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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA DETERMINACIÓN DEL EFECTO DE LA SUPLEMENTACIÓN DE Saccharomyces cerevisiae EN LA DIETA DE CERDAS EN LACTACIÓN, SOBRE PARÁMETROS PRODUCTIVOS DE LECHONES LACTANTES. Trabajo de Grado presentado como requisito parcial para obtener el Título de Médico Veterinario Zootecnista Grado Académico de Médico Veterinario y Zootecnista. AUTOR: MARCO ANTONIO CADENA MUÑOZ TUTOR: DR. ÓSCAR RAFAEL CALDERÓN FLORES DE VALGAZ Quito, Octubre, 2014

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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

DETERMINACIÓN DEL EFECTO DE LA SUPLEMENTACIÓN DE

Saccharomyces cerevisiae EN LA DIETA DE CERDAS EN LACTACIÓN,

SOBRE PARÁMETROS PRODUCTIVOS DE LECHONES LACTANTES.

Trabajo de Grado presentado como requisito parcial para obtener el Título de Médico Veterinario Zootecnista Grado Académico de Médico Veterinario y

Zootecnista.

AUTOR:

MARCO ANTONIO CADENA MUÑOZ

TUTOR:

DR. ÓSCAR RAFAEL CALDERÓN FLORES DE VALGAZ

Quito, Octubre, 2014

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ii

DEDICATORIA

A mis padres, Marco y Mariana, quienes están presentes de

manera incondicional, brindándome su amor, cariño y apoyo en

todas mis decisiones, mis triunfos y aciertos les dedico a ellos,

pilar fundamental en mi vida.

A mis hermanas, María del Carmen y María Gabriela, mis

sobrinas, María Victoria y María Valentina, quienes con alegría,

cariño y paciencia han estado junto a mí en todo momento, son

mi fortaleza.

A la Facultad, que me acogió cálidamente, a mis profesores, por

impartirme conocimientos y valores.

A Roberto, Luis y Napo, amigos incondicionales que siempre

están con palabras de ánimo y apoyo.

A las personas que a pesar de la distancia siempre estuvieron

con su voz de apoyo.

Marco Antonio Cadena

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iii

AGRADECIMIENTO

Doy gracias a Dios por sus bendiciones y permitirme culminar

esta etapa de mi vida.

A mi familia, Marco, Mariana, María del Carmen, María Gabriela,

por estar junto a mí siempre, brindándome su confianza, paciencia

y apoyo.

Al Ing. Marcelo Frías y Granja Porcícola Mayorga, por permitir y

colaborar en la realización de esta investigación.

A mi Tutor, Dr. Óscar Calderón, por su colaboración y guía

durante el desarrollo de mi investigación.

Un agradecimiento especial al Dr. Fernando Díaz, quien fue mi

guía durante mi etapa preprofesional en el Centro Experimental

Uyumbicho.

A mis amigos y todas las personas que de alguna manera

colaboraron para la realización de mi trabajo.

Marco Antonio Cadena

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iv

INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR

En mi carácter de Tutor del Trabajo de Grado, presentado por el señor

Marco Antonio Cadena Muñoz para optar el Título o Grado de Médico

Veterinario Zootecnista, cuyo título es: “Determinación del efecto de

la suplementación de Saccharomyces cerevisiae en la dieta de

cerdas en lactación, sobre parámetros productivos de lechones

lactantes”.

Considero que dicho trabajo reúne los requisitos y méritos suficientes

para ser sometido a la presentación pública y evaluación por parte del

jurado examinador que se designe.

Quito, Octubre, 2014

Dr. Óscar Rafael Calderón Flores de Valgaz

CC: 170264648-8

[email protected]

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v

AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL

Yo, Marco Antonio Cadena Muñoz en calidad de autor del trabajo de

investigación o tesis realizada sobre “DETERMINACIÓN DEL EFECTO DE

LA SUPLEMENTACIÓN DE Saccharomyces cerevisiae EN LA DIETA DE

CERDAS EN LACTACIÓN, SOBRE PARÁMETROS PRODUCTIVOS DE

LECHONES LACTANTES”, por la presente autorizo a la UNIVERSIDAD

CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso de todos los contenidos que me

pertenecen o de parte de los que contiene esta obra, con fines estrictamente

académicos o de investigación.

Los derechos que como autor me corresponden, con la excepción de la

presente autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo

establecido con los artículos 5, 6, 8, 19 y demás pertinentes de la Ley de

Propiedad Intelectual y su Reglamento.

Quito, Octubre, 2014

Marco Cadena Muñoz

CC: 171682820-5

[email protected]

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vi

APROBACIÒN DEL TRABAJO / TRIBUNAL

El tribunal constituido por:

Dr. Francisco de la Cueva Presidente

Dra. Martha Naranjo Vocal Principal

Dr. Richard Salazar Vocal Principal

Dr. Eduardo Aragón Vocal Suplente

Dr. Òscar Calderón Tutor

Luego de receptar la presentación del trabajo de grado previo a la obtención

del título o grado de MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA, presentado

por el señor CADENA MUÑOZ MARCO ANTONIO. Con el título

“DETERMINACIÓN DEL EFECTO DE LA SUPLEMENTACIÓN DE

Saccharomyces cerevisiae EN LA DIETA DE CERDAS EN LACTACIÓN,

SOBRE PARÁMETROS PRODUCTIVOS DE LECHONES LACTANTES”.

Ha emitido el siguiente veredicto: APROBADO

Fecha: Quito, Octubre, 2014

Para constancia de lo actuado firman:

Presidente: Dr. Francisco de la Cueva

Vocal Principal: Dra. Martha Naranjo

Vocal Principal: Dr. Richard Salazar

Vocal Suplente: Dr. Eduardo Aragón

Tutor: Dr. Óscar Calderón

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INDICE GENERAL

CONTENIDO

DEDICATORIA .............................................................................................. ii

AGRADECIMIENTO ..................................................................................... iii

INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR ................................................. iv

AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL ..................................... v

LISTA DE CUADROS .................................................................................. ix

LISTA DE TABLAS ....................................................................................... x

RESUMEN.................................................................................................. xiii

INTRODUCCIÓN ........................................................................................... 1

CAPITULO I .................................................................................................. 2

EL PROBLEMA ......................................................................................... 2

Planteamiento del problema .................................................................... 2

Objetivos ................................................................................................. 3

Justificación ............................................................................................ 5

CAPÍTULO II ................................................................................................. 6

MARCO TEÓRICO..................................................................................... 6

Antecedentes .......................................................................................... 6

Fundamentación teórica .......................................................................... 8

HIPÓTESIS ........................................................................................... 17

VARIABLES .......................................................................................... 18

Definición de Términos Básicos ............................................................ 18

CAPÍTULO III .............................................................................................. 20

METODOLOGÍA ...................................................................................... 20

Determinación de los métodos a utilizar ................................................ 20

Características del Área de Estudio ...................................................... 21

Materiales ............................................................................................. 22

Métodos de campo ................................................................................ 23

Manejo de los animales ......................................................................... 24

Análisis Estadístico ............................................................................... 25

CAPITULO IV .............................................................................................. 26

RESULTADOS Y DISCUSIÓN ................................................................. 26

CAPITULO V ............................................................................................... 36

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viii

CONCLUSIONES..................................................................................... 36

RECOMENDACIONES ............................................................................ 38

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS............................................................ 39

ANEXOS ..................................................................................................... 42

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ix

LISTA DE CUADROS

Cuadro 1. Composición de la leche de cerda............................................... 11

Cuadro 2. Tratamientos utilizados en la investigación. ................................ 21

Cuadro 3. Peso de Lechones (gramos) ....................................................... 26

Cuadro 4. Ganancia Diaria de Peso (gramos) ............................................. 27

Cuadro 5. Consumo de Alimento de Lechones por Camada (gramos) ........ 28

Cuadro 6. Presencia de Diarrea en Lechones ............................................. 29

Cuadro 7. Condición Corporal Cerdas (Valoración: 1 - 5) ............................ 30

Cuadro 8. Peso de Cerdas (kilogramos) ...................................................... 30

Cuadro 9. Registro días de retorno al celo posdestete ................................ 31

Cuadro 10. Análisis de Calostro................................................................... 32

Cuadro 11. Costo de Alimentación de Cerdas ............................................. 34

Cuadro 12. Costos de Alimentación de Lechones ....................................... 34

Cuadro 13. Costo Kg de Lechón al Destete ................................................. 35

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x

LISTA DE TABLAS

Tabla 1. Medidas de tendencia central para peso al nacimiento de lechones

.................................................................................................................... 42

Tabla 2. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso al

nacimiento de lechones ............................................................................... 42

Tabla 3. Medidas de tendencia central para peso a los 7 días de lechones . 43

Tabla 4. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso a los 7

días de lechones ......................................................................................... 43

Tabla 5. Medidas de tendencia central para peso a los 14 días de lechones44

Tabla 6. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso a los 14

días de lechones ......................................................................................... 44

