Parasitología - Diagnósticos en Perros y gatos
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos
Clinical Handbook Series
Nestlé Purina PetCare Company Checkerboard Square
St. Louis,Missouri
Parasitología:Diagnósticos en perros y gatosDwight D. Bowman, MS,PhD
Elizabeth A.Fogarty, BA
Clinical Handbook Series
Publicado por The Gloyd Group. Inc. Wilmington, Delaware©2003 por Nestlé Purina PetCare Company
Todos los derechos reservados.Impreso en Argentina
Nestlé Purina PetCare Company:Checkerboard Square. St. Louis, Missouri, 63188Primera impresión 2003
Este libro está protegido por las leyes de propiedad intelectual.
ISBN 0-9678005-9-5
Parasitología:Diagnósticos en perros y gatos
Dwight D. Bowman, MS,PhDElizabeth A.Fogarty, BA
Clinical Handbook Series
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Contenido
Introducción 7
Parte I
Capítulo 1: Análisis de materia fecal 11Frotis fecal directo 11Flotación con sulfato de zinc 12Métodos de flotación estacionaria 15Flotación centrífuga de azúcar 17Análisis de sedimentación 19Aparato de Baermann 21Pruebas de antígenos fecales 22
Métodos de cultivo de materia fecal 22
Capítulo 2: Muestras de orina 25
Capítulo 3: Muestras de sangre 27Preparación húmeda para Microfilarias y Tripanosomas 27Técnica de Knott 27Técnicas de membrana 29Equipos para pruebas de antígenos 29Frotis de sangre teñida 29
Capítulo 4: Muestras de tejido 31Raspaje de piel 31Frotis de piel y aspirados de médula ósea 31
Parte II
Capítulo 5: Parásitos detectados en las heces — Estudio de casos 35
Capítulo 6: Parásitos detectados en la orina — Estudio de un caso 53
Capítulo 7: Parásitos detectados en la sangre — Estudio de casos 55
Capítulo 8: Parásitos detectados en muestras de tejido— Estudio de casos 63
Parte III
Glosario 75Lecturas sugeridas 79Índice de figuras 81
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Introducción
Los veterinarios en su consultorio hacenexámenes de rutina de muestras de ma-
teria fecal, orina, sangre y tejidos paradetectar parásitos y diagnosticar parasi-tosis en perros y gatos. Sin embargo, nohay un solo método que sea apropiadopara todos los tipos de parásitos. Por ejemplo, si bien un frotis fecal directopuede ser el mejor método para detec-tar los trofozoitos de ciertos flagelados,con frecuencia este método no tiene lasensibilidad suficiente para detectar el
extraño huevo de helminto que puedeestar presente. Una muestra de sedimen-to de orina teñido probablemente nosea la mejor forma de detectar los hue-
vos de distintos helmintos que puedenestar presentes en el tracto urinario por-que existen altas posibilidades de quelos huevos no se adhieran al portaobje-tos durante el teñido. De manera simi-lar, el teñido de portaobjetos con mate-
rial de lavado traqueal puede no ser lamejor forma de determinar si hay larvasde Metastrongylidae o huevos de Parago-nimus en la muestra, mientras que elexamen directo del sedimento es másprobable que de resultados positivos.Cuando se conservan las muestras, ladensidad flotante de los huevos con fre-cuencia cambia y, por lo tanto, la mismaprueba que funciona bien en heces fres-
cas puede resultar inapropiada en mate-ria fecal conservada.
Un diagnóstico parasitológico es de gran
ayuda porque por lo general significa
que se puede implementar un tratamien-
to efectivo. Existen productos comercia-les para el tratamiento de la mayoría delas parasitosis y la parasitología es, en-tonces, uno de los campos en el cual las
curas son por lo general directas y sim-ples. Hay excepciones,como por ejem-plo las infecciones por Cytauxzoon,
Cryptosporidium o larvas de Mesoces-toides, pero, la mayoría de las veces, las
parasitosis pueden desaparecer con rela-tiva facilidad. El diagnóstico correctopermite administrar a tiempo un pro-ducto que curará a la mascota de su in-fección.Existen dos tipos de exámenes parasito-lógicos: aquellos que se realizan comoparte de un examen físico de rutina y aquellos que se realizan porque se sos-pecha de un agente o tipo de agente es-
pecífico. Cuando se realiza un análisis demateria fecal como parte de un estudiofísico de rutina, se elige una técnica quede resultados uniformes y confiables pa-ra la mayoría de los parásitos más comu-nes. Se utilizan técnicas especialescuando existe la necesidad de buscar una causa subyacente de una enferme-dad inesperada o para verificar una sos-pecha clínica en base a un examen clíni-
co u otros métodos diagnósticos comolas radiografías. Los métodos especiali-zados, como por ejemplo los cultivos desangre y cultivos de piel o las biopsiasde médula ósea para detectar infeccio-nes causadas por flagelados, a veces losutilizan los laboratorios especiales. Estaspruebas no se tratarán en detalle en estemanual porque se asume que la mayoríade dichas muestras serán entregadas
después de consultar con el laboratorioque realiza la prueba.
El manual "Parasitología: Diagnósticos
en perros y gatos" está dividido en trespartes. La Parte I presenta informaciónbásica sobre los diversos métodos dispo-nibles para los veterinarios clínicos y la-boratorios para el examen de muestrasde materia fecal, orina, sangre y tejido
para la detección de parásitos. Se descri-ben los procedimientos paso por paso,incluso los equipos y reactivos necesa-
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rios, para cada una de las técnicas quegeneralmente se utilizan en veterinaria.
Se incluye además, una explicación ge-neral de los métodos más especializadosque usualmente usan los laboratorios dediagnóstico centralizados, como se men-cionó anteriormente. En la Parte II, sepresentan casos de estudio que demues-tran el uso de las técnicas descriptas enla Parte I en casos clínicos reales.Cadaestudio de un caso describe las marcas,la historia clínica, el examen físico, la
evaluación inicial y el supuesto diagnós-tico y pasa a tratar el plan de diagnósti-co y el resultado. En la Parte III se pro-porciona material de referencia, inclusoun glosario de términos utilizados en pa-rasitología, lecturas sugeridas para mayor información e índices de figuras y te-mas.
Este manual ha sido diseñado para pre-
sentar los diversos métodos que se usan y pueden usarse en el laboratorio clíni-co. No pretende ser una exhaustivacompilación de todas la técnicas posi-bles. Las técnicas presentadas se descri-ben con detalles suficientes para permi-tir realizarlas en la mayoría de los labora-torios. La utilidad de muchas de las téc-nicas se ilustra con una serie de histo-rias clínicas que presentan situaciones
en las cuales las diferentes metodologíaspodrían ayudar en un diagnóstico. Algu-nas de las técnicas presentadas no seránnecesariamente el método preferido por todos los laboratorios o todos los profe-sores de parasitología. Gran parte de lascontroversias entre los parasitólogos so-bre las diferente técnicas en realidad pa-recen remitirse a una diferencia en lapreferencia personal y los parásitos de
rutina que un parasitólogo o un técnicode laboratorio podría buscar en unacierta área geográfica. Este manual no
es una guía ilustrada de todos los parási-tos que pueden aparecer en las heces, la
sangre, la orina o los tejidos de los gatos y perros. Para estos detalles, se remite allector a otras fuentes (ver Lecturas Suge-ridas en la Parte III).
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Parte I
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DESCRIPCIÓN GENERAL
El análisis de la materia fecal en veterinaria sepuede realizar con distintos objetivos. Si el análisis de
materia fecal es parte del control de rutina de la mas-
cota, las pruebas adecuadas para lograr este objetivo
son:
• Frotis fecal directo
• Flotación con sulfato de zinc
• Métodos de flotación estacionaria
• Flotación centrífuga de azúcar
Otros métodos, incluso los análisis de sedimenta-
ción y el aparato de Baermann se pueden utilizar
cuando el análisis de materia fecal se realiza para diag-
nosticar una presunta parasitosis de cierto tipo.
Los diferentes análisis funcionan mejor según cada
situación, independientemente de qué tan bien pudie-
ra funcionar la prueba para el diagnóstico de una in-
fección.Algunos laboratorios prefieren los métodos
estacionarios para los análisis de rutina. Un veterina-
rio, amigo de los autores, realiza un análisis estaciona-
rio de materia fecal al comenzar el exámen clínico de
la mascota ya sea con una muestra suministrada por
el dueño o tomada durante el exámen. La prepara-
ción lleva sólo unos segundos y cuando el análisis es-
tá terminado, en aproximadamente 10 o 15 minutos,
el veterinario está listo para examinar la muestra con
el microscopio delante del dueño. Este veterinariosiente que este método compromete al dueño con el
tratamiento recomendado para la mascota. Conoce
bien su parasitología y reconoce que es posible que
pierda algunos parásitos como parte de su diagnósti-
co: sin embargo, siente que se detectarán parásitos de
rutina como helmintos y coccidios que podrían estar
presentes y no se preocupa por otros parásitos menos
comunes que podrían pasarse por alto en un perro o
gato sano. Otros veterinarios no planean tener los re-
sultados del análisis terminado en el momento de la
visita de la mascota; en cambio, llaman al cliente des-
pués para info rmarle los resultados de la pru e b a . En es-
tos casos, se pueden usar otros métodos analíticos o elp e rsonal técnico puede usar va rios análisis dife re n t e s .
Muestras frescas versus muestras fijadasEn medicina veterinaria, las muestras de materia
fecal frescas, más que las muestras fijadas,por lo gene-
ral se procesan para exámenes de rutina. En cambio,
en medicina de seres humanos, el peligro de infec-
ción del personal de laboratorio con los agentes pre-
sentes en las muestras ha llevado a fijar la mayoría de
las muestras antes de presentarlas. Los agentes infec-
ciosos, como por ejemplo la hepatitis A y otros pató-
genos como la ameba humana, Entamoeba histolytica,
por lo general no están presentes en las muestras pro-
venientes de caninos y felinos;por esta razón, en la
medicina veterinaria, aún se procesan las muestras sin
el fijador inicial. Una ventaja del exámen de prepara-
ciones frescas es que los organismos viviente con fre-
cuencia se pueden visualizar por su movimiento. Ladesventaja es que sin fijador, algunos protozoos se
pueden descomponer si no se examina la muestra rá-
pidamente apenas se la recibe. Los huevos y quistes
en las muestras de materia fecal fijadas con formol no
tienen las mismas características de flotabilidad que
cuando no están fijadas con formol. Así,el uso de mé-
todos de sedimentación es mucho más común en los
laboratorios de medicina de seres humanos que en
los laboratorios veterinarios.
Los métodos de sedimentación, como se los des-
cribe en los textos de parasitología en seres humanos
y luego en este capítulo, son métodos útiles pero tien-
den a requerir más tiempo para el exámen de la
muestra. Por lo tanto,para diagnósticos de rutina con
frecuencia se prefieren los métodos de flotación utili-
zando heces frescas.
Pruebas especializadasEn la actualidad existen métodos que detectan los
antígenos de diferentes parásitos en las heces. Los dos
parásitos que se detectan más comúnmente con este
método son Giardia y Cryptosporidium. Estas prue-
bas han sido desarrolladas para infecciones en seres
humanos y todavía no están comercializadas en forma
directa para muestras de materia fecal de caninos y fe-linos. Sin embargo, varios laboratorios de diagnóstico
de animales usan estas pruebas de rutina que parecen
proporcionar resultados adecuados según la verifica-
ción interna de los laboratorios que surge de la com-
paración con métodos de diagnóstico más estándares.
Estas pruebas son relativamente costosas y con fre-
cuencia requieren la adquisición de material suficien-
te para analizar muchas muestras.Por estas razones,
con frecuencia se realizan en laboratorios de diagnós-
tico centralizados. De manera similar,los métodos de
rotulación de patógenos con anticuerpos fluorescen-
tes también los usan por lo general los laboratorios
centralizados que tienen microscopios de fluorescen-cia. Al final de este capítulo se explican en detalle las
pruebas de antígenos fecales.
FROTIS FECAL DIRECTOEl método más rápido para la detección de parasi-
tosis es el frotis fecal salino directo.El término frotis
en realidad no es un nombre muy correcto ya que no
se hacen frotis de las heces. En cambio, una pequeña
cantidad de heces,aproximadamente la que se puede
tomar con el extremo de un aplicador de madera,ape-
nas se humedece en una gota de solución salina en
un portaobjetos (Figura 1.1). En el caso de heces de
perro y gato, hay altas probabilidades de que hayagrandes trozos de granos del alimento seco que hayan
sido ingeridos por la mascota; estos trozos pueden re-
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Capítulo 1: Análisis de materia fecal
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tirarse con el extremo del aplicador. Las heces de pe-
rros y gatos con frecuencia absorben la humedad de
la gota que se colocó en el portaobjetos,por lo tanto
puede ser necesario agregar un poco más de solución
salina. Colocar la gota al aplicador y dejar que se des-
lice sobre el portaobjetos con las heces es una de lasmejores formas de hacerlo.
Por lo general, no hay motivo para hacer estas pre-
paraciones con agua. El objetivo del frotis directo es
visualizar trofozoitos vivos y estas etapas habitualmen-
te se lisarán si la preparación se hace con agua en lu-
gar de solución salina.Por supuesto que si el agua es
el único medio disponible, puede permitirle al clínico
dar un vistazo rápido y detectar altas concentraciones
de huevos o quistes que pueden detectarse en mues-
tras con agua.
Una vez que se ha desparramado el material en el
portaobjetos hasta formar una preparación homogé-
nea y que se han retirado los trozos grandes, se puedecolocar un cubreobjetos sobre la preparación (Figura
1.2). Primero, se debe escanear el portaobjetos con
un objetivo de 10X o 20X (con práctica, todos los pa-
rásitos de los perros y gatos se pueden visualizar con
un objetivo de 10X). Luego, se pueden examinar los
objetos de interés más de cerca con un alto objetivo
seco (40X). El uso de una lente de inmersión en acei-
te sobre preparaciones húmedas por lo general no re-
sulta satisfactorio porque la preparación es demasiado
espesa o porque el material que se encuentra debajo
del portaobjetos se mueve por la presión de la lente
sobre la superficie del cubreobjetos. La observacióncon inmersión en aceite es una posibilidad,pero sólo
si se sella primero el portaobjetos con esmalte para
uñas o parafina derretida. En parasitología humana, las
preparaciones con frecuencia se tiñen con yodo, lo
cual hace que los núcleos de los trofozoitos sean más
fáciles de visualizar ya que los gránulos de glucógeno
se tiñen en algunos de los quistes y trofozoitos. En
medicina veterinaria, la mayoría de las especies de
amebas y otros parásitos protozoos importantes en
medicina para seres humanos, por lo general no se
observan, por lo tanto el uso de yodo no es necesario
y tampoco resulta útil.
FLOTACIÓN CON SULFATO DE ZINCUno de los mejores medios para observar los quis-
tes de Giardia y diversos huevos de parásitos es con
la flotación con sulfato de zinc.Esta técnica tiene la
ventaja de ser rápida y relativamente fácil de realizar.
Como actualmente se consigue solución de sulfato de
zinc ya preparada,la tarea se hace menos onerosa
porque no hay que trabajar en la preparación de este
reactivo. Una alternativa poco costosa es usar sulfato
de magnesio (sales de Epsom) en lugar de sulfato de
zinc. Las únicas desventajas con las sales de Epsom
son que la solución es un poco más viscosa y que
tiende a cristalizarse un poco más rápido durante laobservación (Figura 1.3).
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Figura 1.1. Los materiales necesarios para realizar un frotis di-recto son: cubreobjetos de 22 x 22 mm (o de 18 x 18 mm), unportaobjetos para microscopio, un aplicador, heces y soluciónsalina. Siempre es mejor hacer la preparación con solución sa-lina en lugar de agua, de modo que los trofozoitos vivos perma-
necerán viables y móviles.
Figura 1.2. Al preparar el frotis directo, es importante colocaruna pequeña cantidad de solución salina en el portaobjetos yluego agregar una pequeña cantidad de heces, más o menosdel tamaño del extremo del aplicador, aproximadamente 2mm2. Luego se mezclan las heces con la solución salina y selas desparrama hasta formar una mezcla relativamente clara(A). Si hay sólidos presentes, en especial común cuando se
administra a los animales alimento seco, se pueden apart a rcon cuidado los sólidos a un costado de la gota con el bord edel cubreobjetos antes de bajar el cubreobjetos sobre la pre-paración (B).
