de maíz y soja”. Tema: Enfermedades en maíz en Argentina. Organización
conjunta con EEA Este de Santiago del Estero. Santiago del Estero. Quimilí, 29 y 30 de
abril 2013.
152
CAPACITACIÓN RECIBIDA
153
9.- CAPACITACION RECIBIDA
9.1.- PROFESIONALES
Capacitación sobre manejo de extintores. Plan de Emergencia y Procedimientos en caso
de accidentes. CIAP-INTA. Córdoba, 29 de noviembre de 2013. Duración: 3 horas.
Curso de Primeros auxilios y reanimación cardiopulmonar. CIAP-INTA. Capacitador:
TSEM Jorge Rumi. Córdoba, 9 de agosto de 2013. Duración: 4 horas.
Curso “Bioinformatica: Introducción al análisis de secuencias”. Dictado por el Dr.
Joaquín Cañizares Sales y el Dr. José Miguel Blanca Postigo. Instituto Universitario
para la Conservación y Mejora de la Agrodiversidad Valenciana (COMAV).
Universidad Politécnica de Valencia (UPV). España. Organizado por el IPAVE-INTA
con acreditación académica de la Facultad de Agronomía. Universidad Nacional de
Córdoba. 22/7 al 2/8/2013.
Taller Introducción a la norma ISO 17025, organizado por IPAVE y DNA SICyC-
Gerencia de Procesos y Calidad. 1 y 2 de octubre de 2013. Duración 16 horas.
Lineamientos para la validación de métodos de ensayos, organizado por IPAVE y DNA
SICyC. Gerencia de Procesos y Calidad. 3 de octubre de 2013. Duración 8 horas.
Curso “Oratoria”. Dictado por la Lic. Florencia Larguía, Eckma Consultores y la
Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales (UNC). 24 y 25 de julio de 2013.
Duración: 8 horas.
Curso “Escritura Científica en Inglés”, Centro de Investigaciónes Agropecuarias (CIAP)
INTA. 18 al 22 de noviembre de 2013. Duración: 40 h.
Lic. Carlos Gastón Vaghi Medina. Microbióloga Nathalie Márquez. Curso de
postgrado: “Escritura científica en inglés.” Facultad de Agronomía y Agroindustrias.
Universidad Nacional de Rio Cuarto. Dictado por M.Sc. Iliana Amalia Martínez. 8 al 22
de noviembre del 2013. Duración: 40 hs.
Dra. Graciela Truol. Taller. Curso de Formación de Recursos Humanos organizado por
Tecnología para la Organización Pública en la modalidad Virtual Septiembre a
diciembre del 2013
Dra. Dumón A.D. “Interacciones planta-insecto: Monitoreo electrónico del
comportamiento alimenticio de insectos mediante la técnica de EPG, Gráfico de
Penetración Eléctrica”. Director: Dr. Freddy Tjallingii, Wageningen University,
Holanda. Coordinadora: Dra. Adriana E. Alvarez, Universidad Nacional de Salta.
Cuerpo docente: Dr. Freddy Tjallingii y Dra. Adriana E. Alvarez. 9 al 12 de diciembre
de 2013. Carga horaria: 40 horas.
Dra. Silvina Vargas Gil. Seminario “Formación dirigencial para jóvenes profesionales
del INTA”. Organizado por Dirección Nacional de INTA, sede General Rodríguez,
Provincia de Buenos Aires. Duración 130 horas.
Lic. Verónica Trucco. “Biología Celular y Molecular”, Facultad de Ciencias Exactas,
Físicas y Naturales de la Universidad Nacional de Córdoba. 2 al 13 de diciembre de
2013. Duración: 45h.
Lic. Verónica Trucco. “Integrated Pest Management for Plant Protection”, Universidad
de Kobe, Japón. 6 de junio al 30 de agosto de 2013. Duración: 3 meses.
154
Ing. Agr. Florencia Asinari. “Metodología de la investigación”. Escuela para
Graduados; Facultad de Ciencias Agropecuarias; Universidad Nacional de Córdoba. Del
24 al 29 de junio de 2013. Carga horaria 60 horas.
Dr. Marcos Celli. Curso teórico-práctico sobre análisis filogenético y de coalescencia de
genomas virales. Del 19 al 23 de noviembre de 2012 en la Facultad de Farmacia y
Bioquímica, Universidad de Buenos Aires, Ciudad Autónoma de Buenos Aires. Carga
horaria 40 horas.
Lic. Carlos Gastón Vaghi Medina. “Curso de postrado: Análisis de Coalescencia y
Filogeografía de genomas virales.” Facultad de Farmacia y Bioquímica. Universidad de
Buenos Aires. Dictado por la Dra. Viviana A. Mbayed. Del 22 al 26 del julio de 2013.