Tabla 7. Medidas de tendencia central para peso al destete de lechones ... 45

Tabla 8. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso al destete

de lechones ................................................................................................. 45

Tabla 9. Medidas de tendencia central para ganancia diaria de peso

nacimiento - 7 días de lechones .................................................................. 46

Tabla 10. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia

diaria de peso nacimiento - 7 días de lechones ........................................... 46

Tabla 11. Medidas de tendencia central para ganancia diaria de peso

8 - 14 días de lechones ............................................................................... 47

Tabla 12. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia

diaria de peso 8 - 14 de lechones ................................................................ 47

Tabla 13. Medidas de tendencia central para ganancia diaria de peso

15 días - destete de lechones ...................................................................... 48

Tabla 14. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia

diaria de peso 15 días - destete de lechones ............................................... 48

Tabla 15. Medidas de tendencia central para ganancia total de peso de

lechones ...................................................................................................... 49

Tabla 16. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia total

de peso de lechones .................................................................................... 49

Tabla 17. Medidas de tendencia central para consumo de alimento de

lechones por camada .................................................................................. 50

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xi

Tabla 18. "t" Student para determinar diferencia significativa en consumo de

alimento de lechones por camada ............................................................... 50

Tabla 19. Medidas de tendencia central para presencia de diarrea en

lechones en lactancia por camada ............................................................... 51

Tabla 20. "t" Student para determinar diferencia significativa en presencia de

diarrea en lechones en lactancia por camada .............................................. 51

Tabla 21. Medidas de tendencia central para condición corporal (1 - 5) de

cerdas a los 100 días de gestación .............................................................. 52

Tabla 22. "t" Student para determinar diferencia significativa en condición

corporal (1 - 5) de cerdas a los 100 días de gestación ............................ 52

Tabla 23. Medidas de tendencia central para condición corporal (1 - 5) de

cerdas al momento del parto ....................................................................... 53

Tabla 24. "t" Student para determinar diferencia significativa en condición

corporal (1 - 5) de cerdas al momento del parto..................................... 53

Tabla 25. Medidas de tendencia central para condición corporal (1 - 5) de

cerdas al momento del destete .................................................................... 54

Tabla 26. "t" Student para determinar diferencia significativa en condición

corporal (1 - 5) de cerdas al momento del destete ................................. 54

Tabla 27. Medidas de tendencia central para concentración de IgG en

calostro ........................................................................................................ 55

Tabla 28. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración

de IgG en calostro ....................................................................................... 55

Tabla 29. Medidas de tendencia central para concentración de IgA en

calostro ........................................................................................................ 56

Tabla 30. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración

de IgA en calostro ........................................................................................ 56

Tabla 31. Medidas de tendencia central para densidad de calostro ............. 57

Tabla 32. "t" Student para determinar diferencia significativa en densidad de

calostro ........................................................................................................ 57

Tabla 33. Medidas de tendencia central para concentración de grasa en

calostro ........................................................................................................ 58

Tabla 34. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración

de grasa en calostro .................................................................................... 58

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xii

Tabla 35. Medidas de tendencia central para concentración de lactosa en

calostro ........................................................................................................ 59

Tabla 36. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración

de lactosa en calostro .................................................................................. 59

Tabla 37. Medidas de tendencia central para concentración de proteína en

calostro ........................................................................................................ 60

Tabla 38. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración

de proteína en calostro ................................................................................ 60

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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

DETERMINACIÓN DEL EFECTO DE LA SUPLEMENTACIÓN DE Saccharomyces cerevisiae EN LA DIETA DE CERDAS EN LACTACIÓN, SOBRE PARÁMETROS PRODUCTIVOS DE LECHONES LACTANTES.

Autor: Marco Antonio Cadena Muñoz

Tutor: Dr. Óscar Calderón Fecha: Octubre, 2014

RESUMEN

Los probióticos son suplementos que al ser añadidos a la ración de animales para la producción van a mejorar el equilibrio de su flora microbiana intestinal. La levadura, Saccharomyces cerevisiae es utilizada en industrias como fermentación de vino, destilería, panadería y procesos médicos y bioquímicos. La levadura desecada presenta la ventaja sobre probióticos

bacterianos de soportar condiciones ambientales y pH extremos. En la investigación se evaluó el uso de Saccharomyces cerevisiae sobre parámetros productivos de lechones al momento del destete. Se usó un diseño completamente al azar con dos tratamientos, cada uno con 5 cerdas TOPIG en gestación, próximas al parto, entre segundo y cuarto parto y su respectiva camada con 10 lechones cada una. La alimentación en fase de gestación para el Grupo Testigo fue de 2,5 kg de balanceado + agua y para el Grupo Experimental de 2,5 kg de balanceado + Saccharomyces cerevisiae (2 kg/T de alimento balanceado) + agua. La alimentación en fase de lactación para el Grupo Testigo fue de 5 kg de balanceado + agua y para el Grupo Experimental de 5 kg de balanceado + Saccharomyces cerevisiae (2 kg/T de alimento balanceado) + agua. Los lechones se alimentaron ad libitum a partir del día 7 hasta el día 21 de lactancia. Se encontraron diferencias altamente significativas (P<0,01) a favor del Grupo Experimental para Peso al Destete, Ganancia Diaria de Peso, Ganancia Total de Peso. En cuanto a Consumo de Alimento de Lechones, Presencia de Diarreas en Lechones no existió significancia (P>0,05). Se observó diferencia significativa alta (P<0,01) en concentración de IgG a favor del Grupo Experimental, no así para IgA donde no existió diferencia significativa (P>0,05) sin embargo la cantidad favoreció al grupo de experimentación. El costo de producción del kilogramo de lechón fue menor en el Grupo Experimental siendo más rentable para el productor.

Palabras claves: LECHONES, LACTACIÓN, Saccharomyces cerevisiae,

GANANCIA DE PESO, INMUNOGLOBULINAS.

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xiv

ABSTRACT

Probiotics are food supplements, that when added to production animal food, improve balance of intestine microbial flora. Yeast, Saccharomyces cerevisiae is used in industry to ferment wine, distillery, bakery and medical and biochemical processes. Dried yeast shows advantages on bacterial probiotics that support extreme environmental conditions and pH. The research assessed the use of Saccharomyces cerevisiae on productive parameters of piglets upon weaning. A full random design was used with two treatments, each of them with 5 pregnant TOPIG piglets, close to delivery, between the second and fourth delivery and relevant 10-piglet litter each. Food during pregnancy for the Control Group was 2.5 kg food + water, and for the Experimental Group, it was 2.5 kg pig food + Saccharomyces cerevisiae (2 kg/T pig food) + water. Food during lactation phase for the Control Group was 5 kg pig food + water, and for the Experimental Group, 5 kg pig food + Saccharomyces cerevisiae (2 kg/T pig food) + water. Piglets ate ad libitum from the 7th day until 21st breastfeeding. Highly significant differences were found (P<0.01) in favor of the Experimental Group in Weight upon Weaning. Daily Weight Gain, Total Weight Gain. Regarding consumption of piglets food, diarrheas in piglets, no significant difference was noticed (P>0.05). A highly significant difference was seen (P<0.01) on concentration of IgG in behalf of the Experimental Group, but not for IgA with no significant difference (P>0.05); however, the amount favored to the Experimental Group. The cost for producing a kilogram of piglet was lower for the Experimental Group and more profitable for the producer.

Keywords: PIGLETS, LACTATION, Saccharomyces cerevisiae, WEIGHT

GAIN, IMMUNOGLOBULIN.

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1

INTRODUCCIÓN

Debido al incremento anual de la población mundial y a su constante

demanda de consumos alimenticios, los productores se ven en la necesidad

de aumentar su producción y productividad.

Hoy en día se busca mejorar la cantidad y calidad de productos derivados

de origen animal, para lo cual la mayoría de productores utilizan aditivos

nutricionales promotores de crecimiento como los antibióticos (APC) en las

dietas de los animales, los mismos que pueden afectar no sólo a la salud

pública debido al incremento de resistencias microbianas a diferentes

fármacos, sino también al tratamiento de los animales llevando a un elevado

costo en los procesos de producción.

Teniendo en cuenta la demanda de productos cárnicos y siendo el porcino

junto al avícola el subsector de mayor crecimiento, que alcanzará a los mil

millones de animales antes del 2015 (FAO, 2012), los porcicultores buscan

incrementar el número de lechones por cerda al parto, mantener el estado

corporal de la gestante y reducir la incidencia de enfermedades en lechones

lactantes.

Actualmente se puede encontrar una gran variedad de productos utilizados

como promotores de crecimiento en la alimentación animal, entre los cuales

se puede citar: cultivos de bacterias benéficas (Lactobacillus), cultivos de

levaduras (Saccharomyces cerevisiae) y/o enzimas digestivas (Bazay, 2010).

Por lo antes dicho, esta investigación tuvo como propósito determinar si el

consumo de Saccharomyces cerevisiae por parte de las cerdas al final de la

gestación tiene efectos favorables en el crecimiento y producción de los

lechones.