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Cuando se la hace en forma correcta, la centrifuga-ción de sulfato de zinc puede hacerse rápido.Median-te el uso de una centrífuga en la que se puedan colo-car seis tubos a la vez (Figura 1.4), es fácil que unapersona procese y examine alrededor de 60 muestraspor hora con este método.El secreto del análisis rápi-do es no usar un cubreobjetos durante la fase de ob-servación del exámen. Una vez que uno se ha toma-do el trabajo de concentrar los quistes y huevos en un
pequeño círculo de 5 mm,¿para qué desparramarlosdebajo de un cubreobjetos de 22 X 22 mm? La realiza-ción de la prueba sin cubreobjetos hace que sea nece-sario examinar las muestras rápidamente,antes deque se sequen y antes de que los cristales formados amedida que el sulfato de zinc sale de la solución ha-gan que la observación de las muestras resulte imposi-ble (Figura 1.5). por lo tanto, sólo se puede preparar la cantidad de muestras que una persona puede leer
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 13
Figura 1.5. Cuando se traslada el loop al portaobjetos del
microscopio, se lo puede examinar como la simple y pequeñaporción tomada con el loop o debajo de un cubreobjetos. Laobservación de una o dos porciones tomadas con el loop tienela ventaja de que la muestra no se desparrama debajo de unasuperficie más grande como ocurre con el cubreobjetos. Ladesventaja de examinar la porción tomada con el loop es quese puede secar si el examinador tarda demasiado durante laobservación.
Figura 1.4. Al tomar la muestra de la parte superior del tubo dela centrífuga, se lo debe empujar con cuidado hacia abajo enforma recta a través de la parte superior del líquido y luego sedebe tirar en forma recta hacia arriba. En ocasiones, elmaterial que se encuentra en la parte superior del tubo puede
ser tan espeso que se parece más a un barro que a un menisco.En estos casos, parte del material se puede trasladar del lateraldel loop al portaobjetos.
Figura 1.3. Ya sea que se use sulfato de zinc o de magnesio, onitrato de sodio, siempre es mejor verificar la gravedadespecífica con un hidrómetro. El nitrato de sodio se puedeadquirir seco en una cantidad pre-medida para flotacionesestacionarias. El sulfato de zinc se puede adquirir líquido conuna gravedad específica de 1,18. El sulfato de magnesioprobablemente sea la solución para flotación menos costosa,pero algunas sales de Epsom (si bien están graduadas paraalimentos y aprobadas para usar como laxante) pueden estarlevemente descoloridas o pueden contener algunos sólidos
cuando están presente en soluciones de gravedad específica1,2; la elección de otra marca con frecuencia resolverá estosproblemas. (A) Este hidrómetro tiene una escala de 1,000(gravedad específica del agua) a 1,220. (B) En esta imagen, elmenisco se encuentra en 1,200, entre los números 80 (1,180) y20 (1,220). Este hidrómetro sería inapropiado para verificar unasolución azucarada pesada.
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en una sola sentada. Con seis muestras, se pueden co-locar tres porciones tomadas con el loop en cada por-taobjetos, de este modo sólo se necesitan dos por-taobjetos cada seis muestras. Si se necesita más tiem-po, se puede colocar en el portaobjetos un loop lleno
de agua o una gota de solución salina antes de agre-gar el loop del tubo.Si en último caso se necesita uncubreobjetos, se puede agregar una gota de agua almaterial que se encuentra sobre el portaobjetos y lue-go aplicar un cubreobjetos. El loop funcionará mejor si se lo pasa por la llama antes de cada uso (Figura1.6). La llama asegura que no se arrastre nada entreuna muestra y la otra.Mientras se coloca el loop en lallama, puede observarse una acumulación de sulfatode zinc y materia fecal en él que formará una costra.Se puede limpiar el loop sumergiéndolo dos o tres ve-ces en agua, raspándolo con un aplicador o colocán-dolo más tiempo sobre la llama. Es importante que elloop sea de alambre resistente a las llamas y tambiénque sea lo suficientemente delgado para que funcionebien. Un loop típico de microbiología para placas deagar tiene un alambre muy grueso y el orificio delloop es demasiado pequeño.Los quistes de Giardia flotarán sobre la superficie delsulfato de zinc. Con frecuencia, cuando estánpresentes en los bordes del material que se encuentrasobre el portaobjetos, aparecerán de un color rosadodebido a la aberración esférica causada por lacurvatura de la gota sobre el portaobjetos.Lapresencia de huevos también será obvia sobre elportaobjetos.A medida que se seca el portaobjetos,los quistes colapsan.Un inconveniente del método
con sulfato de zinc es que no detecta los huevos máspesados. Por lo tanto, es probable que usando estemétodo no se observen en la muestra los huevos detenias taeniid y Diphyllobothrium y Spirometra, lamayoría de los trematodos y algunos nematodos, por ejemplo,Trichuris vulpis.
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Figura 1.6. El loop utilizado para tomar una muestra de la partesuperior de un tubo es más fino que el loop típico que se utilizaen microbiología y tiene un diámetro un poco más grande. Esimportante que el loop sea de alambre resistente a la llama, delo contrario se derretirá. La colocación del loop sobre la llamaparece ayudarlo a tomar la muestra del menisco del tubo de lacentrífuga. En ocasiones, el loop acumulará una costra dematerial seco producto de los restos de heces y la colocaciónsobre la llama que se puede quebrar con cuidado y sacar delalambre con el extremo de un aplicador.
MATERIALES
•Centrífuga común de mesada con rotor de
tambor horizontal oscilante y soportes
para tubos de 13 X 100 mm
• Microscopio binocular compuesto,
debe tener por lo menos objetivos de10 X y 40 X y 10 piezas oculares
• Vasos de cartón no encerado o vasos
similares de 88 a 120 cm3 (3 a 4 onzas)
• Fieltro de doble pliegue
• Hidrómetro: rango de gravedad específica
1,000 a 1,300
• Botellas plásticas para lavado
• Tubos de centrifuga de fondo redondeado
y de vidri o , de 13 x 100 mm
• Aplicadores de madera
• Portaobjetos para microscopio: de vidrio
de 7,62 x 2,54 cm (3 x 1 pulgadas)
• Mechero de Bunsen,lámpara de alcohol o
encendedor de cigarrillos
• Loop de alambre de aproximadamente
calibre 28 y loop de 4 a 5-mm
• Mezclador Vortex
• Agua de la canilla
REACTIVOS
• Solución de sulfato de zinc,gravedad
específica 1,18 (aproximadamente 33 g de
cristales en 100 ml de agua).Verificar la
gravedad específica con un hidrómetro y
ajustarla en caso de ser necesario. El sulfato
de zinc se puede adquirir ya preparado con
una gravedad específica de 1,18.
PROCEDIMIENTO
1. Desmenuzar aproximadamente 1 g de la
muestra de materia fecal en 5 ml de agua en
un vaso de cartón. Esto se puede lograr
mezclando en forma manual con dos
aplicadores. Si se sostienen los aplicadores
con los dedos pulgar e índice, unos ligeros
golpecitos con el dedo anular y mayor sobre
los aplicadores produce una efectiva acción
de mezclado.
2. Filtrar la suspensión de materia fecal a
través de dos capas de gasa y pasarla a un
segundo vaso de cartón, lavando con un
pequeño volumen de agua.
3. Verter el filtrado en el tubo de ensayo.
4. Centrifugar durante 1 minuto a 800g.5. Decantar el sobrenadante.
6.Agregar aproximadamente 3 ml de
solución de sulfato de zinc y volver a
suspender con los aplicadores y el
mezclador Vortex.
7. Llenar el tubo hasta 1 cm del borde y
volver a centrifugar a aproximadamente
800g durante 1 minuto.
8. Sin sacar el tubo de la centrífuga y con un
loop de alambre recién colocado en la
llama, extraer 1 o 2 loops del centro de la
película de la superficie y colocar en un
portaobjetos con el número de muestra.
9. Examinar con un microscopio compuesto
con magnificaciones de 100X y 400X.
FLOTACIÓN CON SULFATO DE ZINC
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MÉTODOS DE FLOTACIÓNESTACIONARIA
La flotación estacionaria es un medio por el cual los
h u evos y quistes de los parásitos pueden apare c e r
flotando en la superficie de un medio líquido. El pro-ceso es de simple realización y se lo puede arm a r
con materiales del lab o ra t o rio o con la adquisición
de dive rsos kits comerc i a l e s , como por ejemplo Fe-
c a lyzer® (EVSCO Pharmaceuticals) o Ova s s ay® (Syn-
biotics Corpora t i o n ) .Todos estos métodos trab a j a n
s o b re el mismo pri n c i p i o . Los huevos son más pesa-
dos que el ag u a , p e ro la mayor parte de la materia fe-
cal es más pesada que los huevo s . De este modo, s e
m e z clan las heces con una solución que tiene una
densidad flotante superior a los huevos pero infe ri o r
a los otros materiales de las heces. Mediante pru e b a
y error se ha demostrado que una gravedad específi-
ca de 1,2 es aproximadamente la densidad corre c t a
p a ra lograr una buena separación entre los huevos y
los restos en la mu e s t ra de materia fe c a l . Una solu-
ción de material que pesa 1,2 veces el peso de un vo-
lumen igual de agua tiene una gravedad específica de
1 , 2 ; por lo tanto, 10 ml de agua pesan 10 gramos y 10
ml de una solución con una gravedad específica de
1,2 pesa 12 gra m o s .
E n t re los re a c t i vos comunes que se usan en estas pre-
p a raciones están la sal de mesa (NaCl), el sulfato
de zinc, el sulfato de magnesio y el nitrato de sodio.
El primer medio utilizado de rutina para realizar este
p rocedimiento fue la sal de mesa saturada (solucións a l i n a ) , que tiene una gravedad específica de aprox i-
madamente 1,2. La separación por lo ge n e ral no es
tan buena como cuando se usa la centri f u g a c i ó n , p e-
ro en ge n e ral es adecuada para obtener una mu e s t ra
bastante limpia. La solución de nitrato de sodio tiene
la desventaja que parece cri s t a l i z a rse levemente más
rápido en el portaobjetos que las otras soluciones. L a
solución de sulfato de magnesio tiene una viscosidad
que es levemente superior a la de las otras tres solu-
ciones y entonces es posible que los huevos floten a
la superficie más lentamente en este material que en
las otras tres soluciones.
L o s métodos en las dive rsas pruebas pre p a ra d a s(por ejemplo, Fe c a lyzer y Ova s s ay) trabajan sobre el
mismo pri n c i p i o . D i fi e ren del método descripto en
cuanto a que el soporte de la mu e s t ra también fun-
ciona como tamiz. En el método Fe c a ly z e r, el tubo
en el cual se produce la flotación sirve también co-
mo dispositivo de toma de mu e s t ras en el cual el
fondo del accesorio de inserción pro p o rciona un
medio para medir la cantidad de heces que se intro-
duce en el tubo.
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MATERIALES
•Microscopio binocular compuesto:debe
tener por lo menos objetivos de 10 X y 40
X y 10 piezas oculares
• Vasos de cartón no encerado o vasos
similares de 88 a 120 cm3 (3 a 4 onzas)
•Fieltro de doble pliegue
•Hidrómetro: rango de gravedad específica1,000 a 1,300
•Botellas plásticas para lavado
•Tubos de centrifuga de fondo redondeado
y de vidrio,de 16 x 100 mm
• Soporte para tubos de ensayo
• Aplicadores de madera
• Portaobjetos para microscopio
• Cubreobjetos de vidrio de 18 x 18 mm
• Mezclador Vortex
REACTIVOS
• Solución de flotación: cloruro de sodio
saturado (solución salina), sulfato de zinc,
gravedad específica 1,18; sulfato de
magnesio, gravedad específica 1,2 o nitrato
de sodio,gravedad específica 1,2.
PROCEDIMIENTO
1. Desmenuzar aproximadamente 1 g de la
muestra de materia fecal en 5 ml de agua en
un vaso de cartón. Esto se puede lograr
mezclando en forma manual con dosaplicadores. Si se sostienen los aplicadores
con los dedos pulgar e índice, unos ligeros
golpecitos con el dedo anular y mayor sobre
los aplicadores produce una efectiva acción
de mezclado.
2. Filtrar la suspensión de materia fecal a
través de dos capas de gasa y pasarla a un
segundo vaso de cartón, lavando con un
pequeño volumen de solución de flotación.
3. Verter el filtrado en el tubo de ensayo,
colocar el tubo en el soporte.
4. Llenar el tubo con solución de flotación
hasta tener un leve menisco de líquido
moviéndose sobre la superficie.
5. Colocar un cubreobjetos en la parte
superior del tubo.
6. Dejar reposar el tubo con el cubreobjetos
durante 10 o 15 minutos, luego retirar el
cubreobjetos y colocar sobre el portaobjetos
del microscopio
7. Examinar con un microscopio compuesto
con magnificaciones de 100X y 400X.
FLOTACIÓN ESTACIONARIA
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Método FecalyzerEl Fecalyzer es un dispositivo de flotación común-
mente usado en muchas prácticas veterinarias (Figura
1.7). El accesorio de inserción verde tiene una por-
ción en el fondo que el cliente puede insertar en las
heces de la mascota para tomar una cantidad de he-ces previamente medida. Luego se puede colocar el
accesorio de inserción en el vial blanco con tapa a
presión y se lo lleva a la clínica para examinar.La solu-
ción de flotación, por lo general solución de nitrato
de sodio a una gravedad específica de 1,2, se agrega
en la cámara blanca,se reinserta el accesorio de inser-
ción verde y se mezcla por rotación con la solución
de flotación. Luego se llena el accesorio de inserción
con la solución de modo tal que aparezca un menisco
en la parte superior y se coloca un cubreobjetos de
22 x 22 mm en la superficie del menisco.Después de
aproximadamente 5 o 10 minutos, se retira el cu-
breobjetos y se coloca en un portaobjetos de vidriopara examinar la muestra. El accesorio de inserción
verde tiene una parte con tejido que evita que las par-
tículas más grandes floten en la superficie e interfie-
ran con el exámen microscópico de la muestra.
Método OvassayEl dispositivo Ovassay Plus Kit es muy similar al Fe-
calyzer en cuanto a diseño y concepto (Figura 1.8).Al
igual que en el método anterior, se agregan heces a
un accesorio de inserción central y se mezcla con la
solución de flotación, por lo general sulfato de zinc.Se coloca el filtro en el dispositivo y se crea un menis-
co positivo mediante el agregado de más solución de
flotación. Se agrega un cubreobjetos para microsco-
pio en la parte superior del dispositivo y luego se deja
que flote el material durante aproximadamente 10 mi-
nutos. El accesorio de inserción central tiene una par-
te con tejido que evita que las partículas más grandes
floten contra el cubreobjetos e interfieran con el
exámen microscópico de la muestra.
Al igual que con el Fecalyzer, la flotación estacionaria
tiene la distintiva ventaja de que no requiere una cen-
trífuga para el procesamiento. La desventaja es que el
método no permite la recuperación máxima de hue- vos y quistes de parásitos de la muestra de materia fe-
cal. Sin embargo, para diagnósticos de rutina, ambos
análisis son útiles y pueden ayudar en la mayoría de
las situaciones clínicas.
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos16
Figura 1.7. El Fecalyzer es un dispositivo de flotaciónestacionaria que ha sido desarrollado para la toma y elprocesamiento de muestras de materia fecal. La parte internase puede usar para tomar una porción de las heces del tamañoapropiado mediante la inserción del extremo en las heces.Luego se puede colocar la muestra en el recipiente exterior y sela lleva a la clínica. En el momento de examinar la muestra, sepuede agregar medio de flotación y mezclar la muestra girandoel accesorio de inserción dentro del soporte. Luego se llena elaccesorio de inserción con solución de flotación de modo talque se forme un menisco positivo. Un tamiz colocado en elaccesorio de inserción evita que las grandes partículas flotenen la superficie. Luego se coloca un cubreobjetos de 22 x 22
mm en la parte superior del tubo y se lo deja reposar de 5 a 10minutos. Por último, se retira el cubreobjetos y se coloca en unportaobjetos para microscopio para determinar qué parásitoshan flotado a la superficie.
Figura 1.8. El Ovassay es un dispositivo para recolección yp rocesamiento de materia fecal que se utiliza para re a l i z a runa flotación de materia fecal estacionaria. El dispositivoi n t e rno se puede usar para tomar una muestra del tamañoa p ropiado clavándolo en las heces. Luego, el accesorio dei n s e rción se puede colocar en el soporte y llevar a la clínica.En el momento de procesar la muestra, se puede agre g a rmedio de flotación al tubo y mezclar las heces girando elaccesorio de inserción dentro del soporte. A continuación, sellena el accesorio de inserción con medio de flotación demodo tal que se forme un menisco positivo. Se coloca unc u b reobjetos de 22 x 22 mm sobre el menisco y se lo dejareposar de 5 a 10 minutos. Por último, se retira el
c u b reobjetos y se lo traslada a un portaobjetos param i c roscopio para identificar aquellos parásitos que hanflotado a la superf i c i e
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FLOTACIÓN CENTRÍFUGA DE AZÚCAR
Los para s i t ó l o gos ve t e ri n a rios en su mayoría pre fi e-
ren un método de flotación centrífuga a los métodos
e s t a c i o n a ri o s . Cada técnico pre fi e re dife rentes me-
dios de fl o t a c i ó n , p e ro un método que se usa común-mente es el método de flotación centrífuga de azú-
c a r.Este método tiene la ventaja de que hará que
h u evos más pesados fl o t e n , lo cual no ocurre con los
métodos que emplean dive rsas soluciones salinas
(por ejemplo, s u l fato de mag n e s i o , s u l fato de zinc,
cl o ru ro de sodio o nitrato de sodio). La solución de
azúcar puede funcionar con flotación estacionari a ,
p e ro con frecuencia los huevos y quistes apare c e r á n
d i s t o rsionados por la presión osmótica causada por
el azúcar y la alta viscosidad de la solución re q u i e re
que los huevos permanezcan en la solución dura n t e
un tiempo mayor antes de que logren llegar a la su-
p e r ficie del tubo estacionari o . Este inconveniente ha
sido superado por el uso de centri f u g a c i ó n . La solu-
ción de azúcar tiene la desventaja de que puede
a t raer moscas y cucara ch a s . Cuando se trabaja al aire
l i b re , las moscas se vuelven bastante fru s t rantes ya
que se posan y alimentan sobre los bordes de los cu-
b reobjetos en la mu e s t ra fi n a l . Las cucara chas con
f recuencia están presentes en los lab o ra t o rios donde
se alimentan con los derrames o gotas de restos de
mu e s t ras o con el material que queda en los tubos de
la centrífuga o en las mismas centrífugas.