Duración: 40 hs.
Biol. Verónica A. Bornancini. “Taller: Herramientas para la investigación científica:
búsqueda bibliográfica y administración de referencias usando EndNote”. Facultad de
Ciencias Exactas, Físicas y Naturales (FCEFyN-UNC)- Centro de Zoología Aplicada-
CONICET. 4, 5 y 7 de noviembre del 2013. Duración: 10 hs. teórico-prácticas.
Biol. Verónica A. Bornancini. “Taller: Aplicaciones sobre microscopía de última
generación a la Microbiología”. Instituto de Biotecnología, CICVy A-INTA. Del 12 al
13 de diciembre del 2013. Duración: 16 hs teórico-prácticas.
Dra. Raquel Haelterman. Aseguramiento de la calidad, organizado por CR Corrientes y
DNA SICyC- Gerencia de Procesos y Calidad. 3 de julio de 2013.
Dra. Patricia Tolocka. Adiestramiento y perfeccionamiento en Metodología de la
Investigación en enfermedades de los cítricos con especial referencia a cancrosis, CVC,
HLB, black spot y sarna. Actividades de laboratorio, cámara de cría y reconocimiento a
campo. EEA Bella Vista, Corrientes. 21 al 25 de octubre. 40 horas
Biol. Humberto Debat. Curso de Doctorado en Epistemología. Facultad de Ciencias
Exactas, Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba. Del 10 al 14 de junio
2013. Duración: 40hs.
Biol. Humberto Debat. Curso de Doctorado en Diseño Experimental. Facultad de
Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba. Del 24 al 28
de junio 2013. Duración: 40hs.
Biol. Humberto Debat. Curso de Doctorado en Estadística. Facultad de Ciencias
Exactas, Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba. Del 5 al 9 de agosto
2013. Duración: 40hs.
Ms. Microbióloga María Lorena Giachero. “Bioinformática: Introducción al análisis de
secuencias”. Escuela para Graduados. Facultad de Ciencias Agropecuarias,
UNC. Córdoba. Ell 22 de julio y el 2 de agosto de 2013. Carga horaria 80 hs.
Ms. Microbióloga María Lorena Giachero “Biologia Celular y Molecular”. Facultad de
Ciencias Exactas, Físicas y Naturales.UNC. 02/12/2013 al 13/12/2013 Carga horaria: 45
hs
Microbióloga Nathalie Márquez. “Epistemología”. Facultad de Ciencias Exactas Físicas
y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. 10 al 14 de junio de 2013. Duración: 40
horas.
155
Microbióloga Nathalie Márquez. “Diseño experimental”. Facultad de Ciencias Exactas
Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. 29 de julio al 2 de Agosto de
2013. Duración: 40 horas.
Dra. M.P. Giménez Pecci. II Taller para investigadores de Enfermedades del maíz,
Universidad Nacional de Rosario, Zavalla, Santa Fe. 26 de septiembre de 2013.
Duración: 8 horas.
Bióloga Fernanda Maurino. Curso de posgrado “Biología celular y molecular”. Facultad
de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, UNC. 2 al 13 de diciembre de 2013, Córdoba.
Duración: 45 horas.
Bióloga Fernanda Maurino. Curso de posgrado “Introducción a la sistemática
filogenética y al método comparado”. Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales,
UNC. 18 al 22 de noviembre de 2013, Córdoba. Duración: 40 horas.
Bióloga Fernanda Maurino. Curso de posgrado “Epistemología y Metodología de la
Ciencia”. Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, UNC. Junio 2013,
Córdoba. Duración: 40 horas.
Ing. Agr. Boris Camiletti. Curso de posgrado Escritura Científica en Ingles. Facultad de
Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba. Abril 2013. (2 creditos).
Ing. Agr. Boris Camiletti. Curso de posgrado Bases morfológicas para la identificación
de Aspergillus. Agosto 2013. (1,2 créditos).
Ing. Agr. Boris Camiletti. Curso de posgrado Metodología de la investigación. Facultad
de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba, noviembre 2013.
Calificación 9. 3 créditos
Ing. Agr. Boris Camiletti. Capacitación individual. - Aislamiento e identificación de
especies de los géneros Penicillium y Aspergillus en granos de maíz poscosecha.
Octubre 2013. INTA Castelar Calificación 9. 1 crédito
Ing. Agr. Boris Camiletti. Asistencia al Workshop I. Metodología para la detección de
micotoxinas. VII Congreso Latinoamericano de Micotoxicología. Universidad Nacional
de Río Cuarto. Diciembre 2013. 8 horas.
Ing. Agr. Boris Camiletti. Asistencia al Workshop II. Identificación de las principales
especies de hongos toxicogénicos. VII Congreso Latinoamericano de Micotoxicología.