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2

CAPITULO I

EL PROBLEMA

Planteamiento del problema

El uso de antibióticos como promotores de crecimiento en el país y en el

mundo han causado grandes pérdidas económicas en los porcicultores,

principalmente por la resistencia microbiana que estos generan, también ha

producido problemas en la salud pública debido a las trazas de antibióticos

que permanecen en los distintos productos de origen animal, lo cual orienta

al uso cada vez de antibióticos de mayor espectro y consecuentemente,

disminuye las posibilidades de poder tratar una enfermedad bacteriana de

manera más eficaz.

En lechones una de las principales causas de pérdidas económicas son los

problemas entéricos, debido a que en el tracto gastrointestinal se encuentran

bacterias comensales y patógenas, las cuales por cambios en la dieta o en el

ambiente, pueden provocar una variación en la estabilidad y producir

alteraciones en la salud y muerte de los animales.

Por estas razones se hace imprescindible la investigación de nuevas

opciones de reemplazo a los antibióticos como promotores de crecimiento,

en este caso se utilizará Saccharomyces cerevisiae, considerado GRAS

(Generalmente Reconocido Como Seguro) (Romero & Gomez-Basauri, s.f.),

para utilizarlo como promotor de crecimiento, adicionado a la dieta de cerdas

en lactación y evaluar su efecto en lechones hasta el momento del destete.

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3

Se dispone de registros de investigaciones realizadas con Saccharomyces

cerevisiae en el País, principalmente en cuyes y cerdos de engorde, pero

ningún estudio realizado en el periodo de lactancia.

Formulación del Problema

¿Cuáles son los efectos sobre parámetros productivos “Ganancia de Peso,

Consumo de Alimento, presencia de problemas gastrointestinales (diarrea) y

mortalidad en lechones al momento del destete” con la suplementación de

Saccharomyces cerevisiae en la dieta de cerdas en lactación?

Sistematización del Problema

¿Es necesario suplementar la dieta de cerdas en lactación con

Saccharomyces cerevisiae?

¿Es necesario mejorar los parámetros productivos de los lechones lactantes?

¿Por qué es bueno tener una mayor Ganancia de Peso y menor mortalidad

en las camadas hacia el destete?

Objetivos

General

Determinar el efecto productivo en lechones suplementando con

Saccharomyces cerevisiae en la dieta de cerdas en lactación.

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4

Específicos

1. Determinar la Ganancia Diaria de Peso, Peso al Nacimiento, Peso de

lechones al momento del destete y el Consumo de Alimento Preinicial

en lechones.

2. Cuantificar la presencia de problemas gastrointestinales (diarrea) y

Porcentaje de Mortalidad en lechones.

3. Calcular el costo unitario por kg de lechón, al destete.

4. Determinar la calidad del calostro al momento del parto, mediante

análisis bromatológico.

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Justificación

Las levaduras se han administrado a los animales en el alimento durante

más de 100 años, ya sea en la forma de una masa fermentada producida en

la granja, subproductos de levaduras de cervecería o destilería o productos

comerciales elaborados a base de levaduras específicamente para la

alimentación animal.

En la actualidad se buscan nuevas opciones de reemplazo a los antibióticos

como promotores de crecimiento en la alimentación animal, especialmente

de cerdos. Esto con la finalidad de mejorar la reproducción de la cerda

gestante y principalmente evitar el desarrollo de resistencias bacterianas no

sólo en animales sino también en humanos debido al uso indiscriminado de

antibióticos, en la alimentación animal.

En el país no se ha encontrado investigaciones realizadas sobre los efectos

que produce el probiótico Saccharomyces cerevisiae en lechones hacia el

momento del destete al administrarlo en la dieta de cerdas en periodo de

lactación, siendo importante, ya que después del destete el lechón está

expuesto a factores estresantes: nutricionales, ambientales, llevando a una

baja productividad al presentarse disminución en el consumo de alimento y

problemas gastrointestinales.

Obteniendo resultados satisfactorios en esta investigación se puede empezar

a usar el probiótico en la lactancia de lechones, prescindiendo el uso

indiscriminado de antibióticos profilácticos y promotores de crecimiento

evitando así la aparición de resistencias y beneficiando al productor con

mejores parámetros hacia futuro.

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CAPÍTULO II

MARCO TEÓRICO

Antecedentes

Shen, Piao, Kim, Wang, Liu, Yoon y Zhen (2009), en su investigación

“Efectos de la suplementación con cultivo de levaduras sobre el crecimiento,

la salud intestinal y la respuesta inmune de lechones” utilizaron un total de

216 cerdos de destete en 2 experimentos para determinar los efectos de la

suplementación dietética de cultivo de levadura (CL) a dosis diferentes, sobre

el rendimiento del crecimiento, digestibilidad de los nutrientes, la morfología

intestinal, la microflora intestinal en cerdos destetados y para determinar si el

CL puede sustituir a los antibióticos promotores de crecimiento (APC).

En el experimento, 192 cerdos (7,5 ± 0,2 kg de PV) destetados a los 28 días

de edad fueron asignados al azar a 6 tratamientos: 1) control, 2) APC

(clortetraciclina, 80 mg / kg), 3) 2.5 g / kg de CL (Diamond V XP cultivo de

levadura); 4) 5 g / kg de CL; 5) 10 g / kg de CL, y 6) 20 g / kg de CL. Los

cerdos fueron alimentados con las dietas experimentales durante 21 días.

La ganancia media diaria de los cerdos alimentados con 5 g / kg de CL fue

mayor (P <0,05) que la de los cerdos en el grupo control y otros grupos de

CL, sin embargo, no hubo diferencias entre el grupo CL y APC.

Así, 5 g / kg de nivel de suplementación de CL fue elegido para el

experimento 2 para aclarar el modo de acción de CL, 24 cerdos de destete

(5,8 ± 0,1 kg de PV; 21 días de edad) fueron asignados al azar en 3

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tratamientos para un ensayo de 21 días. Los tratamientos consistieron en: 1)

control (sin APC o CL), 2) AGP, y 3) 5 g / kg de CL.

Los suplementos dietéticos de 5 g / kg de CL mejoraron (P <0,05) la

ganancia diaria de peso de los cerdos en comparación con el grupo control,

pero el rendimiento de los cerdos alimentados con CL fue similar a los

alimentados con APC. Los cerdos que recibieron 5 g / kg de CL presentaron

mayor (P <0,05) digestibilidad de la MS, PC y la altura de las vellosidades

del yeyuno. El efecto comparable de 5 g / kg de la suplementación de CL y

APC en el comportamiento del crecimiento de cerdos de destete indica que

los CL pueden ser la alternativa al uso de antibióticos.

Shen, Carroll, Yoon, Mateo y Kim (2011), en su investigación “Efecto de la

suplementación de un producto de la fermentación de Saccharomyces

cerevisiae en dietas de cerdas sobre el rendimiento en gestación y lechones

lactantes” trataron a 42 cerdas 5 días antes de la cubrición, se registró el

tamaño de la grasa dorsal, se recolectó sangre de cerdas y lechones para

medir número de células plasmáticas, Nitrógeno Ureico en plasma e IgG.

También fue medida la composición de calostro y leche.

No se encontraron diferencias estadísticas entre tratamientos en lo

correspondiente a rendimientos reproductivos, sin embargo, las cerdas

tratadas con el producto de fermentación tendieron a tener mayor peso total

de la camada al destete (P=0.068) y ganancia de peso en la camada

(P=0.084) en comparación con las cerdas del tratamiento de harina de maíz

y soya.

El conteo de neutrófilos disminuyó (P=<0.05) hacia los días 110 de

gestación y 17 de lactancia en las cerdas tratadas con el producto de la

fermentación. La concentración de Nitrógeno Ureico en plasma tendió a ser

mayor (P=0.069) para las cerdas tratadas con harina de maíz y soya, medida

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a los 110 días de la gestación. La Proteína y Grasa contenida en calostro y

leche no difirió entre tratamientos (P>0.10), así mismo, la IgG en calostro,

leche y plasma en lechones no tuvo diferencia entre tratamientos (P>0.10).

Fundamentación teórica

Desarrollo de la Glándula Mamaria

Las glándulas mamarias, son glándulas sudoríparas modificadas que se

componen de tejido conectivo intersticial, parénquima, conductos, vasos y

nervios. En la cerda el número total de tetinas es de 14 o 7 pares, el mismo

que puede variar entre 4 y 9 pares (Frandson, Wilke, & Fails, s.f.).

El desarrollo fetal de la glándula mamaria, semejante en todas las especies,

se desarrolla en su mayor parte durante la primera mitad de la gestación

(Schmidt, 1974), a partir de las crestas mamarias o también llamadas líneas

de leche, que son engrosamientos ubicados a cada lado del ectodermo

ventrolateral del embrión (Frandson, Wilke, & Fails, s.f.).