Pa ra los huevos de parásitos de la mayoría de las es-
p e c i e s , la flotación centrífuga de azúcar es un méto-do muy fácil de usar y altamente ex i t o s o . Sin embar-
go , los huevos de tre m a t o d o s , como por ejemplo los
de Pa rago n i mus y A l a ri a , con frecuencia colapsarán o
se ab rirán y se saldrá su contenido intern o , lo cual a
veces puede hacer que sean más difíciles de re c o n o-
c e r.
Este método es excelente para la demostración de
oocitos de la especie Cry p t o s p o ri d i u m . Con los mi-
c roscopios que se usan por lo ge n e ral en los consul-
t o rios ve t e ri n a ri o s , la interacción entre las pro p i e d a-
des ópticas de la solución y los oocitos hacen que los
oocitos parezcan pequeños puntos de color rosado a
rojo que flotan en la superficie del azúcar justo deba- jo del cubre o b j e t o s . Sin embargo , cuando se utilizan
m i c roscopios más sofisticados como los que se usan
p a ra inve s t i g a c i ó n , el color de los oocitos con fre-
cuencia no se observa porque las correcciones de la
ab e rración esférica en las lentes del objetivo corri ge n
la propiedad que hace que los oocitos parezcan ro s a-
d o s .
O t ra ventaja del procedimiento de flotación con azú-
car es que los portaobjetos se pueden examinar du-
rante un tiempo una vez que están pre p a ra d o s . Si se
evita que los portaobjetos se sequen (colocándolos
s o b re una toalla de papel húmeda en una caja de Pe-
t ri) y se los guarda re f ri ge ra d o s , mu chos de estos
h u evos se pueden observar con éxito durante unos
d í a s . Si se colocan los portaobjetos en un org a n i z a d o r
y se los mantiene fríos, i n cluso se los puede mandar
con hielo para obtener ayuda en el diag n ó s t i c o , c o n
f recuencia sin tener pro blemas en ver los parásitos
c o n t e n i d o s . Los oocitos de Cry p t o s p o ridium tienden
a colapsar después de aproximadamente media hora
y desapare c e n ; los quistes de Giardia presentes conf recuencia aparecerán colapsados y se necesitará ha-
bilidad para identifi c a r l o s , i n cluso en pre p a ra c i o n e s
en nu evos portaobjetos y en las mu e s t ras que se han
dejado por un tiempo, los huevos de anquilostomas
pueden fo rmar embri o n e s , que los hace muy cl a ros y
más difíciles de observa r. Sin embargo , los huevos de
c á s c a radura y los oocitos de coccidios se pueden ve r
bastante bien durante va rios días.
La solución utilizada para la flotación es una solución
de azúcar saturada que tiene una gravedad específi c a
de aproximadamente 1,3. La solución de flotación se
l o gra disolviendo azúcar de caña en agua al punto de
s a t u ración (Fi g u ra 1.9).
Con frecuencia se puede acelerar el proceso pro d u-
ciendo la mezcla con calor, se calienta el agua antes
de agregar el azúcar o durante el pro c e s o . Un amigo
por lo ge n e ral hace la solución de azúcar en un her- vidor doble donde se agrega el azúcar al agua calien-
t e . Si se usa calor, es necesario ve ri ficar la grave d a d
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 17
Figura 1.9. Cuando se prepara el azúcar para la flotación, porlo general se necesitan aproximadamente 900 g cada 700 mlde agua ( aproximadamente 1300 g/l). Será necesario agre g a rel azúcar lentamente y disolverla revolviendo. Con fre c u e n c i ase puede entibiar el agua para ayudar en la disolución dela z ú c a r, pero se la debe enfriar antes de verificar la gravedadespecífica con un hidrómetro. A algunos les resulta muy útilp reparar la solución de azúcar en un hervidor doble igual quecuando se hace caramelo. Es buena idea cuando el pro d u c t ose ha enfriado agregar una pequeña cantidad de formol (10ml/l) para evitar que el moho crezca en el medio.
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e s p e c í fica una vez que se dejó enfriar la solución. Si se
calienta la solución durante la pro d u c c i ó n , se puede fo r-
mar una gran cantidad de cristales a medida que se en-
fría la solución. Estos pueden quedar en la botella de al-
m a c e n a m i e n t o . Una vez que se preparó la solución, e s
n e c e s a rio agregar un conservante para evitar que cre z c amoho en el agua con azúcar.G e n e ralmente se usan dos
c o n s e rvantes distintos, fo rmol y fenol (ácido carbox í l i-
c o ) , y se agregan aproximadamente 5 ml de fo rm a l d e h í-
do al 37% o 5 ml de fenol licuado a cada litro . La solu-
ción de azúcar también se puede conservar mediante au-
t o cl ave y conge l a m i e n t o ,p e ro el autocl ave puede causar
la caramelización del azúcar y oscurecer su aspecto. E n
las siguientes fi g u ras se describe el procedimiento deflotación centrífuga de azúcar (Fi g u ras 1.10–1.13).
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos18
Figura 1.12. Una vez que la centrífuga se detiene por completo, sepuede levantar el cubreobjetos directamente de la parte superiordel tubo.
Figura 1.10. Mezclar las heces en un vasopequeño y luego volcarlas sobre una gasapara eliminar los sólidos antes de revolver ymezclar con el azúcar. Algunos técnicospasan por alto la etapa de tamizado, pero siesto se hace, los sólidos en la muestra finalpueden hacer que resulte muy difícil deexaminar bajo el microscopio.
Figura 1.11. Una vez que sedecantó el agua del sedimen-to tamizado y centrifugado, sedebe agregar solución deazúcar (aproximadamente 3 a4 ml) y el sedimento debequedar suspendido en la so-lución de azúcar. Es importan-te que se mezcle bien lamuestra y esto resulta más
fácil si se usan dos aplicado-res. Se puede usar un mezcla-dor Vortex si los aplicadoresestán insertados en las mues-tras, pero se puede generargran cantidad de burbujas deaire si no se tiene cuidado.
Figura 1.13. El cubreobjetos se debe colocarcon cuidado sobre un portaobjetos para cap-turar la menor cantidad de burbujas de aireque sea posible.
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ANÁLISIS DE SEDIMENTACIÓN
La medicina veterinaria usa muy poco los distintos
análisis de sedimentación por las siguientes razones:
Los parásitos más comunes se detectan por lo general
usando los métodos de flotación; habitualmente no
hay necesidad de fijar las muestras extraídas de cani-
nos y felinos (como se dijo anteriormente,esto cam-
bia la permeabilidad de los huevos y quistes y por lo
tanto sus densidades flotantes) y muchos de los tre-
matodos y amebas presentes en la materia fecal de losseres humanos no están en las muestras provenientes
de perros y gatos. De este modo, los beneficios de la
sedimentación por lo general no superan a las desven-
tajas, que incluyen la mayor cantidad de material que
con frecuencia se debe examinar, la dificultad para
ver diversos protozoos cuando están desparramados
en esta muestra más grande sin la ayuda de la aberra-
ción esférica y la cantidad de pasos extra que requie-
re el procesamiento.Las muestras sí tienen la ventaja
de que se pueden conservar de modo tal que una par-
te o toda la muestra se puede observar otro día,pero
en la mayoría de las clínicas veterinarias, los veterina-
rios simplemente no tienen tiempo para volver más
tarde y re-examinar los portaobjetos.
El procedimiento de sedimentación más básico es el
simple tamizado de la material fecal en agua o solu-
ción salina seguido de la sedimentación en un tubo
sin centrifugación.Un gran porcentaje de las bacterias
permanecerán en la solución y los huevos más pesa-
dos se irán al fondo del tubo. El problema es que por
lo general hay una gran cantidad de material que que-
da por examinar. Sin embargo,el procedimiento es
mejor que nada y casi no tiene costo de preparación.
Muchos de los huevos son muy pesados en compara-ción con el agua y por lo tanto con frecuencia se
asentarán en un tiempo relativamente corto.
Un procedimiento que tiene éxito en la medicina pa-
ra seres humanos es el procedimiento de sedimenta-
ción en formol/acetato etílico (Figura 1.14). Este mé-
todo también es útil en la medicina veterinaria por-
que es capaz de encontrar casi todo lo que puede es-
tar presente en una muestra de materia fecal. El pro-
blema, una vez más,es que con frecuencia hay gran
cantidad de material para examinar. El proceso limpia
las muestras que tienen mucha fibra o mucha grasa,
pero por desgracia esto no es tan común en las mues-
tras de perros y gatos.La sedimentación en ácido/ace-tato etílico es una técnica hermana de la sedimenta-
ción en formol/acetato etílico. En esta técnica, las he-
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 19
MATERIALES
•Centrífuga común de mesada con rotor
horizontal y soportes para tubos de 16 X
100 mm
•Microscopio binocular compuesto:debe
tener por lo menos objetivos de 10 X y 40
X y 10 piezas oculares
• Vasos de cartón no encerado o vasos
similares de 88 a 120 cm3 (3 a 4 onzas)
•Fieltro de doble pliegue
•Hidrómetro: rango de gravedad específica
1,000 a 1,300
•Botellas plásticas para lavado•Tubos de centrífuga de fondo redondeado
y de vidrio,de 16 x 100 mm
• Aplicadores de madera
•Portaobjetos para microscopio
•Cubreobjetos de 18 x 18 mm
•Marcador
• Agua de la canilla
• Agitador magnético
REACTIVOS
• Solución de flotación de azúcar: lentamen-
te agregar alrededor de 1000 g de azúcar pu-
ra granulada a 1000 ml de agua destilada en
un vaso de laboratorio de 4 L sobre un agita-
dor magnético.Verificar la gravedad específi-
ca (debe ser 1,300;esto es básicamente una
solución saturada).Ajustar, en caso de ser ne-
cesario, agregando más agua o más azúcar.
PROCEDIMIENTO
1. Con aplicadores (dos funcionan mejor
que uno) colocar aproximadamente 1 g de
heces en un vaso de cartón.
2. Agregar aproximadamente 8 ml de agua
de la canilla y dispersar las heces en el agua vigorosamente con los aplicadores. Puede
ser que las heces no se separen rápidamen-
te; de ser así,dejar descansar la muestra du-
rante un corto tiempo para permitir que se
ablande.
3. Tamizar el barro fecal pasándolo por un
fieltro a un segundo vaso de cartón.
4.Verter el barro tamizado del segundo vaso
en el tubo de ensayo de la centrífuga.
5. Centrifugar a 800g durante 1 minuto.
6. Decantar el sobrenadante.
7. Agregar solución de flotación de azúcar a
aproximadamente 1/4 del total y volver a
suspender el pellet vigorosamente con dos
aplicadores.
8. Después de colocar el tubo en la centrífu-
ga, llenarlo con solución de azúcar hasta que
rebalse levemente de modo tal que haya un
leve bulto (menisco) en la película de la su-
perficie por sobre el borde del tubo.
9.Agregar un cubreobjetos a la superficie
del tubo.
10. Ca rgar y balancear la centrífuga (asegura r-
se de balancearla con otro tubo lleno de azú-
c a r ) .C e n t rifugar a 800g durante 10 minu t o s .
11. Ret i rar el cubreobjetos levantándolo de-re cho de modo tal que una gota se adhiera al
m i s m o . Colocar el cubreobjetos sobre un
p o rtaobjetos y examinar con el micro s c o p i o.
FLOTACIÓN CENTRÍFUGA DE AZÚCAR
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ces frescas se suspenden en una solución ácida, típica-
mente de ácido clorhídrico (elaborado en una propor-
ción de 40 partes de HCl concentrado con 60 partes
de agua). El resto de la técnica es igual que para el
método de sedimentación en formol/acetato etílico.
El método de sedimentación en formol/acetato etílicotiende a proporcionar una muestra más limpia que la
obtenida con fo rm o l , p e ro no funciona en quistes de
p ro t o z o o s . Sin embargo ,algunos técnicos pre fi e re n
usar el método con ácido/acetato etílico para las mu e s-
t ras de materia fecal tomadas de animales salva j e s .
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos20
MATERIALES
•Centrífuga común de mesada con rotor
horizontal y soportes para tubos de 16 X
100 mm
•Microscopio binocular compuesto:debe
tener por lo menos objetivos de 10 X y 40
X y 10 piezas oculares
• Vasos de cartón no encerado o vasos
similares de 88 a 120 cm3 (3 a 4 onzas)
•Fieltro de doble pliegue
•Hidrómetro: rango de gravedad específica1,000 a 1,300
• Botellas plásticas para lavado
•Tubos de centrífuga cónicos de vidrio de
15 ml
•Tapón de goma
• Aplicadores de madera
•Portaobjetos para microscopio
•Cubreobjetos de 18 x 18 mm
REACTIVOS
• Acetato etílico
• HCl diluido: 40 ml de HCl concentrado
en 60 ml de agua.
PROCEDIMIENTO
1. Con aplicadores (dos funcionan mejor
que uno) colocar aproximadamente 1 g de
heces en un vaso de cartón.
2. Agregar aproximadamente 8 ml de agua
de la canilla y dispersar las heces en el agua
vigorosamente con los aplicadores.Puede
ser que las heces no se separen
rápidamente;de ser así, dejar descansar la
muestra durante un corto tiempo parapermitir que se ablande.
3. Tamizar el barro fecal pasándolo por un
fieltro a un segundo vaso de cartón.
4.Verter el barro tamizado del segundo vaso
en el tubo de ensayo de la centrífuga.
5. Centrifugar a 800g durante 1 minuto.
6. Decantar el sobrenadante.
7. Agregar aproximadamente 8 ml de
solución ácida mezclando con el aplicador.
8. Agregar aproximadamente 5 ml de acetato
etílico, colocar el tapón y agitar
vigorosamente apretando el tapón en su
lugar.
9. Sacar el tapón,cargar y balancear la
centrífuga (asegurarse de balancearla con
otro tubo de peso similar).Centrifugar a
800g durante 10 minutos.
10. Habrá una obstrucción de material en el
lugar de la interfaz ácido/acetato etílico.
Pasar el aplicador alrededor de la pared de
vidrio y hacer decantar el acetato etílico, la
obstrucción y la solución ácida.
11. Examinar el sedimento para detectar la
presencia de huevos.
SEDIMENTACIÓN CON ÁCIDO / ACETATO ETÍLICO
Figura 1.14. Cuando el acetato etílico se mezcla con el agua fecal, el formol o la mezclade ácidos y luego se centrifuga, se formará una capa entre el solvente orgánico y la faseacuosa. Es necesario desalojar esta obstrucción con un aplicador antes de decantar el tu-bo. Se debe tener cuidado al desalojar el material de las paredes del tubo de modo tal queno vuelva a caer en el pellet cuando decante. Si el pellet está en alcohol ácido, probable-mente sea deseable volver a suspenderlo en agua antes de colocarlo en un portaobjetos;de lo contrario, tiende a no formar un lodo sino que se desparrama rápidamente a los bor-des del portaobjetos y se sale.
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APARATO DE BAERMANN
A ve c e s , en la medicina ve t e ri n a ria se tienen sospe-
chas de infecciones por nematodos que pro d u c e n
l a rvas en lugar de huevos que pasan a las heces. E n
los perro s , esto ocurre en infecciones con Cre n o s o-ma vulpis, Fi l a roides hirt h i , Fi l a roides osleri y
S t ro n gyloides sterc o ra l i s . En los gatos, A e l u ro s t ro n gy-
lus ab s t rusus y Stro n gyloides felis (solo se encuentra
en el Pa c í fico Sur) son casi las únicas infe c c i o n e s
que dan como resultado la aparición de larvas en las
h e c e s . Se puede hacer un agregado poco común a
esta lista, p e ro estos son la mayoría de los casos en
los cuales la etapa que pasa a las heces es una larva .
F. h i rthi y F. o s l e ri tienen larvas que tienden a no mo-
ve rse mu ch o ; si cualquiera de estas fueran el age n t e
s o s p e choso de signos pulmonares observa d o s , ex i s-
ten mu chas pro b abilidades de que el uso de un apa-
rato de Baermann no agregará nada al diag n ó s t i c o .
Pa ra estas dos larva s , el mejor medio de encontra r l a s
es con una flotación con sulfato de zinc.