Universidad Nacional de Río Cuarto. Diciembre 2013. 8 horas.
Ing. Agr. Maríana Ferrer Lanfranchi. Capacitación individual. Aislamiento e
identificación de especies de los géneros Penicillium y Aspergillus en granos de maíz
poscosecha. Octubre 2013. INTA Castelar.
Ing. Agr. Maríana Ferrer Lanfranchi. Asistencia al Workshop I. Metodología para la
detección de micotoxinas. VII Congreso Latinoamericano de Micotoxicología.
Universidad Nacional de Rio Cuarto. Diciembre 2013. 8 horas.
Ing. Agr. Maríana Ferrer Lanfranchi. Asistencia al Workshop II. Identificación de las
principales especies de hongos toxicogénicos. VII Congreso Latinoamericano de
Micotoxicología. Universidad Nacional de Río Cuarto. Diciembre 2013. 8 horas.
de Breuil, Soledad. Entrenamiento teórico-práctico. Instituto de Microbiología y
Zoología Agrícola del INTA Castelar, bajo la dirección del entomólogo Francisco R. La
Rossa. Tema: identificación, sin métodos destructivos, de las distintas especies de trips
que afectan el cultivo de maní en Córdoba. 12, 13 y 14 de noviembre de 2013.
156
Ing. Agr. Florencia Asinari. “Metodología de la investigación”. Escuela para
Graduados; Facultad de Ciencias Agropecuarias; Universidad Nacional de Córdoba. Del
24 al 29 de junio de 2013. Carga horaria: 60 horas.
Dra. Vilma Conci. Seminario “Politicas Publicas y Desarrollo de los Territorios:
Contexto Latinoamericano Posneoliberalismo, el caso de la Argentina”. Ciudad
autónoma de Buenos Aires, 25 abril 2013. Organizado por la Direccion Nacional y la
Direccion de Asistente de Organización y Recursos Humanos de INTA. En el marco del
Programa Estratégico para la Mejora de las Tareas en los Puestos de Trabajo-
Fortalecimiento de las Buenas Prácticas de Conducción (Res CD 368/09 Y 233/10).
Dra. Vilma Conci. Encuentro Directores de EEAs e Institutos de INTA. Orador Dr.
Hugo Ojeda. Tema: Estructura organizacional. El 3 de septiembre 2013, de 9 a 17:30 h.
en INTA calle Chile, Buenos Aires.
Lic. Magdalena Fiorona. Curso Introducción a la norma ISO/IEC 17025. Docentes: Ing.
Jorge Andrés Cuevas, Ing. Feliciano Grana INTI-Córdoba. 12 de marzo de 2013.
Lic. Magdalena Fiorona. Calidad Institucional. Docente: Lic. Mario Gómez. Gerencia
de Procesos y Calidad de INTA. 12 de abril de 2013.
Lic. Magdalena Fiorona. Taller calibración de balanzas, termómetros y material
volumétrico con las herramientas de calibración de la GCal. Nivel inicial. Docente Raul
Kremer. EEA Rafaela. 7 y 8 de agosto 2013.
Lic. Magdalena Fiorona. INTA. Taller identificación y evaluación de las expectativas
de los clientes. Medición de su satisfacción. 17 y 18 de octubre de 2013.
Dra. Vilma Conci. 2013. Programa Ejecutivo de Formación y Desarrollo de Habilidades
Gerenciales. Programa de Entrenamiento Profesional 2013. Escuela Argentina de
Educación Ejecutiva (EADEE). Duración: 4 meses. Carga horaria: 60 horas. Buenos
Aires, abril 2013. Evaluación: Aprobado.
9.2.- APOYO-TÉCNICO
Curso de primeros auxilios y reanimación cardiopulmonar. CIAP-INTA. Córdoba, 9 de
agosto de 2013. Duración: 4 horas. Ayud. Lab. Rodríguez, Sandra Mónica Secretaria
Prof. Mónica Guerrero.
Taller lineamientos para la validación de métodos de ensayo. IPAVE-CIAP. 3 de
octubre de 2013. Téc. Lab. Verónica V. Ranieri.
Taller introducción a la Norma ISO 17025. IPAVE-CIAP. 1 y 2 de octubre de 2013.
Téc. Lab. Verónica V. Ranieri.
157
EVALUACIONES ACADÉMICAS
Y CIENTÍFICAS
158
10.- EVALUACIONES ACADÉMICAS Y CIENTÍFICAS
10.1.- COMISIONES EVALUADORAS
Dr. Luis R. Conci. Evaluador de Facultades de Agronomía como representante de la
CONEAU (Comisión Nacional de Evaluación y Acreditación de Universidades),
dependiente del Ministerio de Educación Ciencia y Tecnología de la Nación (dos
instituciones en 2013).
Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago. Integrante del Comité Evaluador en el marco de la
convocatoria de Proyectos de Carreras de Posgrado. CONEAU.
Dra Patricia Rodríguez Pardina: Miembro Comité Evaluador para la renovación de las
asignaciones por Concurso. Área Ingeniería y Mecanización Rural. Facultad de
Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba. Resoluciones Nº 312 del
Honorable Consejo Directivo de la Facultad de Ciencias Agropecuarias y Nº 632 del
Honorable Consejo Superior de la Universidad Nacional de Córdoba- 4 de noviembre
de 2013.
Dra. Liliana Di Feo. Miembro del Comité Evaluador de trabajos científicos presentados
en el XXXVI Congreso Argentino de Horticultura y II Congreso Internacional de
Plásticos Agrícolas, realizado en San Miguel de Tucumán.
Dra. Paola M. López Lambertini. Participación en la reunión con los evaluadores
externos del CCT-CONICET en el marco del Programa de Evaluación Institucional
promovido por el MINCyT. 5 de diciembre 2013.
Dra. Claudia Nome. Miembro de comisión asesora del Sistema Nacional de
Microscopía, como representante de INTA. Resolución 104/11.
Dra María de la Paz Giménez Pecci. Miembro suplente del Consejo para la Promoción
Científica y Tecnológica, Ministerio de Ciencia y Tecnología de la Provincia de
Córdoba. Comisión Asesora en Ciencias Agropecuarias y de la Tierra. Res. 20/13.
2013-16.
Dr. Luis R. Conci. Comisión ad hoc del Área Tecnología Agraria y Forestal
perteneciente al Fondo para la Investigación Científica y Tecnológica-FONCyT
(ANPCyT).
Dr. Luis R. Conci. Miembro permanente del Comité Científico de la “International
Conference on Virus and Other Graft Transmissible Diseases of Fruit Crops” (ICVF).
Dr. Luis R. Conci. Miembro del Comité Académico en la carrera de Doctorado de la
Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Católica de Córdoba.
Dr. Luis R. Conci. Miembro del Comité Académico en la Maestría en Tecnología de
los Alimentos. Facultad de Ciencias Químicas. Universidad Católica de Córdoba.
Dra. Vilma Conci. Evaluación de solicitud de ingreso y/o promociones en la carrera de
Investigador de CONICET. Solicitado por la Comisión de Agrarias de CONICET.
2013.
10.2.- EVALUACIÓN DE PROYECTOS
Dra. Silvina Vargas Gil. Evaluadora Proyecto Foncyt PICT 2013.
159
Dra. Vilma C. Conci. Evaluación plan de tesis para Doctorado de Facultad de Ciencias
Agrarias y Forestales Univ. Nacional de La Plata. 2013.
Dr. Luis R. Conci. Evaluador de Proyectos FONCyT. Tecnología Agraria y Forestal.
Convocatoria 2013.
10.3.- EVALUACIÓN DE TRABAJOS CIENTÍFICOS
Dra Patricia Rodríguez Pardina: Evaluación de trabajos para ser publicados en African
Journal of Biotechnology.
Dr. Luis R. Conci. Evaluador de trabajos en las revistas Journal of Plant Pathology. Y
European Journal of Plant Pathology.
Dra. Silvina Vargas Gil Revisora de publicaciones científicas presentadas en las
revistas: Crop Protection, Field Crops Research, Soil and Tillage Research.
Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago. Revisor de un trabajo para la Revista Investigaciónes
Agroindustiales de Tucumán.
Dra. Truol Graciela: Corrector de artículo para su publicación en la Revista
International Journal of Agronomy. Agosto 2013.
Dra Liliana Di Feo. Revisora de artículos científicos de African Journal of Agronomy.
International Scholars Journals.
Dra Liliana Di Feo. Revisora de artículos científicos de Journal of Agricultural
Economics and Development.
Dra. Vilma Conci. Revisor de trabajo para publicar en “European Journal of Plant
Pathology” (Springer, Europa). 2013.
10.4.- EN TRIBUNALES DE TESIS Y JURADO DE CONCURSOS
Dra María Cecilia Perotto. Jurado del concurso de Beca para la Agencia Nacional de
Promociones Científicas, Tecnológicas y de Innovación. Proyecto FONCYT.
Dra. Silvina Vargas Gil Miembro del Tribunal de Tesis Doctoral del Biól. Gabriel Grilli
en la Universidad Nacional de Córdoba. 2013. Dr. Carlos Urcelay.
Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago. Jurado Evaluador Externo de la Tesis de Maestría en
Producción Vegetal del Ing. Agr. Juan Pablo Edwards Molina – FCA/UNMdP
08/04/13.