Después del nacimiento hasta la pubertad, el crecimiento del tejido secretor

es mínimo, pero tras la pubertad y cada ciclo estral se acompaña con cierto

crecimiento mamario, así, con los estrógenos que son segregados se

desarrollan principalmente los sistemas de conductos mientras que la

progesterona ayuda al tejido secretor (Schmidt, 1974). La hormona del

crecimiento y los esteroides adrenales intervendrían también en el desarrollo

del sistema de conductos; la prolactina lo haría en el desarrollo alveolar

(Cunningham & Klein, 2009).

En la gestación hay un incremento considerable de la glándula mamaria, en

su primera fase se desarrolla casi todo el sistema de conductos y durante la

segunda mitad lo hace el sistema lobulillo-alveolar (Schmidt, 1974), el

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evidente crecimiento se lo observa hacia la mitad de la gestación y al final de

ésta, la glándula se presenta como una estructura formada por células

alveolares que secretan leche (debido al aumento de la secreción de

prolactina) con la subsecuente formación de calostro (Cunningham & Klein,

2009).

Durante la lactación el crecimiento de las mamas es mínimo, esto sucede

hasta el pico de lactación, pero después de este momento no se desarrollan

(Schmidt, 1974).

Producción láctea

La cantidad de leche por día que produce una cerda madre no es constante,

ésta aumenta hasta un máximo entre la tercera y quinta semana sufriendo

después un descenso; la producción de leche está influenciada por la

frecuencia de lactaciones por parte de los lechones, que aproximadamente

son cada hora (Lucas & Lodge, 1967); así también, el estado de lactación,

tamaño de la camada, ingestión voluntaria del alimento durante la lactación,

condición corporal de la cerda al momento del parto, condición ambiental y la

salud del animal (El lechón recién nacido, 1998).

La levadura activa deshidratada, con más de quince millones de células vivas

por gramo, fue efectiva al mejorar la ganancia de peso y eficiencia alimenticia

cuando se suplementaron dietas de cerdas y lechones pre y posdestete

(Park, 2006).

La IgA es la proteína del suero mayoritaria en la leche de cerda, ayuda a la

mayor absorción de cantidad de agua hacia la leche, mediante ósmosis, con

lo cual la cantidad de leche aumenta (Park, 2006).

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Composición de la leche de cerda

La composición de la leche de cerda no es constante, ésta varía según la

etapa de lactación (Lucas & Lodge, 1967), el calostro posee una alta

concentración de proteínas y sólidos totales pero un bajo nivel de grasa y

Lactosa, durante los 2 -3 días de lactación es característico el declive de

sólidos totales y proteína y un incremento de lípidos y carbohidratos lácteos

(El lechón recién nacido, 1998).

La Proteína Calostral contiene más Treonina, Valina, Leucina y Fenilalanina

que la de la leche, los tres primeros están presentes en gran cantidad en las

proteínas que confieren inmunidad (Lucas & Lodge, 1967). Las

inmunoglobulinas presentes se pueden absorber intactas en el intestino

proporcionando también inmunidad pasiva (Fuller, 2008).

La Lactosa se encuentra presente en cantidad mínima en el calostro, puede

alcanzar el 1,97 %, atribuyéndose parcialmente la responsabilidad de la

Hipoglucemia de los lechones recién nacidos (Lucas & Lodge, 1967).

La leche de la cerda es rica en Grasa, éste es el constituyente más variable y

su tasa presenta variaciones de un día a otro en la misma cerda.

La leche de la cerda presenta un déficit en Cobre y Hierro, a ello se debe la

administración de Hierro a lechones recién nacidos para prevenir la anemia

(El lechón recién nacido, 1998). El Calcio, Fósforo y Magnesio, presentes en

forma de óxidos, mientras el Cloro que se presenta en forma de sal sódica o

potásica, constituyen casi la totalidad de las cenizas (Lucas & Lodge, 1967).

Park (2006), señala que al suplementar con levadura la dieta de cerdas en

lactación se obtuvo cantidades más elevadas de Gamma Globulina en la

leche de las cerdas en el día 21 de lactación.

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Jurgens et al. (1997) en su investigación, obtuvo que la leche de cerdas

alimentadas con levadura seca activa, presentaba mayor cantidad de sólidos

totales, incremento en la Proteína Cruda, ligero incremento de Grasa y el

contenido de Gamma Globulina también fue más alto.

Una cantidad alta de Gamma Globulina en leche sugiere un incremento

similar de Inmunoglobulina A, la cual no se absorbe después de la ingestión

de leche por el lechón pero actúa localmente en el tracto intestinal y confiere

protección contra infecciones a nivel de la superficie mucosa intestinal

(Ammann y Stiehm, 1966, citado por Jurgens et al., 1997).

Cuadro 1. Composición de la leche de cerda

% de la

leche fresca

% de la

energía de

la leche

Proteína Bruta 6 21

Grasa 10 65

Lactosa 5 14

Agua 79

Fuente: (Fuller, 2008).

Elaboración: El Autor.

Digestión de lechones

Los primeros días de edad el intestino es permeable a las proteínas de la

leche materna, esencial para la transferencia de anticuerpos y globulinas

(McDonald, y otros), la IgG es necesaria para la inmunidad pasiva de los

lechones, transmitida por la madre, al ser los niveles mayores en el calostro y

descender gradualmente durante su transformación en leche (Park, 2006).

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La ingestión diaria de leche aumenta de aproximadamente 500 gramos a 800

– 1000 gramos por cerda, hasta el pico de producción, cercano a las 3

semanas (Fuller, 2008).

Al inicio el estómago produce pequeñas cantidades de HCl y Pepsinógeno,

pero segrega Quimosina, la cual actúa a pH 3.5, degrada enlaces peptídicos

entre la Fenilalanina y Metionina de la Caseína (McDonald, y otros).

A la tercera semana de edad, presentan un complejo enzimático inmaduro, la

secreción ácida está poco desarrollada, resultando difícil proporcionar el pH

óptimo para la digestión gástrica y neutralización de gérmenes patógenos

ingeridos (Fuller, 2008).

La actividad de la Lactosa es alta al nacimiento, alcanza el máximo a la

primera semana y desciende a la tercera o cuarta semana. La Maltasa

aumenta a partir de la cuarta semana y la Sacarasa se mantiene a un nivel

constante entre la cuarta y octava semana. La α Amilasa permanece baja

hasta la cuarta semana (McDonald, y otros).

Durante la fase de lactante, la superficie del intestino delgado se cubre de

vellosidades en forma de dedos que se proyectan en la luz intestinal y

maximizan el área de absorción (Fuller, 2008).

Trastornos digestivos del lechón lactante

El recién nacido está expuesto sucesivamente a varias fuentes de

microorganismos, entre ellas está el canal de parto, las heces maternas

(probablemente la mayor fuente de bacterias) y al ambiente de crianza (El

lechón recién nacido, 1998).

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La principal causa de diarreas bacterianas en el lechón lactante es la

Colibacilosis enterotoxigénica, causada por E. coli enterotoxigénicos (ECET)

(El lechón recién nacido, 1998), esta diarrea amarilla o acuosa lleva a la

muerte por deshidratación (Manual del porcicultor, 1997).

También pueden estar implicadas bacterias como Salmonella,

Campylobacter y Clostridium perfringens, protozoo Cryptosporidium y varios

virus como Rotavirus, virus de la Gastroenteritis Transmisible, Adenovirus

Porcino y Coronavirus (El lechón recién nacido, 1998).

El Manual del porcicultor (1997) detalla que el lechón es predisponente a

problemas digestivos durante la lactancia debido a:

Pérdida de calor: durante los primeros 10 a 15 días.

Transición alimentaria: los cambios bruscos en la alimentación

favorecen a la acumulación de gérmenes gastrointestinales.

Sistema inmunitario inmaduro: la inmunidad es solo funcional a partir

de la 2 a 3 semanas de vida.

Sensibilidad a la deshidratación: las pérdidas de líquido debido a

diarreas son críticas.

Probiótico

Los probióticos son suplementos que al ser añadidos a la ración de animales

para la producción van a mejorar el equilibrio de su flora microbiana intestinal

(Fuller, 2008).

Microorganismos como Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Lactobacillus

facíminis, Saccharomyces cerevisiae, Enterococcus faecium, han sido

autorizados como aditivos en la alimentación, demostrando efectos positivos

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sobre todo en parámetros productivos, condición sanitaria y salud intestinal

en diferente especie de animales (Bazay, 2010).

Estas bacterias benéficas al colonizar el intestino pueden conferir protección

contra bacterias patógenas, limitando su adhesión a la pared intestinal.

Primeramente se coloniza por la microflora de la madre e inmediatamente de

patógenos ambientales (Fuller, 2008).

Los probióticos son beneficiosos para proteger a los cerdos de

enfermedades infecciosas, algunos neutralizan enterotoxinas de E. coli, otros

pueden reducir el pH al producir cantidades altas de Ácido Láctico e impedir

el crecimiento de ciertas bacterias. (Fuller, 2008).

Resultados variables se han expresado en índices productivos, puede

deberse a la composición de la dieta, estrategia de alimentación, cepa

utilizada, dosis, comportamiento animal, raza, uso de antibióticos (Bazay,

2010).