Pa ra las otras especies, el aparato de Baermann (Fi g u-
ra 1.15) aumentará las posibilidades de encontrar las
l a rvas que pueden estar re l a t i vamente desparra m a-
das en toda la mu e s t ra de materia fe c a l . Una vez que
se encontra ron las larva s , h ay que dife renciarlas pero
esto en realidad es una tarea re l a t i vamente fácil.A d e-
m á s , se debe tener cuidado con el tiempo tra n s c u rri-
do desde la toma de la mu e s t ra de las heces utiliza-
das para pre p a rar el aparato porque los huevos de
anquilostoma son capaces de tener cría y confundir el diag n ó s t i c o . Sin embargo , en su mayo r í a , el méto-
do de Baermann es una técnica útil para ve ri fi c a r
una infección con cualquiera de estas especies de
n e m a t o d o s .
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 21
MATERIALES
•Microscopio binocular compuesto:debe
tener por lo menos objetivos de 10 X y 40 X y 10 piezas oculares
•Embudo de 13 a 15 cm (5 o 6 pulgadas)
de diámetro
•Centrífuga común de mesada con rotor
horizontal y soportes para tubos de 16 X
100 mm
•Estante para tubos y soporte para embudo
•Colador de té o filtro soporte equivalente
•Trozo de tubo de paredes finas de 8 a 10
cm (3 o 4 pulgadas) de longitud
•Gotero sin el bulbo de goma insertado en
un extremo del tubo de paredes finas,el
otro extremo está unido al embudo
•Clamp para el tubo
• Tubos de centrífuga cónicos de vidrio de
15 ml
•Espátula (baja lenguas)
•Fieltro de doble pliegue•Portaobjetos para microscopio
•Cubreobjetos
REACTIVOS
• Agua
PROCEDIMIENTO
1. Con la espátula, separar entre 5 y 15 g de
heces y colocarlas en el colador de té (pue-
de resultar más fácil desparramar el material
sobre el fieltro y colocar esto en el colador
o, si no se dispone de un colador,se puede
suspender con un hilo sobre la parte supe-
rior del embudo una bolsita hecha con fiel-
tro)
2. Llenar el embudo con agua de la canilla ti-
bia; mover el tubo y el clamp para eliminar las burbujas de aire que pudieran estar atra-
padas.
3. Si hay gran cantidad de larvas activas pre-
sentes, como ocurre con frecuencia en el ca-
so de Aelurostrongylus, unas pocas gotas se
pueden examinar después de aproximada-
mente una hora, pero puede ser necesario
dejar reposar la preparación en el aparato de
un día para otro.
4. Llenar el tubo de la centrífuga desde el
fondo abriendo el clamp (¡RECORDAR que
las larvas de Strongyloides de tercera etapa
pueden penetrar en la piel!)
5. C e n t rifugar y examinar con el micro s c o p i o
APARATO DE BAERMANN
Figura 1.15. Este dispositivo consta de un embudo unido a untubo de goma por medio de un clamp. La materia fecal se co-loca sobre un trozo de gasa o un colador de té y se la suspen-de sobre agua en el embudo. Las larvas salen de las heces y
pasan al agua. Con el tiempo, las larvas se asentarán en elfondo del tubo y se las podrá recolectar ya sea colocando ung o t e ro en la punta que gotee a un portaobjetos o centrifugan-do el contenido en un tubo de centrífuga y examinando el se-d i m e n t o .
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PRUEBAS DE ANTÍGENOS FECALES
En la actualidad, existen pruebas para detectar los an-
tígenos de Cryptosporidium y Giardia cuando están
presentes en muestras de materia fecal. Estas pruebas
tienen la ventaja de eliminar la necesidad de confiar en la microscopía. Sin embargo,una desventaja impor-
tante es que en la actualidad su uso resulta relativa-
mente costoso. Por lo tanto, cuando se ejecuta un
control positivo y negativo, una sola prueba puede ser
muy costosa.Sin embargo, existen muchas rezones pa-
ra pensar que este tipo de pruebas será cada vez más
común para el diagnóstico de los patógenos relativa-
mente difíciles de encontrar.
Las pruebas actuales se realizan del modo típico para
una placa de ensayo inmuno-absorbente vinculado a
enzimas (ELISA) o para inmuno-ensayos de fase sólida.
Es mucho más probable que los veterinarios realicen
los ensayos de fase sólida (Figura 1.16) porque están
diseñados para usarlos con pacientes individuales. Los
laboratorios de diagnóstico es más probable que utili-
cen las placas de ELISA (Figura 1.17) porque ellos rea-
lizan un batch de muestras de proceso y tienen mu-
chas muestras para analizar al mismo tiempo.
Los diversos ensayos ProSpecT® (Remel) para Giardia
y Cryptosporidium son ejemplos de estos ensayos.
MÉTODOS DE CULTIVO DE MATERIA FECALEl único método de cultivo de materia fecal para pro-
tozoarios capaz de ser realizado en la mayoría de los
consultorios veterinarios es el sistema de cultivo re-
cientemente presentado InPouchTM para tricomona-
das (BioMed Diagnostics)(Figura 1.18).Este sistema
tiene pequeños sobres de plástico con medio que
puede ser inoculado con hisopos fecales y los proto-
zoarios se cultivan a temperatura ambiente. Se ha
comprobado que el sobre da muy buenos resultados
en la aislación de tricomonadas provenientes de he-
ces de gatos con diarrea.El kit usado para la detección de organismos en las
heces de felinos estuvo originalmente diseñado para
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos22
Figura 1.16. Este es un ejemplo de un inmunoensayo de fasesólida diseñado para usar con una sola muestra (Pro S p e c T ®G i a rd i a / C ryptosporidium Formato Rápido). La prueba es simi-lar a las desarrolladas para detectar diversos antígenos y an-
ticuerpos en muestras de sangre o suero. Las heces diluidasse aplican a la membrana y, luego, después de una serie depasos, ocurrirá un cambio colorimétrico en la membrana conmanchas que se oscurecerán si el antígeno está presente enlas heces. Dichas pruebas han sido desarrolladas para detec-tar los antígenos de Giardia y Cryptosporidium. La foto es gen-tileza de REMEL Inc
Figura 1.17. Este es un ensayo ELISA que se ha usado de ru t i-na para detectar antígenos de Cryptosporidium en materia fe-cal (ProSpecT® Cryptosporidium Ensayo de Microplacas; hayun ensayo similar pa-
ra Giardia). El costode las placas haceque la prueba seamuy cara, por lo tantosólo se utiliza de ru t i-na en laboratorios dediagnóstico centrali-zados. Por lo generalla muestra se analizacon una muestra dec o n t rol positiva y ne-gativa. Los re s u l t a d o sse pueden leer vi-sualmente o mediante el uso de un lector de ELISA. En la pru e-ba mostrada (A), las cubetas positivas se ponen de color ama-
rillo al finalizar la prueba y las negativas quedan transpare n-tes. La intensidad del color se puede utilizar como una apro-ximación para la intensidad de la infección. Las fotos son gen-tileza de REMEL Inc
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la detección de Tritrichomonas foetus en muestras
vaginales de hembras de bovinos y todavía se lo co-
mercializa sólo para este uso. Por suerte, el proceso
funciona bien para las muestras de materia fecal sin
una gran proliferación de bacterias como para que ha-
gan que no se puedan leer las muestras. Una vez quese ha incubado la muestra en el sobre,se la puede
examinar con un microscopio directamente a través
de la pared del sobre utilizando un dispositivo pro-
porcionado por el fabricante que aplana y desparrama
el sobre para poder examinarlo. Si hay tricomonadas
presentes, se las puede sacar con una pipeta para se-
guir examinándolas con el microscopio o para pasar-
las a otro medio.Este es el primer kit que hace que el
cultivo de muestras de este patógeno sea relativa-
mente fácil de analizar en el consultorio.
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25
El análisis de muestras de orina para detectar parási-
tos es relativamente fácil en comparación con el análi-
sis de materia fecal. Existen pocos parásitos del tractourinario que ocurren comúnmente en los perros y ga-
tos; estos pertenecen a la especie capilaria y son Pear-
sonema plica y P. Feliscati. En general, no se encuen-
tran otros huevos de parásitos en la orina de los pe-
rros y gatos.En raras ocasiones, los perros se infectan
con Dioctophyme renale,el cual produce los huevos
encontrados en la orina.En muy pocos casos, se ha
encontrado que los gatos tengan nemátodos típicos
de vida libre, Pelodera strongyloides,que se multipli-
can dentro de la orina de la vejiga.En las áreas donde
la prevalencia de infección por Dirofilaria immitis es
alta, es posible encontrar microfilarias dentro de la
orina de los perros.
Los sólidos de la orina se deben concentrar mediante
sedimentación centrífuga y el sedimento se debe lavar
con solución salina (Figura 2.1). Luego,el sedimento
se puede examinar en una preparación húmeda para
detectar la presencia de cualquiera de estos estadíos
parásitos.
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos
Capítulo 2: Muestras de orina
Figura 2.1 La sedimentación centrífuga simple seguida delexámen del pellet después de la decantación, por lo general,p ro p o rcionará la mejor posibil idad de éxito en larecuperación e identificación de parásitos
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27Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos
Se puede examinar la sangre para detectar parásitos uti-
lizando va rios métodos cuya elección depende en gra n
medida del objetivo del análisis. Cuando se buscan or-ganismos vivos como por ejemplo micro fi l a rias o tri p a-
nosomas que se espera que estén vivos y presentes en
n ú m e ros re l a t i vamente import a n t e s , la mejor elección
es colocar una gota de sangre fresca sobre un port a o b-
jetos y examinarla para detectar organismos re p t a n t e s .
En infecciones por Babesia y Cytauxzoon, los estadíos
en la sangre típicamente no se mu even excepto dentro
de las células sanguíneas de las cuales son parásitos.
Por lo tanto, la detección de estos parásitos se logra ha-
bitualmente por el exámen de películas de sangre teñi-
d a s . Estos parásitos se ven mejor cuando se tiñe la san-
gre con una tinción Romanov s ky, como por ejemplo
G i e m s a , si bien con frecuencia se pueden obtener re-
sultados adecuados utilizando los métodos de ru t i n a
p a ra tinción de sangre .
En el caso de infecciones fi l a riales en las cuales se en-
c u e n t ran micro fi l a rias en sangre , se han desarro l l a d o
métodos para concentrar las micro fi l a rias mediante el
lisado de los glóbulos ro j o s . Los dos métodos que utili-
zan esta técnica de rutina son la prueba de Knott y la
técnica de membra n a . El desarrollo de mu chas pru e b a s
in situ de los antígenos y anticuerpos del paciente ha
dado como resultado el exámen de la sangre en mu-
chas ocasiones mediante la aplicación directa de sangre
e n t e ra , plasma o suero a dive rsos dispositivos que lue-go se examinan a través de dive rsas tecnologías de cap-
t u ra y visualización de antígenos o anticuerpos. E s t o s
va riados kits para detección de antígenos y anticuerpos
p a ra usar con sangre pasan por etapas muy rápidas de
d e s a rro l l o , m e j o ramiento y cambio.
PREPARACIÓN HÚMEDA PARAMICROFILARIAS Y TRIPANOSOMAS
La colocación de una pequeña gota de sangre debajo
de un microscopio pro p o rciona un medio rápido para
d i agnosticar infecciones por tripanosomas o nemáto-dos fi l a rioides si hay estadíos suficientes circulando en
la sangre en el momento del exámen (Fi g u ra 3.1). E n
aquellos lugares del mundo donde el parásito Diro fi l a-
ria immitis es muy común, el exámen de una pre p a ra-
ción húmeda con una pequeña cantidad de sangre so-
b re un cubreobjetos por lo ge n e ral será un método
muy sensible y poco costoso para detectar infe c c i o n e s .
Sin embargo , con la baja prevalencia y la gran cantidad
de perros incluidos en pro gramas preve n t i vos para Di-
ro fi l a ria immitis en gran parte de los Estados Unidos, l a
p re p a ración húmeda con frecuencia no es una técnica
altamente pro d u c t i va . Los tripanosomas solo se en-
c u e n t ran ra ramente en los perros en la mayoría de los
l u g a res del mundo y el Trypanosoma cruzi está con
f recuencia presente en la sangre en niveles muy bajos.
Por lo tanto, el uso de la pre p a ración húmeda para
d i agnosticar estas infecciones con frecuencia tampoco
vale la pena. Sin embargo , es ex t remadamente gra t i fi-
cante cuando se espera encontrar Diro fi l a ria immitis y
el exámen de una gota de sangre revela una gran canti-
dad de larvas reptantes sobre el port a o b j e t o s .
TÉCNICA DE KNOTT
La técnica de Knott es un método utilizado para
examinar una mayor cantidad de sangre para detección
de micro fi l a rias que la cantidad que es posible analizar
con la pre p a ración húmeda (por lo ge n e ra l , 1 ml de
s a n gre para la técnica de Knott comparado con 0,02
ml para la pre p a ración húmeda). La técnica se basa en
el hecho de que las soluciones hipo-osmóticas
causarán la lisis de los glóbulos rojos sin afectar a las
m i c ro fi l a ri a s . La prueba se ha realizado de rutina con
fo rmol al 2% para lisar los glóbulos rojos y fijar las
m i c ro fi l a rias para su posterior exámen (Fi g u ra 3.2). L o s
e rro res típicos que cometen los principiantes son pre-
p a rar el fo rmol al 2% en solución salina en lugar deagua y usar fo rmol al 10% en lugar de fo rmol al 2% ;
ambos erro res hacen que se fijen los glóbulos rojos en
Capítulo 3: Muestras de sangre
Figura 3.1: La colocación de una pequeña gota de sangres o b re un portaobjetos es un método excelente para encontrarm i c rofilarias si están presentes, cualquiera sea la cantidad.No hay nada más re c o n f o rtante que preparar los port a o b j e t o sy ver microfilarias reptantes. También es una forma bastantebuena de distinguir las microfilarias de Dirofilaria immitis(que se muestran aquí) de las de Dipetalonema re c o n d i t u m ;éstas últimas son capaces de impulsarse con facilidad en la
s a n g re mientras que las microfilarias de Dirofilaria immitistienden sólo a moverse. Un hallazgo aún más interesante esencontrar algo como un tripanosoma en una de estasp re p a r a c i o n e s .
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lugar de que se lisen,lo cual anula el propósito de
la pru e b a . Una vez que se han lisado las células, los gló-
bulos blancos y cualquier micro fi l a ria que esté pre s e n-
te se concentran mediante el uso de la centri f u g a c i ó n
( Fi g u ra 3.3).
Por lo ge n e ral en estas mu e s t ra s , las micro fi l a rias estánteñidas con azul de metileno; se agrega una gota al
sedimento (es mejor usar una gota muy pequeña, de lo
c o n t ra rio habrá mu cho precipitado en una mu e s t ra de
color azul muy oscuro) o se pre p a ra fo rmol al 2% con
la tinción diluida.
No siempre es necesario agregar fo rmol o tinción si el
técnico que examina sabe qué es lo que busca en la
p re p a ra c i ó n . Los glóbulos rojos pueden lisarse con
ag u a , el tubo puede centri f u g a rse y el sedimento puede
vo l ver a suspenderse en una pequeña cantidad de solu-
ción salina, lo cual producirá un sedimento que se pue-
de examinar para detectar micro fi l a ri a s . El único pro-
blema es que las micro fi l a rias no se teñirán y apare c e-rán solo como pequeñas y delgadas líneas ve rm i fo rm e s
con un ex t remo redondeado y el otro muy puntudo
( Fi g u ra 3.4). El diámetro de la micro fi l a ria es casi igual
al de un glóbulo ro j o . Sin embargo , las micro fi l a rias son
más fáciles de identificar cuando se agrega tinción con
azul de metileno (Fi g u ra 3.5).
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos28
Figura 3.2: Se transfiere 1 mlde sangre, ya sea fresca,tratada con ácido edético(EDTA) o con heparina, a 10ml de formol al 2%, lo cualhace que se lisen los glóbu-los rojos.
Figura 3.3: Una vez que se hadejado reposar la muestradurante 5 a 10 minutos parapermitir que los glóbulos ro-jos se lisen y para darle tiem-po a las microfilarias paraque el formol las fije, se cen-trifuga el tubo para recolec-tar los glóbulos blancos y lasm i c rofilarias en el sedimento.Con frecuencia se agrega unapequeña cantidad de tinción
de metileno al sedimento pa-ra ayudar en la visualizaciónde las microfilarias.
Figura 3.4: El sedimento se puede examinar sin tinción y las mi-crofilarias se pueden identificar como estructuras delgadas si-milares a un cabello con colas en punta. De hecho, se puederealizar el análisis sin usar formol y las microfilarias aún esta-rán reptando si la preparación se examina rápidamente una vezque se ha formado el sedimento. Originalmente, esta prueba sedesarrolló para mirar las muestras transcurridos varios días yhasta semanas después de haber sido tomadas en el campo yla tinción se agregaba de modo tal que los diversos tipos de mi-crofilarias que se presentan comúnmente en los seres humanospudieran ser distinguidos.