Ing. Agr. Argüello Caro, E.B. Miembro del Tribunal del Concurso de Ayudantes
Alumnos de la Cátedra de Zoología Agrícola. Facultad de Ciencias Agropecuarias,
Universidad Nacional de Córdoba, abril de 2013.
Dra M. P. Giménez Pecci. Miembro de jurado Representante del Honorable Consejo
Directivo, Claustro Egresados. Concurso fotográfico “30 años de democracia” Facultad
de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba. 2013.
Dra M. P. Giménez Pecci. Miembro Suplente Comité Evaluador Profesores Regulares y
Profesores Auxiliares, Área Ingeniería y Mecanización Rural. Facultad de Ciencias
Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba. 2013.
160
Dra M. P. Giménez Pecci. Miembro Comité Evaluador. Trabajo Final de la Ing. Agr.
(Esp.) Laura Moscardó. Carrera Especialización en Cultivos Extensivos. Escuela para
Graduados. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba.
2013.
Dra. Vilma Cecilia Conci. Tribunal de Tesis de Doctorado en Ciencias Biológicas de la
Facultad de Ciencias Exactas Físicas y Naturales de la UNC. Ing. Agr. Evangelina
Argûello Caro. Tema: Aspectos asociados a la transmisión del Mal de Río Cuarto por
Delphacodes kuscheli Fennah. Prevalencia de Wolbachia en diferentes especies
vectoras. 2013.
Dr. Luis R. Conci. Tribunal de Tesis y Evaluador externo de Doctorado de la Lic. en
Biotecnología Gabriela Conti. Tema: “Estudios de las bases moleculares de la
interacción virus-planta, relación entre genes de defensa, ARNs pequeños y
sintomatología”. Escuela de postgrado de la Facultad de Ciencias Agropecuarias.
Universidad de Buenos Aires. Marzo 18.
Dr. Luis R. Conci. Tribunal de Tesis y Evaluador externo de Doctorado de la Lic.
Marina Grabiele. Tema: “Análisis de la variabilidad cloroplástica y nuclear en las razas
locales del maní (Arachis hypogaea L.) y en especies silvestres relacionadas:
Inferencias sobre el origen genético del cultígeno y diversidad presente en el
germoplasma de Arachis L.”. Escuela de postgrado de la Facultad de Ciencias Exactas
Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba.
Dr. Luis R. Conci. Comisión asesora de Tesis de Doctorado de la Ing. Agr. Valeria
Mariel Gonzalez. Tema: “Selección de genotipos de olivo de comportamiento
promisorio frente a Verticillim dahliae Kleb. en olivares de la provincia de Córdoba”.
Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Nacional de Córdoba.
10.5.- COMITÉ EDITORIAL
Dr. Luis Conci. Editor de Sección de la Revista Tropical Plant Pathology. Brasil.
Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago. Editor de la Revista Ciencia y Tecnología de los
Cultivo Industriales - Programa Nacional de Cultivos Industriales – INTA. ISSN 1853-
7677.
Ing. Agr. MSc. Alejandro Rago. Comité Asesor. Revista de Investigaciónes
Agropecuarias – INTA. ISSN edición impresa 0325-8718; ISSN en línea 1669-2314.
Dra. Graciela Truol, Dra. María Fernanda Mattio y Magister Vanina Alemandri.
Miembros del grupo de Editores Técnicos. Libro de Resumos de Workshop:
Cooperação Internacional Embrapa/INTA, Passo Fundo, Brasil, 17 y 18 de septiembre
de 2013.
Dra. Liliana Di Feo. Miembro activo del Comité Científico Internacional de la Revista
de Ciencias Agrícolas de la Universidad de Nariño. Pasto. Colombia.
Dra. Liliana Di Feo. Árbitro externo de la revista “Cultivos Tropicales”, perteneciente al
Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA). Cuba.
Biól. Humberto Debat. Miembro del Editorial Board del International Journal of Plant
Biology & Research. USA.
161
Dra. Vilma Conci. Comité Editorial de la Revista Horticultura Argentina. Asociación
Argentina de Horticultura (ASAHO).
10.6.- OTROS
Dra. María de la Paz Giménez Pecci. Miembro del Honorable Consejo Directivo de la
Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba. junio 2012
junio 2014.
162
SERVICIOS ESTRATÉGICOS
163
11.- SERVICIOS ESTRATÉGICOS
La división clínica y servicios estratégicos
A.- Análisis de patógenos realizados durante el período:
Total de Análisis Realizados: 142
Oficiales (SENASA): 136
Particulares: 6
Patógenos analizados:
Virus: En maíz: SCMV, MDMV, MSV, MCMV
En maní: PSV
En Frutales: PPV, VIROIDES.