Modo de Acción

Según Fuller (1989), citado por Bazay (2010), el mecanismo de acción de los

probióticos puede deberse a:

Competencia por la adhesión en los receptores del epitelio intestinal y

competencia por nutrientes.

Producción de sustancias antibacterianas.

Estimulación de la inmunidad.

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Levadura

La levadura es un hongo unicelular, la Saccharomyces cerevisiae con más

de 1000 cepas, es considerado Generalmente Reconocido como Seguro y es

utilizada en industrias como fermentación de vino, destilería, panadería y

procesos médicos y bioquímicos (Romero & Gomez-Basauri, s.f.).

Muchas especies de Saccharomyces producen dos importantes metabolitos

primarios, el Etanol, usado en aplicaciones como combustible, disolvente; el

Dióxido de Carbono, usado en la fermentación de productos de panadería o

carbonatación de bebidas (Romero & Gomez-Basauri, s.f.).

La levadura activa es la que se utiliza para la fermentación y como fuentes

de componentes nutricionales y sabor, la levadura inactiva no es

fermentadora, puede encontrarse de dos tipos:

Levadura primaria cultivada, por su composición favorable de

nutrientes y aminoácidos se utiliza para elaboración de piensos y

alimentos.

Levadura de cerveza, puede procesarse más en extractos de levadura

para la aplicación de sabor (Romero & Gomez-Basauri, s.f.).

La levadura desecada presenta la ventaja sobre probióticos bacterianos de

soportar condiciones ambientales y pH extremos (Fuller, 2008). Es resistente

a antibióticos, sulfamidas y otros agentes antibacteriales, siendo esta

resistencia genéticamente natural (Bazay, 2010).

El contenido de Materia Seca de la levadura es aproximadamente de 891

g/kg y su composición nutritiva normal (g/kg en la MS) es de Proteína Bruta

499, Fibra Bruta 15, Cenizas 85, Extracto Etéreo 13, Extracto Libre de

Nitrógeno 388, Calcio 1,3 y Fósforo 15,6. (Fuller, 2008).

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Modo de acción de las levaduras en monogástricos

Castro y Rodríguez (2005), en su artículo de revisión, Levaduras: Probióticos

y Prebióticos que mejoran la salud animal, señalan que el mecanismo de

acción de las levaduras en monogástricos se relacionan con lo siguiente:

Estimulación de las disacáridas de las microvellosidades intestinales.

Efecto antiadhesivo sobre patógenos.

Estimulación de inmunidad no específica.

Inhibición de la acción de las toxinas microbianas.

Efecto antagonista frente a microorganismos patógenos.

Efectos benéficos en animales

Uno de los problemas que produce alta mortalidad en planteles porcinos son

los ocasionados por infecciones del sistema digestivo, teniendo un

considerable impacto económico (Castro & Rodríguez, 2005).

Martínez et al. (2000) citado por Bazay (2010), demostraron que la inclusión

de la cepa 47 de S. cerevisiae en el alimento de cerdos posdestete hacia el

acabado, aumentó la resistencia a trastornos respiratorios y digestivos, al ser

expuestos a estrés debido al cambio de una granja con buen manejo y

condiciones sanitarias a otra con antecedentes de problemas respiratorios y

digestivos.

En rumiantes se incluye levadura como fuente de vitamina B y Energía, la

Saccharomyces cerevisiae se utiliza para aumentar la población bacteriana

benéfica del rumen, determinando mejoras en la ingestión de alimentos,

aumento de peso y producción de leche. (Fuller, 2008).

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HIPÓTESIS

Hipótesis 1

El Saccharomyces cerevisiae administrado como probiótico al alimento de

cerdas en lactación, produce incremento en la Ganancia Diaria de Peso en

lechones al momento del destete.

Hipótesis 2

El Saccharomyces cerevisiae administrado como probiótico al alimento de

cerdas en lactación, produce disminución en la presencia de problemas

gastrointestinales (diarrea) y disminución en la mortalidad de lechones al

momento del destete.

Hipótesis 1

H0 = No se produce un incremento en la Ganancia Diaria de Peso de

los lechones al momento del destete al administrar Saccharomyces

cerevisiae al alimento de cerdas en lactación.

H1 = Si se produce un incremento en la Ganancia Diaria de Peso, de

los lechones al momento del destete al administrar Saccharomyces

cerevisiae al alimento de cerdas en lactación.

Hipótesis 2

H0 = No disminuye la presencia de problemas gastrointestinales

(diarrea) ni la mortalidad de los lechones al momento del destete al

administrar Saccharomyces cerevisiae al alimento de cerdas en

lactación.

H1 = Si disminuye la presencia de problemas gastrointestinales

(diarrea) y la mortalidad de los lechones al momento del destete al

administrar Saccharomyces cerevisiae al alimento de cerdas en

lactación, es decir difiere en al menos una variable de estudio entre

tratamientos.

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VARIABLES

Variable Independiente

Saccharomyces cerevisiae administrado al alimento de cerdas en lactación.

Variable Dependiente

Parámetros productivos.

Lechones:

● Peso de lechones al nacimiento (gramos).

● Ganancia Diaria de Peso (gramos).

● Consumo de alimento de lechones 7 - 21 días (gramos).

● Mortalidad de lechones nacimiento - 21 días.

● % de mortalidad en lechones.

● Presencia de problemas gastrointestinales (diarreas).

Cerdas en Lactancia:

● Peso de cerdas mediante cinta métrica, a los 100 días de gestación,

postparto y al momento del destete.

● Condición corporal a los 100 días de gestación, posparto y al

momento del destete.

● Tiempo de retorno al celo posdestete.

Definición de Términos Básicos

● Probióticos: Son suplementos que al ser añadidos en la alimentación

de los animales de producción mejoran el equilibrio microbiano intestinal.

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● Cerda de vientre: Hembra del cerdo que es mantenida para la

producción de lechones, que dependiendo de la duración de la lactación,

pueden producir 2 camadas al año.

● Lactante: Animal muy joven que depende de la extracción de leche de

la glándula mamaria como su principal alimento.

● Condición Corporal: Expresado como Índice de Condición Corporal o

Índice del Estado de Carnes, es una valoración sencilla, subjetiva, de los

contenidos de Grasa y músculo de un animal para juzgar su aptitud para la

reproducción o el sacrificio.

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CAPÍTULO III

METODOLOGÍA

Determinación de los métodos a utilizar

Se realizó una investigación de tipo Experimental (Observacional, Relacional,

Cuantitativo, Deductivo) debido a que no se modificaron las variables a

experimentación, pretendiendo estudiar dos tratamientos, relacionando su

causa y efecto entre dichas variables.

Diseño de la investigación

Se utilizó un diseño experimental completamente al azar, con dos

tratamientos: Testigo y Experimental, cada tratamiento con un número de 5

cerdas gestantes próximas al parto (entre 2 y 4 parto) con su respectiva

camada con 10 lechones cada una.

Tratamientos

En la investigación se utilizaron dos tratamientos: Testigo y Experimental,

con 5 cerdas gestantes cada uno y comprendió dos fases: Gestación y

Lactación.

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Cuadro 2. Tratamientos utilizados en la investigación.

TRATAMIENTO BALANCEADO

TESTIGO 2,5 kg.

EXPERIMENTAL 2,5 kg.

FASE GESTACIÓN

Saccharomyces cerevisiae

0

2 kg/T de alimento

TRATAMIENTO BALANCEADO

TESTIGO 5 kg.

EXPERIMENTAL 5 kg.

0

2 kg/T de alimento

FASE LACTACIÓN

Saccharomyces cerevisiae

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Características del Área de Estudio

Ubicación

La investigación se llevó a cabo en la granja Porcícola Mayorga,

perteneciente al señor Kléver Mayorga.

● País: Ecuador.

● Provincia: Tungurahua.

● Cantón: Píllaro.

● Área: 472 km2.

● Población: 38.357 habitantes

● Ubicación: S: 01º04´05´´ W: 78º33´52´´

● Altitud: 2730 msnm.

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Datos Ecológicos

● Su temperatura mínima es de 11 °C. y máxima de 18 °C.

● Su precipitación promedio anual es de: 700 mm.

● Sus afluentes principales son: Río Cutuchi.

● Humedad relativa promedio: 75 %

Materiales

Animales

Se utilizaron 10 cerdas TOPIG en gestación, próximas al parto (entre 2 y 4

parto) y su respectiva camada con un número de 10 lechones cada una.

De campo

● Instalaciones (jaulas de gestación y corrales de maternidad).

● Bebederos de tipo chupón.

● Comederos tipo plato.

● Comederos tipo tolva.

● Balanceado.

● Saccharomyces cerevisiae.

● Overol.

● Botas.

● Mandil.

● Guantes estériles.

● Frascos estériles para recolección de muestra de calostro.

● Muesqueadora.

● Balanza digital.

● Cinta Métrica.

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● Materiales de limpieza y desinfección.

● Cámara fotográfica.

● Materiales de oficina.

Métodos de campo

Adición de Saccharomyces cerevisiae

El Saccharomyces cerevisiae utilizado es comercial MAS LEVADURA

E100®, añadido a razón de 2 kg/T de alimento balanceado.