Figura 3.5: Con la tinción de azul de metileno agregada, los nu-merosos núcleos dentro de las microfilarias fijadas están teñi-
dos de azul haciendo que sea más fácil identificar las microfi-larias. Se debe tener cuidado de no agregar demasiada tinción,de lo contrario la muestra será demasiado oscura para exami-narla con facilidad.
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TÉCNICAS DE MEMBRANA
Otra técnica para examinar sangre y detectar
microfilarias es el uso de un filtro de membrana (Difil-
Test®;EVSCO Pharmaceuticals).Con este método, las
células sanguíneas se lisan de manera muy similar a loque ocurre en la prueba de Knott. Luego,en lugar de
que la muestra se concentre utilizando
centrifugación, la sangre lisada es forzada a través de
un filtro de membrana.A continuación, se toma el
filtro y se lo coloca sobre el portaobjetos del
microscopio debajo de un cubreobjetos para
examinarlo.La prueba puede ser muy sensible y
captura todas las microfilarias que se encuentran en
el mililitro de sangre sobre la membrana. Una vez
más, como con la técnica de Knott, las microfilarias se
pueden examinar con o sin tinción.
EQUIPOS PARA PRUEBA DE ANTÍGENOS
Las pruebas de antígenos por lo general son capaces
de discriminar entre infecciones por Dirofilaria
immitis y Dipetalonema reconditum, y esto hace que
la necesidad de diferenciación microscópica de estas
dos microfilarias que viven en la sangre sea menos
importante que hace unos años. Estas pruebas
pueden a veces dar resultados falso-negativos cuando
la carga de helmintos adultos de Dirofilaria immitis es
bastante baja pero también a veces cuando hay un
gran número de microfilarias circulando. Por lo tanto,
en los perros con historias desconocidas, siempre es
mejor realizar las pruebas para detección de
microfilarias y una prueba para detección de
antígenos. Debe recordarse también que alrededor del20% de los perros con Dirofilaria immitis tienen
infecciones "ocultas", es decir, infecciones sin
microfilarias circulantes. En estos casos y en los
perros que han estado recibiendo tratamientos
preventivos con avermectina, las pruebas para
detección de antígenos son las preferidas para
determinar si un perro tiene una infección por
Dirofilaria immitis.
FROTIS DE SANGRE TEÑIDA
Los frotis de sangre de rutina, teñidos por la mayoría
de los laboratorios, son capaces de revelar lapresencia de parásitos. Estos métodos son los más
confiables para diagnosticar babesiosis o
cytauxzoonosis, sin embargo, se están desarrollando
pruebas de antígenos para babesiosis que es probable
que suplanten al frotis de sangre de rutina con este
propósito. Estas pruebas también funcionarán bien
para la tripanosomiasis, sin embargo, con frecuencia
hay cantidad insuficiente de protozoos lo cual hace
que el diagnóstico sea difícil.
29Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos
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RASPAJE DE PIEL
Un raspaje de piel para detectar los ácaros de las es-
pecies Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, o Demodex
se realiza mejor utilizando un bisturí y una pequeña
cantidad de aceite mineral (Figura 4.1).Para los Sar-
coptes y Notoedres,es necesario raspar bastante pro-
fundo tal vez sacando una pequeña cantidad de san-
gre del lugar donde se realiza el raspaje. Las costras a
veces pueden ser un poco gruesas y puede ser nece-
sario separarlas y romperlas en el portaobjetos me-
diante el uso de finos fórceps o un par de sondas den-
tales de acero inoxidable (Figura 4.2). Una vez que se
separa el material, se puede agregar un cubreobjetos y
examinar la preparación con el microscopio. Con fre-cuencia los ácaros estarán en movimiento, lo cual ha-
ce que sea relativamente fácil distinguirlos.
El método para examinar el material ceroso de los oí-
dos de animales con sospecha de ácaros de los oídos
es similar. Los adultos de Sarcoptes y Notoedres sonmucho más pequeños que los Otodectes, por lo tanto
es necesario buscar estos parásitos con un poco más
de cuidado.
FROTIS DE PIEL Y ASPIRADOS DE MÉDULAÓSEA
La tinción de células de la piel y aspirados de médula
ósea con Diff-Quik que se hace de rutina puede de-
mostrar los estadíos de amastigota de los tripanoso-
mas y Leishmania. La cuidadosa tinción de estas pre-
paraciones con Giemsa u otras tinciones hematológi-
cas mejorará la definición de los parásitos dentro de
la célula huésped en la cual se encuentran.
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Capítulo 4: Muestras de tejido
Figura 4.1: Los materiales necesarios para realizar un raspajede piel son aceite mineral, fórceps, bisturí, portaobjetos para
microscopio y cubreobjetos.
Figura 4.2: Al realizar el raspaje de piel, puede ser necesario
raspar hasta que salga un poco de sangre del lugar donde serealiza el raspaje. Esto ocurre especialmente cuando se tratacon Sarcoptes scabei que viven a mayor profundidad. La hojadel bisturí se sumerge en el aceite mineral y luego se lo usapara raspar la piel. Algunas de las costras pueden ser bastanteduras y esto puede requerir que se las separe con los fórcepsantes de aplicar el cubreobjetos al portaobjetos con el material.
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Parte II
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Plan diagnósticoTomar una muestra de materia fecal para el exámen
simple de detección de huevos de parásitos. Se tomóuna pequeña porción de heces del recto y se realizóun análisis por flotación estacionaria con nitrato desodio.A los 10 minutos, se examinó la muestra y seencontró que contenía gran cantidad de huevos de T.Canis.
Diagnóstico: Toxocara canisSe podrían haber realizado varias otras pruebas quetambién habrían recuperado los huevos de T. Canis.Probablemente una prueba de flotación centrífugahabría recuperado los huevos en situaciones con ba- jos recuentos de huevos en las cuales la flotación es-tacionaria podría haber sido negativa. Por otro lado,con gran cantidad de huevos presentes,es probableque un frotis directo de las heces habría sido tan exi-toso como cualquiera de los métodos de concentra-ción para revelar la presencia de huevos.
ResultadoSe trató a la cachorra con prazicuantel / embonato depirantel / febantel (Drontal® Plus;Bayer) y eliminóuna gran cantidad de parásitos. El tratamiento ante-rior con embonato de pirantel probablemente habíalogrado eliminar la mayoría de los helmintos adultospresentes en ese momento,pero se esperaba que máshelmintos hubieran migrado y se hubieran desarrolla-
do en el intestino provenientes de sitios recluidos enel hígado y los pulmones donde habían estado aloja-dos desde antes del nacimiento de la cachorra. Seplanificó comenzar un tratamiento preventivo de ruti-na para Dirofilaria immitis que incluía el control deinfecciones por nematelmintos.Se informó a los dueños que había altas probabilida-des de que las áreas del patio donde había defecadola perra estuvieran contaminadas con grandes canti-dades de huevos de T. Canis. Habían comprado a la ca-chorrita como compañía para sus hijos,por lo tantose advirtió a los dueños sobre la necesidad de tratar de limpiar todo el lugar ya sea eliminando o tapandoel suelo contaminado o evitando de alguna forma el
acceso al lugar contaminado para reducir las posibili-dades de transmisión zoonótica.
Descripción. Perra de raza mestiza de dos
meses de vida.
Historia. Adoptada dos semanas antes de un
refugio local, la cachorra había recibido
vacunas iniciales y había sido desparasitada con
embonato de pirantel (Nemex®;Pfizer). La
cachorra había estado alerta y saludable, pero
durante los dos últimos días se había vuelto
letárgica y anoréxica y no se había observado
que defecara durante ese período.Las heces
observadas cerca del ano eran oscuras y
blandas; los dueños no observaron materia
fecal líquida.
Exámen físico. La cachorra estaba deprimida y,
a excepción de esto,su estado físico era bueno.
El recorrido de los intestinos se sentía
engrosado y era marcadamente palpable.Las
membranas mucosas aparecían un poco
pálidas, lo cual sugería una leve anemia.
Evaluación inicial. La historia de esta cachorra y
la presencia del recorrido de los intestinosengrosado llevaron al clínico a sospechar de
una infección por helmintos adquiridos en el
momento del nacimiento, los que se descartan
más típicamente son ancylostomas (gusanos
con forma de gancho), nematelmintos (gusanos
redondos) o ambos. El recorrido engrosado de
los intestinos sugería infección por
nematelmintos (Toxocara canis) pero la leve
anemia sugería infección por ancylostomas
(Ancylostoma caninum).
Diagnóstico presuntivo. Severa infección por
nemátodos,probablemente nematelmintos.
CASO 1
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 35
Capítulo 5: Parásitos detectados en las heces - Estudio de casos
Figura 5.1: El huevo de Toxocara canis es un buen huevo para usar como re f e rencia pa-ra re c o rdar por su tamaño; es apenas más grande que la longitud del eje longitudinaldel Ancylostoma caninum y tiene un diámetro que es casi igual a la longitud del ejelongitudinal de los huevos de Trichuris vulpis y Uncinaria stenocephala. Debajo de unobjetivo de 10X en la mayoría de los microscopios que se usan para diagnóstico, la dis-tancia a través del campo de visión es de aproximadamente 1,8 a 2 mm, o 1800 a 2000µm. El huevo de T. Canis tiene un diámetro aproximado de 80 µm (el de T. Cati tiene und i á m e t ro levemente menor, alrededor de 70 µm de diámetro), por lo tanto, debajo deun objetivo de 10X, entrarán entre 22 y 25 huevos de T. Canis en el campo de visión.Debajo del objetivo de 40X, el campo de visión es de aproximadamente 450 a 500 µm,por lo tanto solo alrededor de 6 de estos huevos entrarán en una línea a lo largo delcampo de visión. El otro buen marco de re f e rencia son los quistes de Giardia canis o
G. Cati. Estos quistes tienen una longitud aproximada de 10 µm o alrededor de un dé-cimo del diámetro de un huevo de T. Canis. Por lo tanto, debajo de un objetivo de 40X,se podrán ver 60 quistes de Giardia alineados a lo largo del campo de visión.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos36
Plan diagnósticoEra necesario examinar al perro para detectar unapotencial infección por Dirofilaria immitis antes decomenzar la terapia preventiva. Como no se conocíala historia, se realizó un exámen fecal de rutina
utilizando el procedimiento de f lotación con azúcar.También se realizó un hemograma de rutina.El hemograma dio resultados normales y las pruebasde Dirofilaria immitis, antígenos y Knott dieronresultado negativo. El exámen de la materia fecalreveló huevos de Toxocara canis,Ancylostomacaninum, Uncinaria stenocephala,Trichuris vulpis y un huevo redondo con cáscara marrón gruesa y rugosa que se parecía un poco a T. Canis. El exámenmás detallado de la muestra y la comparación de loshuevos con imágenes de textos y de Internetrevelaron que era un huevo de Baylisascarisprocyonis.Baylisascaris procyonis es un parásitotípico de los mapaches, sin embargo se han
encontrado infecciones con las formas adultas de esteparásito en los perros, en especial en el Medio Oestede los Estados Unidos.
Diagnóstico: Baylisascaris procyonis y otrosnemátodos intestinalesBaylisascaris procyonis y otros nemátodos intestinalesUna vez más, al igual que con los huevos de T. Canisen el Caso 1, cualquiera de los métodos deconcentración utilizados de rutina probablementehabría revelado la infección en este perro. Sinembargo, las pruebas que utilizan nitrato de sodio,sulfato de zinc y sulfato de magnesio tienen la
desventaja de que los portaobjetos tienden a secarse y que la solución de flotación se cristaliza bastanterápido. Por lo tanto,es difícil conservar elportaobjetos durante mucho tiempo cuando seencuentra algo poco usual. En la mayoría de loshuevos de helminto (que no sean las tenias deDifilobotridios y muchos de los huevos detrematodos más grandes), el portaobjetos preparadopara la flotación con azúcar se puede examinar concuidado con frecuencia durante una semana despuésde haber sido preparado.Se necesita tener cuidadode mantener el portaobjetos en una cámara húmeda
Descripción. Macho cruza de Labrador Retriever y Pastor Alemán de aproximadamente
dos años.
Historia. Los dueños habían adoptado al perro
en un refugio en Illinois y lo habían llevado al
hospital veterinario para castrarlo con un
cupón que les había dado el refugio y para
comenzar con su programa de rutina para la
salud de la mascota. No se conocían más
antecedentes del perro.
Exámen físico. El perro parecía estar
perfectamente sano a excepción de algunascicatrices en la oreja derecha. Se observó que
tenía buen apetito y que la materia fecal era
normal. No presentaba signos de ácaros en los
oídos y la piel se veía normal. Una leve
gingivitis sugería que el perro necesitaba una
limpieza dental e iniciar cuidados dentales de
rutina.
Evaluación inicial. El perro era joven y sano,
pero tenía una historia virtualmente
desconocida.Los dueños quisieron iniciar los
cuidados de rutina para su mascota, incluso la
prevención de Dirofilaria immitis y las vacunas
de rutina. Los dueños tenían otros perros y se
sabía que cumplían bien con los tratamientos
recomendados y el cronograma de visitas para
las otras mascotas.
Diagnóstico presuntivo. Perro normal.
CASO 2
Figura 5.2: Huevo de Baylisascaris procyonis en heces de perro. Este huevo eslevemente más pequeño que los huevos de Toxocara canis y Toxascaris leonina, tieneuna cáscara marrón gruesa y por lo general se elimina con una célula simple. Elexterior rugoso de la cáscara del huevo no tiene un patrón como la cáscara de loshuevos de T. Canis y es rugoso y oscuro comparado con la cáscara del huevo de T.L e o n i n a .
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y en el refrigerador cuando no se está examinando lamuestra.Es mejor dejar que la muestra y su recipientese calienten a temperatura ambiente antes delexámen porque de lo contrario la condensación sobreel cubreobjetos no permitirá al principio la
visualización del material debajo del cubreobjetos; sinembargo, esta condensación desaparecerá con unpoco de paciencia. Dichos portaobjetos, si soninmovilizados,pueden enviarse por correo para quelos examinen otros profesionales. Se debe recordar que si el portaobjetos está a temperatura ambientedurante mucho tiempo los huevos de ancylostomascomenzarán a desarrollarse.Al principio serán muy claros a medida que se forma la larva pero finalmentepueden romper la cáscara. Por lo tanto,si bien sepueden leer los portaobjetos durante varios días una vez que se han preparado, siempre es mejor examinarlos el mismo día que se los prepara si fueraposible.
ResultadoSe trató a los perros con fenbendazole (Panacur®;
Intervet) durante tres días,y esta droga eliminó todos
los nemátodos intestinales. Luego se le administró al
perro una dosis preventiva para Dirofilaria immitis. Se
controlaron las heces después de dos semanas de
tratamiento y no se encontraron huevos.
Baylisascaris procyonis ha sido responsable de graves
enfermedades neurológicas y muerte de varios niños
en los Estados Unidos. Se cree que estos casos han
estado relacionados con niños que habían contraído
grandes cantidades de huevos por contacto con suelo
contaminado con heces de mapache.También se ha
registrado enfermedad neurológica en más de 100
especies de aves y mamíferos que han ingerido los
huevos de este parásito. Los mapaches por lo general
defecan siempre en los mismos lugares que sedenominan "letrinas de mapache." Por lo tanto, la
enfermedad en los niños tiende a producirse cuando
han ingerido de alguna forma suelo de estos lugares o
han colocado objetos en ellos o se han puesto los
dedos en la boca y éstos han estado en contacto con
el suelo u otro cubre suelo presente en estos lugares.
A medida que aparecen más y más perros infectados,
la preocupación es que puede haber más casos de
infección de seres humanos por este parásito.El
perro, a diferencia del mapache, es un animal que
defeca en lugares indiscriminados y por esto causará
una mayor dispersión de los huevos en sus heces en
áreas más frecuentadas por personas.No se sabe conseguridad cómo los perros se infectan con este
parásito, pero se cree que se infectan al comer
roedores u otros animales que han ingerido los
huevos en forma parecida a la que se infectan los
mapaches adultos.
El huevo de B. Procyonis es tan resistente como los
de T. Canis,por lo tanto la limpieza completa del suelo
es una tarea muy difícil. Los huevos de estos parásitos
probablemente pueden sobrevivir en el suelo en la
mayoría de los climas durante varios años.
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 37
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos38
Descripción. Gata doméstica de pelo cortoesterilizada de tres años.
Historia. El dueño de la gata informó que su
mascota es una gata de interior-exterior sana.
Sin embargo, el dueño había encontrado gran
cantidad de esferas similares a semillas de
amapolas en la cama y mantas de la gata. El
dueño llevó a la gata y la gran cantidad de
objetos que parecían semillas al consultorio
para examinarlos y también proporcionó una
muestra de materia fecal para analizar. El dueño
explicó que salvo esto, la gata parecía normal y
sana.
Exámen físico. La gata parecía inteligente y
alerta y tenía buena disposición. El exámen
otoscópico reveló que los conductos auditivos
internos eran normales.Parecía que la gata
tenía un poco de alopecia en la espalda y
signos de suciedad de pulgas, si bien no se
encontraron pulgas.