En zapallo: SqMV, TSWV
En ajo: OYDV, LYSV, SLV, GCLV
En sorgo: SrMV
En trigo: BSMV
En cebada: BSMV
En trébol: PDV, TSWV
En frutilla: SMYEV, TSV, ApMV
En cebolla: OYDV
En girasol: TSV, TRSV, ToBRV3
En soja: SMV, TSWV
Hongo:
En olivo: Verticillium dahliae
Fitoplasma
En peral
B.- Producción de plantas libres de virus:
Batata cultivar INIA Arapey y Morada INTA.
Ajo cultivares Ruby, INCO, Ito
Servicios de análisis a cargo de los distintos investigadores responsables como se
detalla a continuación:
Diagnóstico de virus de trigo y cereales de grano fino transmitidos por semilla, Barley
stripe mosaic virus (BSMV) y Wheat streak mosaic virus (WSMV), para Exportadores
y Semilleros. Dra. Graciela Truol (Responsable). Participantes: Ayud. Lab. Rodríguez,
S.M., Vanina Alemandri, Fernanda Mattio.
Diagnóstico de virus en plantas de alfalfa, a Alfalfa mosaic virus, Bean leaftoll virus y
Rhabdovirus, a solicitud de JOCAT SA. Responsable: Dr. Fabián Giolitti. Participante:
Lic. Verónica Trucco.
Diagnósitico de virus de ajo, cebolla y frutilla. Responsable Dra. Vilma Conci.
Participantes: Marcos Celli, Magdalena Fiorona, Karina Torrico.
Diagnóstico de virus en plantas de batata y mandioca. Responsable: Dra. Liliana Di
Feo. Participantes: Biól. Julia Martino y Andrea Zanini. Est. de Biol. Daniela Martinelli.
164
Diagnóstico de virus en plantas de tomate, pimiento y papa. Responsable: Dra. Paola M.
López Lambertini. Participantes: Téc. Lab. Verónica V. Ranieri, Téc. Lab. Natalia A.
Puyané.
Diagnóstico de virus, mollicutes y hongos en plantas de maíz a Empresas semilleras
(ACA, La Tijereta, Dow Agrociences, Syngenta, Pioneer, Monsanto), fitomejoradores,
productores (derivados por EEA Pergamino, AER Jesús María o directamente) y
Unidades INTA (EEA Reconquista, EEA Manfredi, EEA Pergamino, EEA Las Breñas).
Responsable: Dra. María de la Paz Giménez Pecci.
Diagnóstico y evaluación de virosis en cucurbitáceas. Responsable Dra. María Cecilia
Perotto.
Producción de plantas de ajo libres de virus. Responsable Gisella Straumia y Vilma
Conci.
Producción y multiplicación de plantines de sanidad controlada de diferentes cultivares
de batata. Responsables: Liliana Di Feo. Patricia Tolocka y Ramón Suasnabar.
Servicios de Análisis fitosanitario para virosis en semilla de alfalfa, maíz, trebo, lotus,
etc. para exportación: 14 informes: para las empresas Syngenta, Maíz POP SA,
Forratec, Advanta Semillas, Estudio Rocha, La Josefina, El Cencerro, Semillas Basso,
Doe Agroscience CIARA. Responsable: Dra. María de la Paz Giménez Pecci.
Servicios de Análisis fitosanitario para virosis en semilla de maíz para exportación: 17
certificados: para las empresas Dow Agrosciences, Dreyfus, Cia Argentina de Granos,
Monsanto, Nidera, SSP y Zed, de las siguientes virosis de maíz: MCMV, MDMV,
SCMV, MSV. Responsable: Dra. María de la Paz Giménez Pecci.
Servicios de Análisis fitosanitario para virosis en semilla de soja, poroto y maíz: 9
certificados: para las empresas Aceitera General Deheza (AGD), INDEAR, Bayer,
Louis Dreyfus Commodities (LDC) y Desde el Sur. Virus analizados: de maíz: MDMV,
SCMV, soja: SMV, TSWV, TSV, y AMV. Poroto CMV y BCMV. Responsable: Dra.
Patricia Rodríguez Pardina.
Servicios de Microscopía Electrónica de Transmisión. Responsable: Dra. Claudia
Nome.
165
RECURSOS HUMANOS
166
12.- RECURSOS HUMANOS
12.1.- DOTACIÓN ACTUAL (INTA y EXTRA-INTA).