Utilización de balanceado

El balanceado utilizado se elaboró en la misma granja, Porcícola Mayorga.

Alimentación de los animales

En la fase de gestación, según el tratamiento, las cerdas fueron alimentadas

desde el día 100 hasta el día 110 de acuerdo al consumo establecido por la

granja Porcícola Mayorga, esto es, 2,5 kg de balanceado una sola vez al día

y agua a voluntad.

En la fase de lactación, según el tratamiento, las cerdas fueron alimentadas

desde el día 111 hasta el día del parto con 1 kg de balanceado y desde el día

del parto hasta el destete con 5 kg de balanceado dividido en 5 raciones

diarias y agua a voluntad.

Los lechones fueron alimentados ad libitum desde el día 7 hasta el día 21 de

lactancia, registrando diariamente el peso inicial y residual del balanceado

para el cálculo de su consumo, así mismo tuvieron a su disposición agua a

voluntad.

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Manejo de los animales

a) Los animales utilizados en esta investigación, de genética TOPIG,

fueron facilitados por la Granja Porcícola Mayorga, durante el estudio se

realizó una inspección diaria de los animales para identificar problemas

sanitarios que podrían alterar los resultados, así mismo el calendario de

vacunaciones establecido en la granja no fue modificado.

b) Las cerdas gestantes fueron elegidas al azar de un grupo que se

encontró dentro del rango de 2 y 4 partos.

c) Se realizó la limpieza y desinfección del área de gestación con

CID20® (base de Amonio Cuaternario, glutaraldehidos y formaldehidos, en

dosis de 2,5ml/lt agua).

d) Previo a la ubicación de las madres en las jaulas, fueron etiquetadas

según el tratamiento correspondiente.

e) Desde el día 100 de gestación las cerdas fueron alimentadas, según el

tratamiento y consumo establecido.

f) Se procedió el mismo día mediante una cinta métrica a registrar el

peso de la cerda y el valor de su PCC (1 – 5).

g) Se realizó la limpieza, desinfección, y etiquetado en el área de

maternidad para el traslado de las cerdas hacia el día 111 de gestación.

h) Se alimentó a las madres hasta el día del destete según el tratamiento

y el consumo establecido.

i) Al momento del parto realizó la toma de muestra de calostro para ser

llevada el mismo día al laboratorio ANIMALAB para su análisis de calidad y

así mismo se realizó mediante una cinta métrica el registro del peso de la

cerda y de su PCC (1 – 5).

j) Se igualaron las camadas en número de 10 lechones, esto se realizó

al azar.

k) Se identificó a los lechones mediante muescas y su pesaje se realizó

al nacimiento, 7, 14 y 21 días.

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l) Se registró el consumo diario de alimento de los lechones desde el día

7 hasta el día 21 de lactancia.

m) Durante los 21 días de lactancia se observó y se registró la presencia

de diarrea por camadas.

n) Se realizó mediante una cinta métrica el pesaje de las madres y se

registró el PCC (1 – 5) al momento del destete.

o) Se registró en las madres el tiempo de retorno al celo posdestete.

Análisis Estadístico

Se realizaron los siguientes cálculos:

Medidas de tendencia central por cada tratamiento, para Peso Inicial,

Peso Final, Ganancia de Peso, Consumo de Alimento de lechones,

presencia de diarrea por camadas, peso de cerdas, PCC de cerdas y

calidad de calostro.

Promedio (X)

Desviación estándar (S)

Error estándar (Sx)

Coeficiente de variación (CV)

Intervalo de confianza (Ic)

Para la determinación de diferencia significativa entre los grupos de

estudio.

T student (“t”)

Se realizó el análisis económico.

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CAPITULO IV

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Lechones

Peso

Cuadro 3. Peso de Lechones (gramos)

DÍAS TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

Nacimiento 1425,6 ± 248,6 1577,8 ± 359,0 D.S.

7 2459,2 ± 363,8 2741,8 ± 579,7 D.A.S.

14 3914,8 ± 632,3 4396,2 ± 811,9 D.A.S.

21 5510,1 ± 980,7 6340,4 ± 1081,1 D.A.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Discusión:

Las diferencias estadísticas encontradas fueron a favor del grupo

Experimental, existiendo al momento del nacimiento diferencia significativa

(P<0,05) y diferencia altamente significativa para la primera, segunda

semana y 21 días, tiempo en el que se realizó el destete (P<0,01).

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Los resultados obtenidos en diferentes estudios realizados son

contradictorios, así por ejemplo: Lázaro et al., (2005), obtuvo diferencia

significativa (P<0,05) en el peso al momento del nacimiento, sin embargo no

hubo significancia al momento del destete (P>0,05). En otros estudios al

utilizar suplementos secos de levadura no existieron diferencias tanto al

nacimiento (LeMieux, Naranjo, Bidner, & Southern, 2010) como al destete

(Jurgens, Rikabi, & Zimmerman, 1997; Mathew, Chattin, Robbins, & Golden,

1998).

Ganancia Diaria de Peso

Cuadro 4. Ganancia Diaria de Peso (gramos)

DÍAS TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

Nacimiento -7 147,6 ± 32,9 166,2 ± 50,7 D.S.

8 14 207,9 ± 47,7 236,3 ± 48,7 D.A.S.

15 - 21 227,9 ± 68,3 277,7 ± 59,6 D.A.S.

Ganancia Total 194,5 ± 42 226,7 ± 42,6 D.A.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Discusión:

Los lechones del grupo Experimental obtuvieron una Ganancia Total de Peso

desde el nacimiento hacia el destete (21 días) de 226,7 g mientras que el

grupo Testigo fue de 194,5 g, resultando la diferencia estadística alta

(P<0,01); misma diferencia se obtuvo en la segunda y tercera semana, sin

embargo matemáticamente, en esta última fue cuando se obtuvo una mayor

ganancia. En la primera semana se presentó diferencia significativa (P<0,05)

entre tratamientos.

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Shen et al., (2011) si evidenció diferencia en ganancia de peso, en otros

estudios no se encontraron diferencias hacia el momento del destete (Lázaro

D., Carcelén C., Torres A., & Ara G., 2005), no obstante si existieron

diferencias significativas en ganancia de peso posdestete (Jurgens et al.,

1997; Mathew et al., 1998; Shen et al., 2009)

Consumo de alimento de lechones por camada

Cuadro 5. Consumo de Alimento de Lechones por Camada (gramos)

DÍAS TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

7 21 350 ± 59,1 446 ± 87,6 D.N.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Discusión:

No se observó diferencia estadística (P>0,05) en el consumo de alimento, a

pesar que matemáticamente si existió un mayor consumo por parte del grupo

Experimental.

Mathew et al., (1998) en su estudio realizado si obtuvo diferencia (P<0,05) a

favor del grupo alimentado con Saccharomyces cerevisiae, hay que resaltar

que los lechones fueron administrados el probiótico directamente junto con el

balanceado.

El crecimiento del lechón desde el nacimiento hasta el destete se vería

influenciado notablemente por tres variables: peso y desarrollo fisiológico al

nacer, la cantidad y composición de la leche que obtiene de su madre, y la

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29

cantidad y calidad de los alimentos suplementarios que consumieran (Lucas

& Lodge, 1967).

Presencia de diarreas en lechones en lactancia por camada

Cuadro 6. Presencia de Diarrea en Lechones

DÍAS TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

Nacimiento - destete 4,8 ± 3,7 2,8 ± 4,7 D.N.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Discusión:

No se presentó diferencia estadística (P>0,05) entre tratamientos, sin

embargo si existió una diferencia numérica a favor del grupo Experimental.

Lázaro et al. (2005), obtuvieron diferencia significativa (P<0,05) en su

ensayo.

En un estudio realizado, al inocular oralmente a lechones con una cepa de

Salmonella entérica serovariedad Typhimurium DT104 y al ser administrado

un producto de la fermentación de Saccharomyces cerevisiae a la dieta se

demostró un incremento en la eliminación de la bacteria en heces (P<0,10),

igualmente, el contenido de la microbiota intestinal sufrió un cambio,

aumentando (P<0,05) bacteroides benéficos y Lactobacillus (Price et al.,

2010).

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30

Mortalidad de lechones

No se presentaron muertes en ningún tratamiento durante los 21 días del

estudio, lo que se contrapone al ensayo realizado por Lázaro et al. (2005)

donde no existió una diferencia significativa (P>0,05) entre tratamientos, pero

la mortalidad registrada fue de 3,6 % y 2,5 % entre problemas de diarrea y

desnutrición, a favor del grupo Probiótico.

Condición Corporal y Peso de Cerda

Cuadro 7. Condición Corporal Cerdas (Valoración: 1 - 5)

DÍAS TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

100 d. Gestación 2,9 ± 0,1 3,1 ± 0,3 D.N.S.

Parto 2,9 ± 0,1 3,1 ± 0,3 D.N.S.

Destete 2,4 ± 0,5 3,0 ± 0,1 D.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Cuadro 8. Peso de Cerdas (kilogramos)

DÍAS TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

100 d. Gestación 186,2 ± 3,3 189,0 ± 9,0 D.N.S.