Evaluación inicial. Parecía ser una gata normal
y sana sin ningún signo desfavorable de
infección o lesiones en la piel,a excepción de
un área pequeña en la espalda. Se pensó que la
gata podía estar llena de pulgas,si bien no se
vio ninguna y el dueño informó que tampoco
las había visto en su casa. La gata no estaba en
un programa de control de pulgas.
Diagnóstico presuntivo. El clínico sospechó
que la gata estaba infectada por una tenia y que
el material que parecía ser semillas eran
proglotidos secos. Otra posibilidad era que el
pequeño material que parecía ser semillas
representaba una forma de alguna planta o
insecto de vida libre que podría haber ingresado a la cama por accidente y no era un
agente causante de enfermedad.
CASO 3
Figura 5.3: Segmentossecos de Dipylidium ca-ninum que se parecen apequeñas semillas re-dondas de tamaño simi-lar al de las semillas desésamo. (La muestra esgentileza de la Dra.Jeanne Baines)
Plan diagnósticoSe preparó una flotación fecal estacionaria de rutina apartir de la muestra de materia fecal proporcionada.También se examinaron las "semillas".Algunas de las"semillas" se colocaron en una pequeña cantidad de
agua de la canilla.La flotación con nitrato de sodio arrojó resultados ne-gativos. El exámen de las "semillas" reveló esferas du-ras de color amarillo bastante difíciles de describir.Sin embargo, las semillas que se colocaron en agua seexpandieron lentamente y se desdoblaron presentán-dose como segmentos de tenia. El detallado exámende los segmentos reveló que eran segmentos de teniaDipylidium caninum, que se puede reconocer por lasesferas de huevos contenidas y los orificios lateralesreproductivos de a pares
Diagnóstico: Dipylidium caninumCon frecuencia las soluciones de flotación no diag-
nosticarán infecciones por tenia porque los huevosindividuales de la tenia y las esferas de huevos deDipylidium caninum son demasiado pesados para lamayoría de las soluciones, excepto la solución de azú-car, por lo tanto, los huevos no flotan sobre la superfi-cie del medio.En Canadá, en el norte del Medio Oeste de los Esta-dos Unidos y en algunas partes de Europa,existepreocupación por el hecho de que los gatos y perrospuedan estar diseminando huevos de tenia que enrealidad son huevos de Echinococcus multilocularis.Esta es una infección hepática zoonótica en los sereshumanos muy significativa que causará la muerte sino se la trata. El huésped final natural es típicamente
el zorro y el huésped intermedio es un pequeño roe-dor. Si los perros y gatos cazan, existe la posibilidadde que puedan infectarse con este parásito.Por lotanto, si se observan huevos de tenia en las heces pe-ro nunca se vieron segmentos de ésta, se debe sospe-char de que la infección sea por Echinococcus. Sibien el tratamiento de la gata será el mismo, E. Multi-locularis infecta a las personas pero Taenia taeniaefor-mis del gato casi nunca lo hace.
ResultadoSe trató a la gata sin complicaciones con prazicuan-
tel/embonato de pirantel (Drontal) para eliminar to-
das las tenias que pudieran estar presentes.También
se colocó a la gata en un programa mensual de pre-
vención de pulgas.Se informó al dueño que era pro-
bable que hubiera pulgas en la casa porque esta es
posiblemente la forma en que se infectó la gata.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 39
Figura 5.4: Uno de los segmentos secos que ha sido re -
hidratado para mostrar el aspecto característico de D.C a n i n u m .
Figura 5.5: Primer plano del segmento de D. Caninum para
mostrar las esferas de huevos contenidas dentro del segmento.
Figura 5.6: Se ha aplastado el segmento para liberar lasesferas de huevos (cinco) dentro del área próxima al segmento.
Figura 5.7: Vista de una esfera de huevos simple utilizandom i c roscopía de contraste de interf e rencia diferencial paramostrar el aspecto de los organismos individuales hexacantosd e n t ro de las esferas de huevos.
Figura 5.8: Dos embriones hexacantos individuales de D.
Caninum en los cuales se evidencian los ganchos de las larv a s .
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos40
Descripción. Gato doméstico entero, de pelocorto, de cuatro años.
Historia. Este gato sano de interior-exterior fue
a la clínica para que se le realizará su chequeo
anual de rutina. El gato tomaba ivermectina
(Heartgard® para Gatos; Merial) para prevenir
infecciones por Dirofilaria immitis, ancylosto-
mas y nematelmintos y recibía fipronil (Frontli-
ne®; Merial) para el control de pulgas y garra-
patas. El gato estaba flaco y había perdido peso
desde su última visita hace un año.Estaba al día
con todas las vacunas necesarias.
Exámen físico. El animal se veía normal al exa-
minarlo. Las membranas mucosas estaban páli-
das y se sospechaba que pudiera estar un poco
anémico.
Evaluación inicial. Preocupaba la pérdida de
peso en este gato sano. La posible anemia tam-
bién se consideró preocupante debido a su po-
tencial asociación con alguna enfermedad gra-
ve relacionada con la pérdida de peso. Se le rea-
lizó un hemograma y un análisis de materia fe-
cal de rutina. Si no se encuentra nada anormal,
se le realizará una radiografía.
Diagnóstico presuntivo. Inexplicable pérdida
de peso, preocupación por un posible tumor u
otro síndrome subyacente relacionado con la
pérdida de peso y la anemia.
CASO 4
Plan diagnósticoSe realizó el hemograma y se encontró que el gatopresentaba anemia macrocítica con hemoglobina dis-minuida. El análisis de la materia fecal reveló huevosde lo que parecía ser un trematodo o céstodo difilo-
botridio. El exámen cuidadoso de los huevos presen-tes en las heces determinó que era un huevo de Spi-rometra mansonoides. Este huevo de tenia es morfoló-gicamente muy similar al huevo de trematodo pulmo-nar Paragonimus kellicotti, pero el huevo de Spirome-tra es por lo general levemente menos marrón y tieneuna cáscara un poco más fina.Además, con frecuenciael opérculo no aparece tan bien demarcado comoocurre con el Paragonimus.
Diagnóstico: Spirometra mansonoidesLos huevos de tenia Spirometra y Diphyllobothrium,conjuntamente con los trematodos Paragonimus kelli-cotti y Alaria marcianae, con frecuencia flotarán en
solución azucarada, pero también se romperán y/ocolapsarán en sí mismos, lo cual los hace en ciertaforma más difíciles de identificar. El problema es queestos son huevos relativamente pesados comparadoscon los huevos de los nemátodos más comunes (por ejemplo,Toxocara y Ancylostoma),y con frecuenciano flotarán en los medios de rutina que habitualmen-te hacen un trabajo excelente con los nemátodos máscomunes. Por desgracia, los rangos de Spiromentra y Paragonimus se superponen en gran parte de los Esta-dos Unidos y esto ayuda a que el diagnóstico sea unpoco más difícil.
ResultadoSe trató al gato con una inoculación subcutánea de
prazicuantel (Droncit®; Bayer) dada en 6X la dosis de
rutina para la especie Taenia y Dipylidium caninum.
Después del tratamiento,el gato mejoró considerable-
mente. Recuperó el peso perdido rápidamente y la re-
petición del hemograma arrojó valores normales.
Figura 5.9: El huevo de este céstodo, Spirometra mansonoides,se parece al huevo de un trematodo. En esta muestra, el opér-culo difícil de discernir se encuentra en el extremo más puntu-do del huevo. Algunas muestras parecerán ser más alarg a d a so tendrán extremos más similares en cuanto al tamaño. Los
huevos son similares en tamaño a los de las especies Parago-nimus y a veces se deberán examinar varias muestras antesde poder confirmar un diagnóstico.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 41
Descripción. Gata doméstica de pelo corto dedos meses de vida.
Historia. Se llevó a esta gata a la clínica para re-
cibir las vacunas de rutina y para un chequeo
general. El dueño había notado que en los últi-
mos días las deposiciones de la gata eran blan-
das, pero no parecía que el animal tuviera algu-
na otra afección.
Exámen físico. La gata parecía normal y estaba
atenta y alerta. La temperatura corporal era un
poco elevada (39.5ºC). La palpación del abdo-
men reveló un recorrido intestinal que parecíaengrosado, pero no demasiado. Los exámenes
otoscópicos y oftalmoscópicos eran normales.
Se realizó un exámen de materia fecal de ru t i n a .
Evaluación inicial. Era una gata relativamente
normal con posible enfermedad intestinal in-
fecciosa de etiología desconocida. Había recibi-
do sus primeras vacunas y se la llevaba al vete-
rinario para que recibiera la segunda dosis de
las vacunas para rinotraqueitis viral felina
(FVR), panleucopenia (FPV) y calicivirus felino.
Debido al engrosamiento del recorrido intesti-
nal y las deposiciones líquidas se decidió reali-
zar un exámen de materia fecal de rutina.Tam-
bién se tomaron muestras para el cultivo bacte-
riano de las heces.
Diagnóstico presuntivo. Enteritis de etiología
desconocida.
CASO 5
Plan diagnósticoTanto el cultivo de bacterias de las heces como el he-m o grama completo arro j a ron resultados norm a l e s . S eexaminó una mu e s t ra de materia fecal por fl o t a c i ó ncentrífuga de azúcar y se encontra ron nu m e rosos ovo-
quistes pequeños presentes en la materia fe c a l . Se de-t e rminó que la gata eliminaba ovoquistes que era nm o r fo l ó gicamente indistinguibles de los de Tox o p l a s m ago n d i i .Los gatos pueden eliminar tres ovoquistes que son mu y pequeños e indistinguibl e s .Además de los ovo q u i s t e sde T. G o n d i i , los gatos también pueden eliminar ovo-quistes de Hammondia hammondi o Besnoitia darlingi .Como las infecciones por T. Gondii son lejos las más co-munes de estas especies que se encuentran en los ga-t o s , es más pro b able que los ovoquistes eliminadossean de T.G o n d i i .
Diagnóstico: Toxoplasma gondiiNo se consideró necesario realizar serología para tox o-plasmosis en esta gata porque pro b ablemente suminis-t raría poca info rmación adicional. No hay mu cha info r-mación sobre cuánta reacción cruzada existe entre lasp ruebas sero l ó gicas para estas tres especies en los dife-rentes ensayos utilizados para detectar anticuerpo al To-xoplasma en suero de gatos.A d e m á s , la gata pro b abl e-mente se había infectado hacía poco.Después de la in-gestión de ovo q u i s t e s , los gatos no los eliminan hastadespués de aproximadamente 3 semanas de haber con-t raído la infección y sólo eliminan ovoquistes dura n t eunos pocos días.La corta edad de esta gata indica quep ro b ablemente adquirió su infección por ingestión de
ovoquistes cuando tenía un mes de vida aprox i m a d a-mente y no por ingestión de un ratón o un pájaro infe c-t a d o s . Después de la ingestión de un huésped interm e-dio con bra d i z o i t o s , la gata comenzaría a eliminar ovo-quistes a los 3 o 4 días después de comerse el ra t ó n .
R e s u l t a d oSe info rmó a los dueños que la gata estaba infe c t a d a
con Toxoplasma gondii y eliminaba los ovoquistes en
las heces.Se les advirtió que tuvieran cuidado al elimi-
nar los desechos de la gata y que desinfe c t a ran los ele-
mentos que estuvieran en contacto con los desech o s
con agua muy caliente. Se recomendó que se alberg a raa la gata en la clínica durante los próximos días para
que las heces pudieran ser eliminadas del ambiente
con cuidado y para poder tomar mu e s t ras adicionales
de materia fecal para ve ri ficar que el resultado fuera ne-
g a t i vo antes de llevar la gata a su casa. La gata se quedó
en la clínica 4 días. Cuando su materia fecal reveló que
no había ovoquistes pre s e n t e s , se la mandó a su casa.
En la próxima visita, cuando la gata tenía 12 semanas
de vida, se la examinó cuidadosamente para detectar la
p resencia de signos de toxoplasmosis diseminada (por
e j e m p l o : fi e b re , cambios oftalmoscópicos, re c o rrido in-
testinal engrosado) y la gata estaba completamente nor-
m a l .
Figura 5.10: En el centro de esta imagen de una flota-ción con azúcar de heces de gato vista con objetivo de40X, se puede ver un ovoquiste simple no esporu l a d o
de Toxoplasma gondii. En las muestras de materia fe-cal que no son tan frescas, el esporoblasto central pue-de haberse dividido en dos esporoquistes separados.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos42
Descripción. Gata Abisinia de un año.
Historia. La gata presentó períodos recurrentes
de materia fecal blanda a líquida durante los
últimos meses. Los reiterados exámenes de
flotación de materia fecal no han dado ningún
agente parásito y los cultivos de bacterias han
sido negativos. La gata recibe selamectin
(Revolution®;Pfizer) en forma mensual para el
control de Dirofilaria immitis,helmintos
intestinales y pulgas. La gata ha sido tratada en
dos ocasiones empíricamente por infecciones
intestinales entéricas,una vez con una tanda de
metronidazole y otra vez con amoxicilina, sinobtener ningún efecto. Se colocó a la gata en
un programa de dieta hipoalergénica
especialmente formulada, pero esto tampoco
mejoró los signos.
Exámen físico. La gata parece estar atenta,
alerta y aparentemente goza de buena salud. El
único signo parece ser los variados períodos de
materia fecal blanda a líquida que se presentan
esporádicamente.
Evaluación inicial. Esta es una causa continua
de preocupación para el cliente.Sin embargo,
la gata,de no ser por este signo,parece sana y
no tiene otros signos de enfermedad. Los
análisis de sangre realizados han arrojado
valores normales y nunca se informó que
tuviera fiebre durante las visitas.
CASO 6
Plan diagnósticoC o n t i nuar tratando al animal por las alergias y conside-rar la posible re fe rencia o consulta para desarrollar unafo rma de intervención que sea cura t i va .D u rante el ex á m e n , la gata defecó una pequeña canti-
dad de heces líquidas.Se preparó un frotis directo enuna pequeña cantidad de solución salina empleando es-te materi a l . Se notó que la mu e s t ra estaba llena de pe-queños organismos fl age l a d o s .
Diagnóstico: Infección por tricomonasLas infecciones por tricomonas no se detectarían enflotaciones de materia fe c a l ; los parásitos serían destru i-dos por la solución de flotación hiperosmótica y noflotarían a la superficie ya sea en la flotación estaciona-ria o en la flotación centrífuga. El frotis directo es la fo r-ma más fácil de hacer el diagnóstico porque cuando
los organismos se mu eve n , son fáciles de encontra r.
R e s u l t a d oSe trató la tricomoniasis con una tanda de metro n i d a z o-
le combinado con enro fl oxacina (Bay t ri l ® ; B aye r ) . D e s-
pués de 2 semanas, p a reció que la consistencia de las
heces mejoraba y en ge n e ral parecía que la gata estab a
c u ra d a . Una vez que la materia fecal se hizo más fi rm e ,
los organismos ya no se detectaron en los exámenes de
m a t e ria fecal re a l i z a d o s . Se mantuvo a la gata en su die-
ta hipoalergénica y esto también pareció ayudar a man-
tener la consistencia apropiada de la materia fe c a l . E l
c u l t i vo de materia fecal sería una posibilidad de ve ri fi-car que la gata seguía manteniendo va l o res negativo s .
Sin un trabajo muy cuidadoso, es casi imposible deter-
minar qué especie de tricomonas está causando la en-
fe rmedad en los gatos.Un grupo cree que el parásito es
una especies de Pe n t a t ri chomonas que se da en los se-
res humano y en los perro s . Más re c i e n t e m e n t e , se sugi-
rió que la tricomona que causa enfe rmedad en los ga-
tos es en realidad la Tri t ri chomonas fe t u s , el mismo or-
ganismo que causa ab o rtos en el ganado. Hasta hace
p o c o , se consideraban que estas tricomonas en los ga-
tos eran organismos comensales que no causaban en-
fe rmedades a los gatos, p e ro cuando los gatos desarro-
l l aban diarre a , los eliminaban en las heces y se podíand e t e c t a r.A h o ra parece que estos protozoos pueden ser
capaces de causar enfe rmedades por sí mismos.
Figura 5.11: Trofozóito de una tricomona visto bajo micro s c o p í ad i f e rencial de interf e rencia que muestra la membranaondulante, axostilo que se proyecta desde el extremo posterior
y una punta de los flagelos dirigidos anteriormente. En lasp reparaciones frescas, estos organismos se detectan conmayor facilidad por su movimiento al nadar.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 43
Descripción. Hembra Beagle esterilizada de seisaños.
Historia. Esta perra ha sido un paciente regular
durante toda su vida y siempre ha estado sana
y feliz. Esta visita no es una excepción; la perra
parece estar normal sin ninguna queja.
Exámen físico. Normal; como se esperaba, esta
perra parece gozar de perfecta salud.
Evaluación inicial. La perra está sana, sin
ningún signo de enfermedad.
Diagnóstico presuntivo. Chequeo a los 6 años
normal.
CASO 7
Plan diagnósticoComo se tra t aba de un exámen anual de ru t i n a , se re a l i-zó un exámen de materia fecal y una prueba de antíge-no de Diro fi l a ria immitis que se realiza año por medio.La prueba de antígeno dio resultado negativo , p e ro la
flotación de materia fecal reveló nu m e rosos quistes deG i a rdia canis.