57%
5%
19%
7% 3%
8%
1%
Personal del IPAVE diciembre 2013
42 INTA
4 Asociados
14 Becarios CONICET, FONCyT, AUDEA
5 Contratos INTeA, Fund. Maní, IGARASHI
2 Tesistas de grado
6 Practicanatos
1 Fac. Agron. UNC
10% 12%
69%
7% 2%
Personal INTA
4 Apoyos
5 Técnicos
29 Profesionales
3 Becarios INTA (Profes.)
1 Contratos 1,8,7 (Profes.)
63% 19%
6% 3%
9%
Formación de Posgrado de Profesionales INTA
20 Doctores
6 Masters (4 haciendo Doctorado)
2 Becarios haciendo Doctorado
1 Becarios haciendo Maestria
3 Cont. 1,8,7 haciendo Doctorado
167
12.2.- LISTADO
Nombre Legajo Área Institución Condic. Lab.
ALEMANDRI, Vanina María 17469 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PnP
ARCE, Walter Fabián 16510 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
BEJERMAN, Nicolás Esteban 21466 Virología INTA-IPAVE PnP
BRANDIMARTE, Ma.Soledad 21725 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PnP
CAFRUNE, Eva Encarnacion 16720 Virología INTA-IPAVE PP
CONCI, Daniel Alberto 20592 Administración IPAVE INTA-IPAVE PP
CONCI, Luis Rogelio 14344 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
CONCI, Vilma Cecilia 13984 Dirección INTA-IPAVE PP
CONFORTO, Erica Cinthia 17581 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PnP
DAL ZOTTO, Angelica 19137 Virología INTA-IPAVE PP
DE BREUIL, Soledad 20680 Virología INTA-IPAVE PnP
DI FEO, Liliana 20673 Virología INTA-IPAVE PP
DUCASSE, Daniel Adrián 14088 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PP
EDWARDS MOLINA, Juan Pablo 21625 Epidemiologia INTA-IPAVE PnP
FIORONA, Magdalena A. 19370 Virología INTA-IPAVE PnP
GIMÉNEZ, María de la Paz 14370 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
GIACHERO, María Lorena 20638 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PnP
GIOLITTI, Fabián 16370 Virología INTA-IPAVE PP
GUERRERO, Mónica del Valle 20199 Secretaria Dirección INTA-IPAVE PP
GUZMAN, Fabiana 16719 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
HAELTERMAN, Raquel 20674 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
LÓPEZ LAMBERTINI, M. Paola 16230 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PP
NOME DOCAMPO, Claudia 16204 Virología INTA-IPAVE PP
MATTIO, María Fernanda 17009 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PnP
OTERO, María Laura 16237 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
PEROTTO, María Cecilia 16993 Virología INTA-IPAVE PnP
PUYANE, Natalia Aida 19375 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PP
QUEVEDO, Liliana Valeria 19376 Virología INTA-IPAVE PP
RAGO, Alejandro Mario 16217 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
RANIERI, Verónica Valeria 20201 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PnP
RODRÍGUEZ, Pardina Patricia 16710 Virología INTA-IPAVE PP
RODRÍGUEZ, Sandra Mónica 20202 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PnP
STRUMIA, Gisella 21729 Virología INTA-IPAVE PnP
TOLOCKA, Patricia 21723 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PnP
TRUOL, Graciela Ana María 14011 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE PP
VARGAS GIL, Silvina 16527 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE PP
DEBAT, Humberto Julio 95290 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE Contrato 1.8.7
FERNÁNDEZ, Franco 95289 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE Contrato 1.8.7
VAGHI MEDINA, Carlos Gastón 20672 Interacción Planta-Patógeno-Vector INTA-IPAVE Contrato 1.8.7
TRUCCO, Verónica M. 20967 Virología INTA-IPAVE BECA INTA Formación
CAZON, Luis Ignacio 21462 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE BECA INTA Formación
SERRI, Dannae Lilia 21181 Micología y Bacteriología INTA-IPAVE BECA INTA Formación
MIRANDA, Julio 22020 Micología y Bacteriología
BECA estudiantil INTA-AUDEAS-CONADEV
BECA INTA-AUDEAS-CONADEV
OBERTO, Rodrigo Sebastián ---- Micología y Bacteriología
BECA estudiantil INTA-AUDEAS-CONADEV
BECA INTA-AUDEAS-CONADEV