Parto 186,2 ± 3,3 189,0 ± 9,0 D.N.S.

Destete 183,8 ± 3,3 189,4 ± 5,5 D.N.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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31

Discusión:

No se obtuvieron diferencias estadísticamente significativas para el peso y

condición corporal en cerdas a los 100 días de gestación y al momento del

parto (P>0,05), en el momento del destete si existió significancia para la

condición corporal (P<0,05) pero no así para el peso (P>0,05) a favor del

grupo.

En estudios anteriores no se registraron diferencias estadísticas para peso

de cerdas preparto, parto y destete (Jurgens et al., 1997; Mathew et al.,

1998; Shen, Carroll, Yoon, Mateo, & Kim, 2011).

Retorno al celo posdestete

Cuadro 9. Registro días de retorno al celo posdestete

MADRE

DÍA POSTDESTETE

2 3 4 5

GR

UP

O

TESTIGO

T1 X

T2 X

T3 X

T4 X

T5 X

EXPERIMENTAL

Ex. 1 X

Ex. 2 X

Ex. 3 X

Ex. 4 X

Ex. 5 X

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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32

Discusión:

El tiempo del retorno al celo posdestete se registró entre el cuarto y quinto

día para ambos tratamientos y en igual número de animales, estos valores se

encuentran dentro de los observados en la granja sin presentar modificación.

Calidad de calostro

Cuadro 10. Análisis de Calostro

CONCENTRACIÓN UNIDAD TESTIGO EXPERIMENTAL "t"

Inmunoglobulina A g/dL 2,2 ± 1,2 3,7 ± 4,7 D.N.S.

Inmunoglobulina G g/L 7,3 ± 1,7 16,5 ± 1,1 D.A.S.

Densidad g/ml 1,2 ± 0,2 4,3 ± 3,1 D.N.S.

Grasa % 4,5 ± 1,3 6,0 ± 2,8 D.N.S.

Proteína % 8,4 ± 0,6 6,7 ± 0,9 D.A.S.

Lactosa % 11,6 ± 0,8 8,7 ± 1,0 D.A.S.

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Discusión:

El calostro de las cerdas alimentadas con Saccharomyces cerevisiae fue rico

en Gammaglobulina especialmente la IgG, existiendo una diferencia

significativa alta (P<0,01), semejante a lo obtenido (P<0,06) en el estudio

realizado por Jurgens et al., (1997), no así lo que mostraron Shen et al.,

(2011) donde no existió una diferencia (P>0,10).

No existió diferencia significativa para valores de IgA (P>0,05), sin embargo

la cantidad fue mayor a favor del grupo Experimental. Jurgens et al. (1997)

citando a Ammann y Stiehm, (1966) manifiesta que una cantidad alta de IgG

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33

en leche sugiere un incremento similar de IgA la cual no se absorbe después

de la ingestión de leche pero que actúa localmente en el tracto intestinal y

confiere protección contra infecciones a nivel de la superficie mucosa

intestinal.

Así mismo, no existió diferencia (P>0,05) entre tratamientos para Densidad y

Grasa, a pesar que las cantidades favorecieron al grupo Experimental,

mismo resultado obtuvo Shen et al., (2011) donde no existieron diferencias

(P>0,10).

Los valores para Lactosa y Proteína registraron una significación alta

(P<0,05) a favor del grupo Testigo, en estudios anteriores se demuestra

resultados diversos con y sin significancia (Jurgens et al., 1997; Shen et al.,

2011).

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34

Análisis Económico

Cuadro 11. Costo de Alimentación de Cerdas

Concepto Consumo de Alimento (Kg)

Costo Unitario Kg

($)

Costo Total ($)

Testigo

Balanceado Gestación

125,00 0,54 67,50

Balanceado Lactación

560,00 0,59 330,40

total 397,90

Experimental

Balanceado Gestación

125,00 0,54 67,50

Saccharomyces cerevisiae

0,25 6,75 1,69

total 69,19

Balanceado Lactación

560,00 0,59 330,40

Saccharomyces cerevisiae

1,12 6,75 7,56

total 337,96

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Cuadro 12. Costos de Alimentación de Lechones

Concepto

Consumo de Alimento (kg)

Costo Kg de alimento ($)

Costo Total ($)

Testigo

Balanceado Preinicial

1,750 3,80 6,65

Experimental Balanceado Preinicial

2,230 3,80 8,47

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Cuadro 13. Costo Kg de Lechón al Destete en Base a Alimentación

Concepto Costos de

Balanceado ($)

Costo por

Lechón ($)

Peso Promedio Lechón

(Kg)

Costo Kg Producido

($)

Testigo

Madre (100 d. - destete) 404,55 8,09 5,51 1,47

Lechón (7 - 14 días)

Experimental Madre (100 d. - destete)

415,62 8,31 6,34 1,31 Lechón (7 - 14 días)

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Discusión:

El costo de kilogramo de lechón producido fue de $ 1,47 para el Grupo

Testigo y de $ 1,31 para el Grupo Experimental, resultando una diferencia a

su favor de $ 0,16 centavos; el costo por lechón fue mayor para el Grupo

Experimental con $ 8,31 y para el Grupo Testigo de $ 8,09.

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36

CAPITULO V

CONCLUSIONES

De la investigación realizada se obtuvieron las siguientes conclusiones:

La suplementación con Saccharomyces cerevisiae a la dieta de cerdas

a partir del día 100 de gestación y durante la lactación presentó un

efecto positivo sobre los parámetros productivos de los lechones en

lactación, con un peso al destete de 6340,4 g para el Grupo

Experimental y 5510,1 g para el Grupo Testigo.

El uso de Saccharomyces cerevisiae mejoró la Ganancia Diaria de

Peso durante la segunda y tercera semana de lactación, así como la

Ganancia Total de Peso con lo que al momento del destete la

diferencia de peso en los lechones fue notable; se obtuvo 226,7 g para

el Grupo Experimental y 194,5 g para el Grupo Testigo; debido

también al incremento en el Consumo de Alimento por parte de los

lechones así 446 g para el Grupo Experimental y 350 g para el Grupo

Testigo.

La presencia de problemas gastrointestinales, diarrea, disminuyó,

presentándose aproximadamente un 58 % menos que el tratamiento

control (24 animales presentaron diarrea en el grupo control y 14

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37

animales en el grupo experimental) lo que contribuyó también a

obtener unos mejores pesos al destete por camada.

El consumo de Saccharomyces cerevisiae por parte de cerdas en

gestación y lactación mantuvo la condición corporal, debido a que los

lechones exigieron mejor producción láctea por parte de la cerda en el

periodo de lactación, pero no alteró el tiempo en retorno al celo

posdestete.

La calidad de calostro de las cerdas alimentadas con Saccharomyces

cerevisiae fue superior, encontrándose un incremento en la cantidad

de Inmunoglobulinas: IgG e IgA, importantes para la transferencia de

inmunidad a la cría.

La producción láctea de las cerdas suplementadas con

Saccharomyces cerevisiae se incrementó, lo cual indirectamente es

cuantificable al relacionar los pesos de los lechones.

El costo de producción del kilogramo de lechón al momento del

destete se ve favorecido al suplementar la dieta de las cerdas en

gestación y lactación, se obtuvo $ 1,47 para el Grupo Testigo y de $

1,31 para el Grupo Experimental, resultando una diferencia a su favor

de $ 0,16 centavos, aun existiendo un incremento en el consumo de

alimento por parte de la cría, reflejando un mejor rendimiento y una

mayor rentabilidad para el Grupo Experimental.

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38

RECOMENDACIONES

Del presente estudio se recomienda lo siguiente:

Adicionar Saccharomyces cerevisiae a razón de 2 kg/T de alimento en

la dieta de cerdas al final de la gestación y durante la lactación para

obtener mejores pesos de lechones al momento del destete, teniendo

en cuenta que mientras más pesados sean los cerdos destetados

mayor será su posterior crecimiento.

Utilizar Saccharomyces cerevisiae como una alternativa a los

antibióticos empleados como promotores de crecimiento y profilácticos

para el control de problemas gastroentéricos en animales lactantes,

para evitar así resistencias a los antimicrobianos tanto en personas

como en animales.

Expandir el campo de investigación, utilizando diferentes dosis para

ser administradas a cerdas en distintos estadios de gestación, cerdas

primerizas y de diferentes líneas genéticas; así también la

administración del probiótico directamente a los lechones.

Suplementar con Saccharomyces cerevisiae la dieta de cerdas en

gestación y lactación para obtener una mejor rentabilidad en costos de

producción, alcanzando mayores pesos de lechones al destete y al

disminuir el uso de antibióticos profilácticos y terapéuticos.

