Principios de Biotecnología Vegetal
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Principios de Biotecnología Vegetal
Francisco Fuentes, [email protected]
Tópicos Avanzados en Biotecnología de Alimentos
IIQ3783-1
Semestre I - 2020
Departamento de Ingeniería Química y Bioprocesos
(DIQB)
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1904 First attempt to embryo culture of selected Crucifers. Hannig B., Bot.
Zeitung, 62: 45-80.
1944 First In vitro culture of tobacco used to study adventitious shoot
formation. Skoog F., Am. J. Bot., 31: 19-24.
1949 Culture of fruits In vitro. Nitsch J. P., Science, 110: 499.
1962 Development of MS medium. Murashige T. and Skoog F., Physiol.
Plant., 15: 473-497.
1967 Haploid plants from pollen grains of tobacco. Bourgin J. P. and Nitsch
J. P., Ann. Physiol. Veg., 9: 377-382 & 10: 69-81.
1977 Successful integration of T-DNA in plants. Chilton M. D. et al., Cell, 11:
263-271.
1985 Infection and transformation of leaf discs with Agrobacterium
tumefaciens and regeneration of transformed plants. Horsch R. B. et
al., Science, 227: 1229-1231.
Hitos importantes en la historia del campo del cultivo de tejidos y
células vegetales
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http://www.sigmaaldrich.com/Area_of_Interest/Life_Science/Plant_Biotechnology/Tissue_Culture_Protocols.html
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Figure 1. Organogenesis and plantlet regeneration from cotyledon and hypocotyl explants of C. lanceolata. (a) Adventitious bud
formation via direct organogenesis from cotyledons. Bar= 4 mm. (b) Elongated shoots regenerated from cotyledon explants.
Bar=8 mm. (c) Hypocotyl explant segments. Bar= 4 mm. (d) Callus generated from hypocotyls cultured for 8 wk. Bar=4 mm. (e)
Adventitious buds formed via callus rom cultured hypocotyls after 6 wk. Bar=2 mm. ( f ) Elongated shoots regenerated via
hypocotylderived callus. Bar=8 mm. (g) Shoots with adventitious roots on rooting medium. Bar=10 mm. (h) Regenerated
plantlets (from hypocotyls) established in a mixture of peat, vermiculite, and perlite. Bar=50 mm.29
Figure 1. Organogenesis and plantlet regeneration from cotyledon and hypocotyl explants of C. lanceolata. (a) Adventitious bud
formation via direct organogenesis from cotyledons. Bar= 4 mm. (b) Elongated shoots regenerated from cotyledon explants.
Bar=8 mm. (c) Hypocotyl explant segments. Bar= 4 mm. (d) Callus generated from hypocotyls cultured for 8 wk. Bar=4 mm. (e)
Adventitious buds formed via callus rom cultured hypocotyls after 6 wk. Bar=2 mm. ( f ) Elongated shoots regenerated via
hypocotylderived callus. Bar=8 mm. (g) Shoots with adventitious roots on rooting medium. Bar=10 mm. (h) Regenerated
plantlets (from hypocotyls) established in a mixture of peat, vermiculite, and perlite. Bar=50 mm.30
Figure 1. Organogenesis and plantlet regeneration from cotyledon and hypocotyl explants of C. lanceolata. (a) Adventitious bud
formation via direct organogenesis from cotyledons. Bar= 4 mm. (b) Elongated shoots regenerated from cotyledon explants.
Bar=8 mm. (c) Hypocotyl explant segments. Bar= 4 mm. (d) Callus generated from hypocotyls cultured for 8 wk. Bar=4 mm. (e)
Adventitious buds formed via callus rom cultured hypocotyls after 6 wk. Bar=2 mm. ( f ) Elongated shoots regenerated via
hypocotylderived callus. Bar=8 mm. (g) Shoots with adventitious roots on rooting medium. Bar=10 mm. (h) Regenerated
plantlets (from hypocotyls) established in a mixture of peat, vermiculite, and perlite. Bar=50 mm.31
Figure 1. Organogenesis and plantlet regeneration from cotyledon and hypocotyl explants of C. lanceolata. (a) Adventitious bud
formation via direct organogenesis from cotyledons. Bar= 4 mm. (b) Elongated shoots regenerated from cotyledon explants.
Bar=8 mm. (c) Hypocotyl explant segments. Bar= 4 mm. (d) Callus generated from hypocotyls cultured for 8 wk. Bar=4 mm. (e)
Adventitious buds formed via callus rom cultured hypocotyls after 6 wk. Bar=2 mm. ( f ) Elongated shoots regenerated via
hypocotylderived callus. Bar=8 mm. (g) Shoots with adventitious roots on rooting medium. Bar=10 mm. (h) Regenerated
plantlets (from hypocotyls) established in a mixture of peat, vermiculite, and perlite. Bar=50 mm. 32
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El metabolismo secundario (MS) regula mucha de las relaciones de las
plantas con el medio circundante
- La producción de MS está estrechamente relacionada con el
proceso de desarrollo de las plantas
- Depende de condiciones determinadas por control hormonal
- Es paralela al desarrollo de tejido especializados y órganos
(raíces, tallos, hojas y glándulas)
- La biosíntesis y acumulación suele estar fuertemente
compartimentalizada a nivel intracelular, celular, de tejidos y de
órganos
- Los MS se producen ante situaciones de estrés o enfermedad
- Factores bióticos
- Factores abióticos
Presentación adaptada de Alejandro Mentaberry, FCEN-UBA
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Las plantas como fuente de metabolitos secundarios de interés comercial
- Potencial
- 75% de las nuevas estructuras químicas descubiertas provienen de
las plantas
- Solo se tiene conocimiento de 5.000 de las 250.000-300.000 especies
vegetales que se creen existentes en el planeta
- 25% de los medicamentos de las industrias farmacéuticas son de
origen vegetal
- 75% de la población mundial utiliza la medicina tradicional que
consiste principalmente en el uso de extractos provenientes de plantas
✓ Insecticidas
✓ Saborizantes
✓ Colorantes
✓ Fragancias
✓ Antimicrobianos
✓ Enzimas
✓ Medicinas
✓ Herbicidas
✓ Proteasas
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Ejemplos de terpenoides producidos en plantas
- Se conocen unos 25.000 terpenoides presentes en plantas
Azadiractina(Insecticida)
Ecdisona(Insecticida)
Taxol(droga anticancerígena)
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Ejemplos de alcaloides producidos en plantas
- Se han caracterizado unos 12.000 alcaloides en plantas
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Ejemplos de fenoles derivados de fenilpropanoides
- Unos 8.000 fenoles se forman por las rutas del ácido shikímico o del malonato/acetato
Gingeroles(Jengibre)
Capsaicina(Pimiento)
Ac. Clorogénico(Café)
Cinamaldehído(Canela)