MARCH, Guillermo Juan ---- Micología y Bacteriología Asociado INTA Asociado INTA
DOCAMPO, Delia ---- Virología Asociado INTA Asociado INTA
168
LAGUNA, Graciela ---- Virología Asociado INTA y CONICET
Asociado INTA y CONICET
NOME, Sergio ---- Virología Asociado INTA y CONICET
Asociado INTA y CONICET
ARGUELLO, Evangelina ---- Interacción Planta-Patógeno-Vector BECARIO CONICET BECA CONICET postdoc
DUMON, Analia ---- Interacción Planta-Patógeno-Vector BECARIO CONICET BECA CONICET postdoc
MARQUEZ, Nathalie ---- Interacción Planta-Patógeno-Vector BECARIO CONICET BECA CONICET
MAURINO, Fernanda ---- Micología y Bacteriología BECARIO CONICET BECA CONICET
ASINARI, Florencia ---- Virología BECARIO CONICET BECA CONICET
SAAVEDRA PONS, Amalia ---- Micología y Bacteriología BECARIO CONICET BECA CONICET postdoc
CHAVARRÍA, Diego Nicolás ---- Micología y Bacteriología BECARIO CONICET BECA CONICET
BORNANCINI, Verónica Interacción Planta-Patógeno-Vector BECARIO CONICET BECA CONICET
ZANINI, Andrea Alejandra ---- Virología BECARIO CONICET BECA CONICET
LUCÍANI, Cecilia Elizabeth ---- Virología BECA FONCyT BECA FONCyT
PEREZ GROSSO, Tomas ---- Micología y Bacteriología BECA FONCyT BECA FONCyT
GONZÁLEZ, Valeria Mariel Micología y Bacteriología BECA SECyT SECyT
TORRICO, Ada Karina ---- Virología Contrato SENASA SENASA
CELLI, Marcos G. ---- Virología Contrato conv. IGARASHI IGARASHI
MORENO MERINGER, Florencia ---- Virología Contrato conv. IGARASHI IGARASHI
PAREDES, Juan Andrés ---- Micología y Bacteriología Contrato Fund ArgenINTA
Contrato Fund ArgenINTA-Mani
RASPANTI MONTEOLIVA, Jorge Gabriel ---- Micología y Bacteriología Contrato INTeA INTeA
TORRES, Laura ---- Micología y Bacteriología Profesora UNC UNC
FERRER LANFRANCHI, Maríana ---- Micología y Bacteriología Practicanato
Practicanato UNC Fac Cs Agrop.
PACCHIORETTI, Mauro Andrés ---- Micología y Bacteriología Practicanato
Practicanato UNC Fac Cs Agrop.
CAMILETTI, Boris Xavier ---- Micología y Bacteriología Practicanato
Practicanato UNC Fac Cs Agrop.
POZZI, Elizabeth Alicia ---- Virología Practicanato
Practicanato UNC Fac Cs Agrop.
SARDO, María Florencia ---- Virología Practicanato
practicanato UNC Fac Cs Agrop.
CREMBIL, Ezequiel ---- Micología y Bacteriología Practicanato
practicanato UNC Fac Cs Agrop.
MARTINO, Julia Andrea ---- Virología Tesina de grado Tesista Grado
MARTINELLI, Daniela ---- Virología Tesina de grado Tesista Grado
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12.3- MOVIMIENTOS, INCORPORACIONES Y TRASLADOS INTA Y
EXTRAINTA
Apellido y Nombre Legajo Planta Grupo Fecha
Ingreso Tipo Doc.
Nº Docum.
EDWARDS MOLINA, Juan Pablo 21625 No Permanente Profesional 01/08/2013 DU 27559170
SERRI, Dannae Lilia 21181 Beca INTA Beca de Form. 01/07/2013 DU 32477011
LUCÍANI, Cecilia Elizabeth ------ FONCyT ---------- 15/07/2013 DU 32926185
OBERTO, Rodrigo Sebastian 22018 INTA-AUDEAS-CONADEV Beca Est. Capac. 24/10/2013 DU 34468904
MIRANDA, Julio Marcelino 22020 INTA-AUDEAS-CONADEV Beca Est. Capac. 25/10/2013 DU 35157541
VAGHI MEDINA, Carlos G. 95547 Contrato 1.8.7 ---------- 18/11/2013 DU 29625305
GIOVANNI CELLI, Marcos ------ FF50 ---------- 15/11/2013 DU 94587668
PAREDES, Juan Andres ------ Fundación ArgenINTA ---------- 01/11/2013 DU 35089167
GONZALEZ, Valeria M. ------ Beca SECyT ---------- 08/11/2013 DU 31355750
CAMILETTI, Boris X. ------ Beca CONICET ---------- 01/04/2013 DU 34218961
CHAVARRIA, Diego ------ Beca CONICET ---------- 01/04/2013 DU 33440464
BORNANCINI, Verónica ------ Beca CONICET ---------- 01/10/2013 DU 33200610
MARTINELLI, Daniela ------ Pasantia ---------- 01/08/2013 DU 34625613
FERRER LANFRANCHI, M. ------ Practicanato ---------- 10/05/2013 DU 33389009
CREMBIL, Luis Exequiel ------ Practicanato ---------- 01/04/2013 DU 33982672
PACCIORETTI, Mauro A. ------ Practicanato ---------- 01/09/2013 DU 34131704
POZZI, Elizabeth Alicia ------ Practicanato ---------- 10/09/2013 DU 33602867