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ANEXOS

Tabla 1. Medidas de tendencia central para peso al nacimiento de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 71280,000 78890,000

Promedio 1425,600 1577,800

Desv. Estándar 248,671 359,003

Error Estándar 35,167 50,771

Coef. de Variación % 17,443 22,753

Intervalo de Confianza 1356,67 <u< 1494,53 1478,29 <u< 1677,31

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 2. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso al

nacimiento de lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Peso Inicial -2,464 D.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 3. Medidas de tendencia central para peso a los 7 días de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 122960,000 137090,000

Promedio 2459,200 2741,800

Desv. Estándar 363,895 579,788

Error Estándar 51,463 81,994

Coef. de Variación % 14,797 21,146

Intervalo de Confianza 2358,34 <u< 2560,06 2581,09 <u< 2902,51

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 4. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso a los 7 días

de lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Peso 7 días -2,919 D.A.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 5. Medidas de tendencia central para peso a los 14 días de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 195740,000 219810,000

Promedio 3914,800 4396,200

Desv. Estándar 632,340 811,916

Error Estándar 89,426 114,822

Coef. de Variación % 16,153 18,469

Intervalo de Confianza 3739,53 <u< 4090,07 4171,15 <u< 4621,25

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 6. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso a los 14 días de

lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Peso 14 días -3,308 D.A.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 7. Medidas de tendencia central para peso al destete de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 275507,000 317022,500

Promedio 5510,140 6340,450

Desv. Estándar 980,736 1081,141

Error Estándar 138,697 152,896

Coef. de Variación % 17,799 17,051

Intervalo de Confianza 5238,30 <u< 5781,98 6040,78 <u< 6640,12

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 8. "t" Student para determinar diferencia significativa en peso al destete de

lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Peso destete -4,022 D.A.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 9. Medidas de tendencia central para ganancia diaria de peso

nacimiento - 7 días de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 7382,857 8314,286

Promedio 147,657 166,286

Desv. Estándar 32,938 50,791

Error Estándar 4,658 7,183

Coef. de Variación % 22,307 30,545

Intervalo de Confianza 138,53 <u< 156,79 152,21 <u< 180,36

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 10. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia diaria de

peso nacimiento - 7 días de lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Ganancia peso -2,176 D.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 11. Medidas de tendencia central para ganancia diaria de peso

8 - 14 días de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 10397,143 11817,143

Promedio 207,943 236,343

Desv. Estándar 47,709 48,799

Error Estándar 6,747 6,901

Coef. de Variación % 22,943 20,648

Intervalo de Confianza 194,72 <u< 221,17 222,82 <u< 249,87

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 12. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia diaria de

peso 8 - 14 de lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Ganancia peso -2,943 D.A.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 13. Medidas de tendencia central para ganancia diaria de peso

15 días - destete de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 11395,286 13887,500

Promedio 227,906 277,750

Desv. Estándar 68,307 59,627

Error Estándar 9,660 8,433

Coef. de Variación % 29,972 21,468

Intervalo de Confianza 208,97 <u< 246,84 261,22 <u< 294,28

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 14. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia diaria de

peso 15 días - destete de lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Ganancia peso -3,887 D.A.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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49

Tabla 15. Medidas de tendencia central para ganancia total de peso de lechones

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 50 50

Sumatoria 9725,095 11339,643

Promedio 194,502 226,793

Desv. Estándar 42,004 42,684

Error Estándar 5,940 6,036

Coef. de Variación % 21,595 18,821

Intervalo de Confianza 182,86 <u< 206,14 214,96 <u< 238,62

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 16. "t" Student para determinar diferencia significativa en ganancia total de peso

de lechones

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Ganancia peso -4,692 D.A.S. 2,617 1,980

Grados libertad 98

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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50

Tabla 17. Medidas de tendencia central para consumo de alimento de lechones por

camada

PESO (g).

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 1750,000 2230,000

Promedio 350,000 446,000

Desv. Estándar 59,161 87,636

Error Estándar 26,458 39,192

Coef. de Variación % 16,903 19,649

Intervalo de Confianza 298,14 <u< 401,86 369,19 <u< 522,81

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 18. "t" Student para determinar diferencia significativa en consumo de alimento

de lechones por camada

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Consumo Alimento -2,030 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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51

Tabla 19. Medidas de tendencia central para presencia de diarrea en lechones en

lactancia por camada

CAMADA

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 24 14

Promedio 4,800 2,800

Desv. Estándar 3,701 4,764

Error Estándar 1,655 2,131

Coef. de Variación % 77,111 170,159

Intervalo de Confianza 1,56 <u< 8 1,4 <u< 7

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 20. "t" Student para determinar diferencia significativa en presencia de diarrea

en lechones en lactancia por camada

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Presencia de diarreas 0,741 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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52

Tabla 21. Medidas de tendencia central para condición corporal (1 - 5) de cerdas a

los 100 días de gestación

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 14,750 15,750

Promedio 2,950 3,150

Desv. Estándar 0,112 0,335

Error Estándar 0,050 0,150

Coef. de Variación % 3,790 10,648

Intervalo de Confianza 2,852 <u< 3,048 2,856 <u< 3,444

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 22. "t" Student para determinar diferencia significativa en condición corporal

(1 - 5) de cerdas a los 100 días de gestación

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Condición corporal preparto -1,265 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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53

Tabla 23. Medidas de tendencia central para condición corporal (1 - 5) de cerdas al

momento del parto

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 14,750 15,750

Promedio 2,950 3,150

Desv. Estándar 0,112 0,335

Error Estándar 0,050 0,150

Coef. de Variación % 3,790 10,648

Intervalo de Confianza 2,852 <u< 3,048 2,856 <u< 3,444

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 24. "t" Student para determinar diferencia significativa en condición corporal

(1 - 5) de cerdas al momento del parto

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Condición corporal parto -1,265 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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54

Tabla 25. Medidas de tendencia central para condición corporal (1 - 5) de cerdas al

momento del destete

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 9,750 12,250

Promedio 2,438 3,063

Desv. Estándar 0,515 0,125

Error Estándar 0,230 0,056

Coef. de Variación % 21,144 4,082

Intervalo de Confianza 1,986 <u< 2,889 2,953 <u< 3,172

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 26. "t" Student para determinar diferencia significativa en condición corporal

(1 - 5) de cerdas al momento del destete

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Condición corporal destete -2,635 D.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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55

Tabla 27. Medidas de tendencia central para concentración de IgG en calostro

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 36,500 82,780

Promedio 7,300 16,556

Desv. Estándar 1,764 1,163

Error Estándar 0,789 0,520

Coef. de Variación % 24,169 7,022

Intervalo de Confianza 5,753 <u< 8,847 15,537 <u< 17,575

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 28. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración de IgG

en calostro

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Concentración IgG en calostro -9,795 D.A.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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56

Tabla 29. Medidas de tendencia central para concentración de IgA en calostro

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 11,480 18,780

Promedio 2,296 3,756

Desv. Estándar 1,263 4,753

Error Estándar 0,565 2,126

Coef. de Variación % 54,993 126,551

Intervalo de Confianza 1,189 <u< 3,403 0,410 <u< 7,922

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 30. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración de IgA

en calostro

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Concentración IgA en calostro -0,664 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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57

Tabla 31. Medidas de tendencia central para densidad de calostro

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 6,094 21,950

Promedio 1,219 4,390

Desv. Estándar 0,221 3,113

Error Estándar 0,099 1,392

Coef. de Variación % 18,102 70,900

Intervalo de Confianza 1,03 <u< 1,41 1,66 <u< 7,12

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 32. "t" Student para determinar diferencia significativa en densidad de calostro

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Densidad calostro -2,273 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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58

Tabla 33. Medidas de tendencia central para concentración de grasa en calostro

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 22,950 30,100

Promedio 4,590 6,020

Desv. Estándar 1,386 2,839

Error Estándar 0,620 1,270

Coef. de Variación % 30,191 47,165

Intervalo de Confianza 3,38 <u< 5,80 3,53 <u< 8,51

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 34. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración de

grasa en calostro

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Concentración de grasa en calostro -1,012 D.N.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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59

Tabla 35. Medidas de tendencia central para concentración de lactosa en calostro

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 58,000 43,920

Promedio 11,600 8,784

Desv. Estándar 0,834 1,045

Error Estándar 0,373 0,467

Coef. de Variación % 7,187 11,893

Intervalo de Confianza 10,87 <u< 12,33 7,87 <u< 9,70

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 36. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración de

lactosa en calostro

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Concentración lactosa en calostro 4,711 D.A.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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Tabla 37. Medidas de tendencia central para concentración de proteína en calostro

CERDAS

TESTIGO EXPERIMENTAL

N 5 5

Sumatoria 42,380 33,660

Promedio 8,476 6,732

Desv. Estándar 0,633 0,969

Error Estándar 0,283 0,433

Coef. de Variación % 7,472 14,393

Intervalo de Confianza 7,92 <u< 9,03 5,88 <u< 7,58

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

Tabla 38. "t" Student para determinar diferencia significativa en concentración de

proteína en calostro

Parámetro "t" calculada Significación "t" (0,01) "t" (0,05)

Concentración proteína en calostro 3,369 D.A.S. 3,355 2,306

Grados libertad 8

Fuente: Directa

Elaboración: El Autor

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