Diagnóstico: Giardia canisEl método utilizado para este diagnóstico fue una fl o t a-ción centrífuga de azúcar. Con la utilización de este mé-t o d o , con frecuencia se hace colapsar a los quistes o elcitoplasma de los organismos que están dentro delquiste puede re t ra e rse lejos de la pared del quiste enun ex t remo del quiste, dando la apariencia ge n e ral decuerpos concéntricos de un lado de un óvalo cl a ro .U nmedio más fácil y rápido de diagnóstico de quistes deG i a rdia es el uso del método de flotación con sulfa t ode zinc. Este es un método muy rápido porque las dos
c e n t rifugaciones son muy cortas y hay muy poco mate-rial para examinar en la mu e s t ra tomada con el loop.Utilizando este método, los quistes por lo ge n e ral noc o l a p s a n . Se debe re c o rdar que con la Giard i a , si el pe-rro tiene diarre a , existe una muy alta pro b abilidad deque los quistes no estarán presentes en las heces y queel diagnóstico tendrá que basarse en encontrar los tro-fozoitos en un frotis directo o mediante el uso de une n s ayo inmu n o absorbente vinculado a enzimas (ELISA)p a ra captura de antígenos o una prueba equivalente pa-ra captura de antíge n o s .No está cl a ro si anteri o rmente no se vio la infección osi el animal la adquirió re c i e n t e m e n t e . En cualquiera delos casos, la perra no parece tener ningún signo de la
i n fe c c i ó n .
R e s u l t a d oEl resultado se ve complicado por el hecho de que laG i a rdia canis es un agente potencialmente zoonótico. L o sdueños tienen nietos y querían tratar al perro . Se le admi-nistró fenbendazole (Panacur) en tandas de 3 días y se vo l v i e ron a analizar las heces a los 5 días del último tra t a-m i e n t o .Una vez más, las heces dieron resultado positivo .E n t o n c e s , se le dio una segunda tanda de tra t a m i e n t ocon fenbendazole que se extendió durante 5 días.A loscinco días del último tra t a m i e n t o , se vo l v i e ron a ex a m i-nar las heces del perro y el resultado fue negativo .
Pa rece que estos casos van y vienen durante períodosp rolongados y no está cl a ro como una buena inmu n i d a des re l a t i va para la prevención de la infe c c i ó n , si bien pa-rece ser bastante buena en relación con la prevención dela diarrea en los animales infe c t a d o s .Como se trata deuna potencial zoonosis,el tratamiento está más o menosindicado por la presencia del parásito.El pro blema esque puede llegar a ser casi imposible liberar al perro to-talmente de la infe c c i ó n ,ya sea porque las drogas no pro-ducen la eliminación total o porque el perro se re - i n fe c t ac o n s t a n t e m e n t e . Si los dueños están realmente pre o c u p a-dos por el potencial zoonótico,p ro b ablemente valdría lapena administrarle la vacuna que se ha desarrollado y que debe prevenir la infe c c i ó n .
Figura 5.12: Quistes de Giardia canis recuperados en unaflotación centrífuga con sulfato de zinc.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos44
Descripción. Cinco gatos domésticos de pelocorto de nueve semanas de vida.
Historia. El dueño informó que la camada de
gatitos había recibido las vacunas según el
cronograma, se había observado que tenían
nematelmintos y habían sido tratados con
pracicuantel / embonato de pirantel (Drontal).
Durante la última semana, los gatitos
desarrollaron heces blandas y uno de los cinco
diarrea bastante grave.
Exámen físico. La temperatura y la frecuencia
respiratoria de los gatos estaban dentro de loslímites normales.El gato que había tenido
diarrea estaba un poco deshidratado. Las heces
que habían sido eliminadas no contenían
ningún rastro de sangre y eran de color
bastante claro.
Evaluación inicial. Los signos coincidían con
diarrea del intestino delgado. El color claro de
las heces indicaba que no había sangrado o
hemorragia significativos de la mucosa en el
intestino delgado.Todos los gatos habían sido
vacunados contra el virus de la panleucopenia.
Diagnóstico presuntivo. Posible gastroenteritis.
Se tomaron muestras de materia fecal para
detectar la presencia de quistes de Giardia y
ovoquistes de Isospora.
CASO 8
Plan diagnósticoUn frotis directo de las heces del gato con el peor casode diarrea no mostró contacto con ningún quiste deG i a rdia fe l i s . Un análisis con flotación de azúcar reve l óque no había ovoquistes de Isospora pre s e n t e s , si bien
se identifi c a ron ovoquistes muy pequeños que concor-d aban con un diagnóstico de Cry p t o s p o ridium fe l i s . S eremitió a un lab o ra t o rio una mu e s t ra de materia fe c a lde cada gato para realizar más pruebas de detecciónde cri p t o s p o ridiosis a fin de ve ri ficar el diag n ó s t i c o .
Diagnóstico: Cryptosporidium felisLos ovoquistes vistos en la flotación de azúcar eran pe-queños y parecían flotar debajo de la solución de azú-c a r, justo por debajo del cubre o b j e t o s .Al ex a m i n a r l o scon el micro s c o p i o , los ovoquistes parecían tener unl eve color ro s a d o .Al usar el objetivo de 10X, los ovo-quistes aparecían como pequeños puntos de color ro s a
s o b re el port a o b j e t o s . Después de aprox i m a d a m e n t e15 minu t o s , los ovoquistes colapsarán y se harán re l a t i- vamente difíciles de re c o n o c e r.El lab o ra t o rio info rmó que todas las mu e s t ras de mate-ria fecal dieron resultado positivo para el antígeno deC ry p t o s p o ri d i u m . Por lo tanto, e ra pro b able que loscinco gatos eliminaran ovocitos en las heces.
R e s u l t a d oNo hay ningún tratamiento que detenga la eliminaciónde los ovoquistes de Cry p t o s p o ridium en las heces ded i ve rsos huéspedes;por lo tanto, la única terapia quepodría aplicarse a los gatos era un tratamiento comple-
m e n t a ri o .Al gato deshidratado se le administra ron lí-quidos y a los demás el dueño los monitoreó de cerc ap a ra ve ri ficar que no desarro l l a ran también signos ded e s h i d ra t a c i ó n . Se tomó una mu e s t ra de materia fe c a lde los otros cinco gatos adultos que vivían en la mismacasa y se encontró que eran negativos para el antíge n ode Cry p t o s p o ri d i u m . Las mu e s t ras de materia fecal to-madas de los cinco gatitos a las dos semanas de su pri-m e ra visita fueron normales y no contenían ovo q u i s t e so antíge n o .Se info rmó a los dueños que este era un agente poten-cialmente zoonótico, si bien no se conoce qué tan co-mún es la transmisión del parásito felino a los seres hu-m a n o s . Se sugi rió a los dueños que limpiaran con fre-
cuencia el lugar donde los animales hacían sus deposi-ciones y que se lava ran las manos re g u l a rm e n t e . Se se-ñaló que existía poco ri e s go de que los ovoquistes pre-s e n t a ran un potencial de transmisión de la enfe rm e d a d
a los otros gatos adultos que vivíanen la misma casa a menos que tu- v i e ran algún tra s t o rno inmu n o s u-p resor subyacente y se sabía que to-dos los gatos adultos estaban sanos.Figura 5.13: Los ovoquistes de Cryptosporidium canis,
C. Felis, C. Parvum y C. Hominis son morf o l ó g i c a m e n-te indistinguibles. Puede verse que los ovoquistes enlas flotaciones de azúcar tienen una coloración leve-mente rosada causada por la aberración esférica pre-sente en la mayoría de las lentes de bajo costo que seusan en los microscopios de diagnóstico. Con la óptica
de alta corrección presente en la mayoría de los mi-c roscopios que se usan para investigación, esta colo-ración rosada tiende a desapare c e r.
Figura 5.14: Esta es una imagen de dosovoquistes obtenida con una lente de100X de inmersión en aceite ym i c roscopía de interf e re n c i a
d i f e rencial para mostrar lose s p o rozoitos y el cuerpo re s i d u a lp resente dentro de cada ovoquiste.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 45
Descripción. Gato doméstico intacto, de pelolargo, de cuatro años.
Historia. El gato es un cazador sano de interior
/ exterior que se va de la casa con frecuencia
por varios días, y generalmente vuelve con "tro-
feos" como por ejemplo pequeños cadáveres
de animales que parecen terminar al pie de la
cama. El dueño religiosamente le aplica fipronil
(Frontline) todos los meses y no le ha visto ga-
rrapatas, si bien son comunes en la zona.El ga-
to ha sido un paciente bastante regular que
consulta al veterinario anual o semi-anualmente
y que el año pasado había sido tratado por loque parecía ser la herida de una mordedura. Es-
ta vez, el dueño ha notado el desarrollo de una
tos que va empeorando progresivamente.Los
signos eran relativamente inocuos al principio,
con las ocasionales toses y estornudos. Sin em-
bargo, estos signos habían empeorado progresi-
vamente y ahora estaban acompañados de una
secreción nasal muco purulenta en algunas
ocasiones.
Exámen físico. El gato tenía un áspero ruido
pulmonar y estaba disneico.Alrededor de la na-
riz tenía costras por la secreción.La temperatu-
ra no era significativamente elevada y el gato
solo presentaba signos mínimos de malestar.
Evaluación inicial. Un frotis del material teñido
con Diff-Quik reveló un gran número de neu-
trófilos con bacterias sumergidas y varios eosi-
nófilos. La experiencia había mostrado que los
gatos en esta zona y con estos antecedentes
podían a veces estar infectados por Metas-
trongyliadae.
Diagnóstico presuntivo. Neumonitis verminosacon potencial infección bacteriana secundaria.
CASO 9
Plan diagnósticoSe sacaron imágenes ra d i o gr á ficas de tórax que mostra-ban una marcada infi l t ración intersticial difusa de losp u l m o n e s . Se preparó un aparato de Baermann paraexaminar las heces y dos horas después, se observa ro n
mu chas larvas activa s . Se identifi c a ron las larvas comol a rvas de A e l u ro s t o n gylus ab s t rusus por la cola con es-pina dors a l .
Diagnóstico: Aelurostrongylus abstrususEl A e l u ro s t ro n gylus es uno de los pocos nemátodos lar- va que se encuentran en las heces de un gato y el úni-co que es común encontra r. Cuando se encuentran lar- va s , un rápido exámen de la espina de la larva con fre-cuencia confi rma la identifi c a c i ó n .
R e s u l t a d o
Se trató al gato con fenbendazole (Panacur) durante 5días y también se le dio enro fl oxacina (Bay t ril) parat ratar la infección bacteriana concurre n t e . Dos sema-nas después del tra t a m i e n t o , la técnica con el embudode Baermann reveló que todavía había larvas pre s e n t e sen la materia fe c a l . Se pensó que tal vez éstas eran lar- vas que todavía estaban madurando a partir de los hue- vos en el tejido, por lo tanto se detuvo el tratamiento y se examinó una segunda mu e s t ra a las dos semanasque dio resultado negativo para las larva s . Una ra d i o gra-fía de seguimiento a los 6 meses y otro análisis con em-budo de Baermann no reve l a ron signos de la infe c c i ó na n t e ri o r.
Figura 5.16: Radiografía de los pulmones del gato que muestralos infiltrados parchados intersticiales que son característicosde las infecciones muy fuertes con este parásito.
Figura 5.15: Larvas recuperadas del embudo de Baermann. Es-tas larvas tienden a ser altamente móviles y fáciles de re c u p e-rar con el método de Baermann. Las larvas están caracteriza-
das por su largo esófago y el típico extremo de la cola en for-ma de gancho.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos46
Descripción. Galgo Irlandés macho,intacto, deseis años.
Historia. Este perro vive en una gran explota-
ción agropecuaria, se le permite vagar libre-
mente por la explotación y siempre vuelve a la
casa por la noche y duerme en la sala de estar.
Inicialmente se notó que el perro roncaba un
poco cuando dormía y luego pareció desarro-
llar una tos significativa.Si bien seguía activo y
continuaba roncando, parecía que cada vez es-
taba menos activo que antes. El perro había es-
tado constantemente en un programa de pre-
vención de Dirofilaria immitis desde su naci-miento y hace 6 meses se le realizó un análisis
de materia fecal de rutina que dio resultados
negativos para huevos y quistes de parásitos.
Exámen físico. El perro estaba atento, alerta y
jugaba activamente. No presentaba fiebre y el
hemograma completo y los análisis bioquími-
cos eran relativamente normales.Se notó que el
perro jadeaba y se decidió examinarlo median-
te una broncoscopía.
Evaluación inicial. Se anestesió al perro y se lo
examinó con el broncoscopio. Se detectaron
nódulos en las diversas bifurcaciones de la tra-
quea y los bronquios, algunos de estos nódulos
tenían más de un centímetro de diámetro. Se
estimó que había probablemente más de 50 de
estos nódulos que se podían ver con el bron-
coscopio. Se extrajeron varios nódulos;uno se
envió para un análisis histopatológico y otro se
examinó groseramente en solución salina.Se
determinó que el nódulo que se examinó gro-
seramente era una masa de pequeños helmin-
tos en movi-
miento.
Diagnósticopresuntivo.Filaroides os-
leri
CASO 10
Plan diagnósticoE nviar el nódulo ex t raído para realizar un análisis histo-p a t o l ó gi c o .
Diagnóstico: Filaroides osleriDespués de descubrir los nódulos, se realizó unexámen de materia fecal por flotación centrifuga cons u l fato de zinc que resultó positivo para grandes canti-dades de larvas de Fi l a roides osleri . La flotación fe c a lrealizada previamente había sido una flotación estacio-n a ria con nitrato de sodio y se asumió que esto hab í acausado que no se detectaran las larva s .
R e s u l t a d oSe administró al perro fenbendazole (Panacur) dura n t e10 días.Al mismo tiempo, se ex t ra j e ron la mayoría delos nódulos por escisión utilizando el bro n c o s c o p i o .
Después de tres semanas,una flotación centrífuga cons u l fato de zinc reveló que todavía había gran cantidadde larvas en las heces. Como el tratamiento con fe n-bendazole no pudo eliminar la infe c c i ó n , esto llevó aun segundo tratamiento con leva m i s o l e . O t ra fl o t a c i ó ncentrífuga con sulfato de zinc de las heces del perro alas tres semanas de haber concluido el tratamiento vo l- vió a revelar larvas en las heces. Una segunda tanda del evamisole eliminó el parásito de las heces del perro .
Figura 5.18: Nódulo de F. Osleriextraído por resección durante lavisualización con un tuboe n d o t r a q u e a l .
Figura 5.17: Larva de Fila-roides osleri (también co-nocida como Oslerus osleri)recuperada de una flotación
centrífuga con sulfato dezinc. Estas larvas no sonmuy activas y por lo generalno se recupera ninguna delos embudos de Baerm a n n .
Figura 5.19: Corte histológico a través de un
nódulo cortado que muestra secciones a travésde la gran cantidad de helmintos enro s c a d o sd e n t ro del nódulo.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 47
Descripción. Labrador Retriever macho, intac-to, de 6 meses de vida.
Historia. Se presentó un cachorro sano con dia-
rrea. Casi desde el nacimiento había recibido
tratamiento preventivo para Dirofilaria immitis.
Exámen físico. No hubo hallazgos significati-
vos; el hemograma completo y los análisis bio-
químicos fueron normales. Un exámen de ruti-
na de la materia fecal utilizando el método de
flotación centrífuga con sulfato de zinc reveló
larvas en las heces.
Evaluación inicial. La causa de la diarrea era
una infección por Strongyloides stercoralis.Se
identificaron larvas en las heces por la forma
del esófago y la presencia de un gran primor-
dio genital.
Diagnóstico presuntivo. Infección por Strongy-
loides stercoralis
CASO 11
Plan diagnósticoEl hecho de que este perro era positivo para S. S t e rc o-ra l i s , que la infección se transmite tanto por penetra-ción a través de la piel como por vía de infección tra n s-m a m a ria y que el perro había sido adquirido re c i e n t e-
mente a un gran criador de cach o rros donde vivía eníntimo contacto con mu chos otros perros sugería quela infección podría estar presente en otros cach o rro sdel mismo cri a d e ro . Se contactó al ve t e ri n a rio del cri a-d e ro quien pro p o rcionó heces de algunos de los otro sp e rro s . Estas mu e s t ras fecales se ex a m i n a ron con la téc-nica del embudo de Baermann para aumentar la sensi-bilidad del diag n ó s t i c o . Con el uso del método del em-budo de Baerm a n n , cinco de siete mu e s t ras fecales quef u e ron examinadas provenientes de perros de todas lasedades y de dos camadas dife rentes dieron positivo pa-ra la infe c c i ó n .
Diagnóstico: Infección por Strongyloidesstercoralis en este cachorro y otros prove-nientes del mismo criadero
R e s u l t a d oEn el momento de la visita a la cl í n i c a , se trató al perro
con una inoculación subcutánea terapéutica de ive r-
m e c t i n a . Una mu e s t ra de materia fecal tomada dos se-
manas después del tratamiento y examinada con el em-
budo de Baermann no contenía larva s .
Después de que todas las mu e s t ras fecales del cri a d e ro
también mostra ron la presencia de larvas de Stro n gy l o i-des sterc o ra l i s , todos los perros del establecimiento fue-
ron tratados con una dosis terapéutica de ive rm e c t i n a .
Dos semanas después del tra t a m i e n t o , se tomó un con-
junto adicional de mu e s t ras fecales que se ex a m i n a ro n
p a ra detectar la presencia de larvas utilizando el méto-
do del embudo de Baerm a n n . En este momento, se en-
contró que las heces de todos los perros eran negativa s
p a ra larva s .
La necesidad de tratamiento se vio incrementada por el
h e cho de que el S. S t e rc o ralis es un conocido patóge n o
zoonótico que se puede transmitir a los seres humanos.
Por lo tanto,e ra esencial que los dueños y el cri a d e ro
fuente estuvieran conscientes del potencial zoonóticode este parásito.Los estadíos en el suelo tienen una vida
re l a t i vamente cort a ,por lo tanto una buena y minu c i o s a
limpieza del entorno y el secado de todo el suelo o los
c o rrales era muy pro b able que limpiara el predio de to-
da larva potencialmente amenazadora en el entorn o .
Figura 5.20: Esta es la larva de primer estadío, rabditiforme deS t rongyloides stercoralis. Las características que cabe desta-car son el corto esófago que tiene tres porciones distintivas, elespacio bucal alineado con la cutícula y el primordio genital detamaño muy grande que se da entre el intestino y la pared del
cuerpo ventral justo posterior al cuerpo medio. Las larvas sonbastante móviles y se las puede recuperar con un embudo deB a e rm a n n .
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos48
Descripción. Gato doméstico intacto, de pelocorto, de seis años.
Historia. Este gato de interior-exterior reciente-
mente desarrolló una diarrea que consistía en
mezclas de heces mucosas con sangre.Estos
signos habían persistido durante aproximada-
mente una semana.El gato tenía antecedentes
de obstrucción y había estado sometido a una
dieta especial para disolución de cristales de es-
truvita. El dueño sospechaba que el gato seguía
siendo un cazador ávido.
Exámen físico. El gato estaba un poco letárgico y deprimido.Tal vez mostró un leve aumento
de la temperatura rectal. Los análisis de sangre
y clínicos eran relativamente normales,con un
posible aumento en la deshidrogenasa láctica
(DHL) y leve elevación en el número de leuco-
citos circulantes.
Evaluación inicial. El exámen de las heces por
flotación reveló unos pocos quistes de Giardia
felis. En el frotis directo de las heces se vieron
pequeños nemátodos. Los helmintos parecían
bastante grandes,de 1 a 2 mm de longitud,y no
se parecían a las larvas de Aelurostrongylus abs-
trusus, Metrastrongylidae de los gatos.
Diagnóstico presuntivo. Infección por un nemá-
todo, presentación sugestiva de especies de
Strongyloides,con gran número de larvas que
se eliminaban con las heces. El gato comenzó a
recibir fenbendazole durante 10 días.
CASO 12
Plan diagnósticoSe consultó sobre los helmintos re c u p e rados de lamu e s t ra fe c a l .
Diagnóstico: Trichinella spiralis
R e s u l t a d oSe completó la tanda de 10 días con fe n b e n d a z o l e . C o-
mo se esperab a , la diarrea cedió a medida que la fa s e
intestinal de la infección desapare c i ó . Sin embargo , re-
s u l t aba incierto si el fenbendazole habría impedido la
m i gración de pre - l a rvas a los músculos del gato.Ap rox i-
madamente a las tres semanas de la pre s e n t a c i ó n , el ga-
to pareció tener una moderada eosinofilia que desapa-
reció tra n s c u rrido otro mes. Casi al mismo tiempo, e l
gato pareció mostrar signos de comportamiento err á t i-
c o , b rotes de hipera c t i v i d a d , ocultamiento y períodosa p a rentemente muy largos con la mirada fija en el espa-
c i o .
A los seis meses,el gato desarrolló pro blemas de elimi-
nación uri n a ria re c u rre n t e s . Se encontró que el pro bl e-
ma se debía a la continua acumulación de cálculos de
e s t ruvita dentro de la vejiga a pesar del régimen con
dieta especial. Las ra d i o grafías reve l a ron que los cálcu-
los eran re l a t i vamente grandes y necesitaban ser ex t i r-
pados quirúrgi c a m e n t e . Se decidió esterilizar al gato al
mismo tiempo que se le ex t i r p aban los cálculos.Ta m-
bién se decidió que las secciones histológicas de los
músculos serían examinadas para ve ri ficar el éxito de la
t e rapia con fe n b e n d a z o l e .La histopatología realizada sobre el tejido muscular ex-
t raído en la cirugía reveló la presencia de unos pocos
quistes típicos de Tri chinella dentro de los músculos
del gato.El hecho de que el gato no tuviera otros sig-
nos de infección sugi rió que no había necesidad de se-
guir administrando ningún otro tratamiento para la in-
fe c c i ó n .
Figura 5.22: (Derecha) Hembra adulta de T. Spiralis re c u p e r a-da de las heces. Se puede notar que el helminto contiene el tí-
pico esófago esticosoma hacia el extremo anterior (a la iz-q u i e rda) y que tiene el cuerpo lleno de pequeñas pre - l a rv a sdesde el nivel del cuerpo medio hacia la cola (a la derecha).
Figura 5.21 (Derecha) Macho adulto de Trichinella Spira-lis recuperado de las heces. El macho también tiene unesófago esticosoma que se puede ver que se extiendedesde la cabeza (hacia la izquierda) y vuelve hacia la mi-tad del cuerpo. El macho no tiene espículas como muchosnemátodos pero, en cambio, tiene un par de grandes es-
t ructuras similares a papilas que le ayudan a agarrar a lahembra durante la copulación (una de estas se puede veren el extremo posterior hacia la dere c h a )
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 49
Figura 5.23. Sección que atraviesa el músculo de un gato ymuestra una célula del músculo infectada con larva de T.Spiralis de primer estadío.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos50
Descripción. Gata doméstica esterilizada,de pe-lo corto,de dos años.
Historia. Hacía sólo dos meses que los dueños
de la gata se habían mudado de Ann Arbor, Mi-
chigan a Seattle,Washington. La gata ha desarro-
llado una grave tos, tiene disnea y anorexia y
ha perdido peso durante las dos últimas sema-
nas.
Exámen físico. Se encontró que la gata tenía ás-
peros ruidos pulmonares. No parecía haber
compromiso de las vías respiratorias superio-
res. Un hemograma reveló un número de eosi-nófilos levemente elevado, pero de no ser por
esto, el análisis era normal.
Evaluación inicial. Neumonitis verminosa, más
probablemente Dirofilaria immitis.
Diagnóstico presuntivo. Enfermedad por Dirofi-
laria immitis.
CASO 13
Plan diagnósticoEn base a los signos, a la Diro fi l a ria immitis se la pusoen una posición bastante alta en la lista de descart e .Por lo tanto, se re a l i z a ron pruebas de antígenos y anti-cuerpos de la Diro fi l a ria immitis y ambas dieron re s u l-
tados negativos para ésta.El exámen fecal reveló la pre-sencia de huevos de nematelmintos, h u evos de capila-ria Eucoleus aero p h i l u s , y huevos de trematodo Pa rago-n i mus ke l l i c o t t i .Se tomó la decisión de sacar ra d i o grafías para ve ri fi c a r la presencia de P. Kellicotti en los pulmones y para ve-ri ficar que el gato no tuviera Diro fi l a ria immitis. No see s p e raba que la infección por E.A e rophilus pro d u j e raningún signo que concord a ra con los cambios ra d i o-gr á fi c o s .
Diagnóstico: Paragonimus kellicotti
R e s u l t a d oLas ra d i o grafías reve l a ron una lesión cavitacional en ellóbulo infe rior dere cho del pulmón. Se observó tam-bién consolidación de los pulmones como lo indica-ban las opacidades inters t i c i a l e s . Se esperaba que la ga-ta se hubiera infectado cuando todavía vivía en Mich i-g a n . Se consideró que el pro gre s i vo empeoramiento delos signos era la reacción dentro de los pulmones a losh u evos depositados dentro de los tejidos.Se decidió que se trataría a la gata con pra z i c u a n t e l( D roncit) para los trematodos de pulmón y se adminis-tró prazicuantel durante tres días en una dosis de 50m g / k g . Se tomaron ra d i o grafías una semana después
del tratamiento y las lesiones parecían haber empeora-d o , p re s u m i blemente debido a que los helmintos den-t ro del nódulo habían mu e rt o .Dos semanas más tard e ,la gata inició una tanda de 7 días de fenbendazole (Pa-nacur) en una dosis de 50 mg/kg con la intención deeliminar la infección por capilaria y asegurar la mu e rt ede los trematodos de pulmón.Un exámen de materia fecal y las ra d i o grafías sacadasdos meses después de la presentación inicial no reve l a-ron signos de infección por trematodos de pulmón.
Figura 5.24. Huevo de Paragonimus kellicotti. Nóteseel opérculo y el bulto abopercular o estructura con for-ma de espina en el extremo opuesto del huevo.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 51
Figura 5.25. Radiografía (vista ventral) que muestra múltiplesinfiltrados emparchados en el lóbulo inferior derecho, uno delos cuales es cavitario.
Figura 5.26. Radiografía (vista lateral) que muestra extenso infiltrado conuna lesión de la cavidad en el lóbulo inferior derecho. La lesión de lacavidad probablemente contiene un par de trematodos adultos. El
infiltrado se debe probablemente a una reacción a los huevos en el tejido.
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53Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos
Plan diagnósticoSe decidió que se trataría al perro y que se examina-ría la orina para volver a detectar la presencia de hue- vos dentro de un mes.
Diagnóstico: Pearsonema plica
ResultadoSe le prescribió un tratamiento de 10 días de fenben-dazole administrado en gránulos con el alimento endosis de 50 mg/kg de peso corporal. Se produjo otroperíodo aparente de obstrucción que nuevamente re-quirió el pasaje de un catéter para proporcionar ali-
vio al animal.A partir de entonces el perro no mostrómás signos.El exámen de orina después de un mesno reveló huevos del nemátodo capillaria.
Descripción. Caniche macho intacto de cinco
años.
Historia. El dueño había notado que el perro
hacía fuerza cuando orinaba y que eliminaba al-
gunas gotas de sangre en la orina.También notó
que orinaba con mayor frecuencia y que comía
menos durante las últimas semanas.
Exámen físico.El perro parecía gozar de buenasalud en general y tenía una temperatura rectal
que apenas superaba la normal.Era evidente
que el animal no se sentía cómodo con la pal-
pación y que tenía la vejiga distendida e hin-
chada.La palpación de la vejiga reveló que el
perro sentía dolor. Se le suministró un sedante
y se pasó un catéter urinario sin resultados que
produjo un volumen de orina. No parecía tener
ningún signo significativo de urolitos y se deci-
dió que una radiografía no era garantía.
Evaluación inicial. Se notó que la orina conte-
nía varios glóbulos rojos y unos pocos glóbulosblancos.El exámen del sedimento reveló una
gran cantidad de huevos del nemátodo capilla-
ria, Pearsonema plica.
Diagnóstico presuntivo. Se decidió que el pe-
rro sufría una obstrucción uretral como efecto
secundario de una cistitis estéril que probable-
mente era el resultado de una infección de la
pared de la vejiga con Pearsonema plica.
CASO 14
Capítulo 6: Parásitos detectados en las heces—Estudio de casos
Figura 6.1. Huevo del nemátodo capillaria Pearsonema plica, que
es uno de los pocos huevos que se encuentran en la orina de losp e rros. La especie que se encuentra en los gatos por lo general seconsidera que es Pearsonema feliscati.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 55
Plan diagnósticoSe realizaron radiografías y análisis de sangre. Lasradiografías del corazón y los pulmones revelaronagrandamiento de las cavidades derechas del corazón,la arteria pulmonar principal y las arteriaspulmonares en los lóbulos del pulmón.También seobservó obstrucción y engrosamiento de las arteriaspulmonares.La prueba de antígenos para Dirofilariaimmitis dio resultado positivo y había un grannúmero de microfilarias presentes en las películassanguíneas que habían sido preparadas para realizar los hemogramas. La hemólisis de la sangre sugeríasíndrome de vena cava y la ecografía reveló lapresencia de helmintos en la vena cava inferior.
Diagnóstico: Síndrome de vena cava(Infección por Dirofilaria immitis)
ResultadoDada la gravedad del diagnóstico de síndrome de vena cava,se decidió que la única forma de salvar alperro era con una intervención quirúrgica paraextraer la mayor cantidad posible de helmintos.Sesedó al perro y con anestesia local se le realizó unaflebotomía en la vena yugular. Se extrajeron loshelmintos con pinzas de cocodrilo. Se monitoreócuidadosamente al perro durante los días siguientes y
se recuperó bien. Después de un mes,se lo trató condiclorhidrato de melarsomina (Immiticide®;Merial)que toleró muy bien. Luego se le administró unadosis preventiva de rutina para Dirofilaria immitis.Este caso fue sorprendente porque el perro vivía enun área donde no se considera que haya Dirofilariaimmitis. Probablemente el perro se infectó en otrolugar antes de llegar al refugio donde fue adoptado yaque la infección es de larga duración.
Descripción. Beagle macho intacto de cuatro
años.
Historia. El perro presentaba una grave enfer-
medad respiratoria. Los primeros signos que
notaron los dueños estaban relacionados con
que el animal se cansaba rápido cuando hacía
ejercicio. El estado del perro empeoraba pro-
gresivamente y había tenido dos episodios de
síncope. Este animal había sido adoptado en
un refugio cuando tenía aproximadamente un
año y desde entonces siempre había vivido en
el norte de Colorado.No había visitado al vete-
rinario recientemente y había recibido las vacu-
nas contra la rabia en un programa de servicio
comunitario.
Exámen físico. El perro presentaba tos severa y
molestias respiratorias. En la cavidad abdominal
se evidenció ascitis.Las muestras de sangre pre-
sentaron signos de hemólisis.
Evaluación inicial. El perro presentaba dolor agudo con significativa cardiopatía en las cavi-
dades derechas.
Diagnóstico presuntivo. Insuficiencia cardíaca
congestiva.
CASO 15
Capítulo 7: Parásitos detectados en la sangre—Estudio de casos
Figura 7.1. Microfilaria de Dirofilaria immitis teñida conG i e m s a .
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos56
Descripción. Cachorro de Labrador Retriever de 5 meses de vida
Historia. Este cachorro nació normal, pero a co-
mienzos de la décima semana de vida desarro-
lló una parálisis de las extremidades traseras
que continuó avanzando. Parecía que también
las extremidades delanteras estaban un poco
afectadas y el cachorro llego al punto en que
apenas se podía mover. Uno de los otros ca-
chorros de la camada murió al poco tiempo de
nacer, pero los demás cachorros de la camada
no mostraron signos de infección. La madre pa-
recía normal.
Exámen físico. El cachorro estaba despierto y
alerta sin signos aparentes de dolor. Presentaba
contractura de las articulaciones tanto en las
extremidades traseras como delanteras.
Evaluación inicial. La presentación era contrac-
tura de las articulaciones probablemente como
resultado de una poliradiculitis.
Diagnóstico presuntivo. El cuadro era bastante
representativo de la presentación clínica de la
neosporosis neonatal.
CASO 16
Plan diagnósticoPa ra confi rm a r,se tomaron mu e s t ras de suero y se lase nvió a un lab o ra t o rio de diag n ó s t i c o .
Diagnóstico: Infección por Neospora cani-n i u m
R e s u l t a d oComo se esperab a , los resultados de la serología confi r-
m a ron el diagnóstico cl í n i c o .Ya se había pre p a rado a
los dueños para un diagnóstico de neosporosis y se les
s u gi rió la eutanasia.Se sacri ficó al animal. Se solicitó
p resentar al cach o rro para una necropsia y los dueños
e s t u v i e ron de acuerd o . La histopatología reveló la pre-
sencia de organismos dentro de las fi b ras nerv i o s a s .
Se info rmó a los dueños que los casos de infe c c i ó n
neonatal por Neospora caninum pasan de la madre alos cach o rros durante re i t e rados embara z o s . Por lo tan-
t o , se sugi rió esterilizar a la hembra para que no vo l v i e-
ra a tener cría por miedo a tener una repetición de los
signos observados en este cach o rro .
Figura 7.2. Lo más pro-bable es que este ca-c h o rro de Labrador Re-triever se haya infectadoen el útero con Neospo-ra caninum. Los signosson evidencia de lascontracturas de las ex-
t remidades que ocurre ncuando se dañan losn e rvios en el perro enc recimiento. Los venda-jes en los pies indicanque se intentó pro t e g e ral perro de las abrasio-nes cuando intentabac a m i n a r.
Figura 7.3. Corte a través del músculo quemuestra un quiste en una célula muscular.
Figura 7.4. Micrografía electrónica de los organismos en una célula de
Schwann que muestra el daño causado a la vaina de mielina (La imagenes gentileza del desaparecido Profesor John Cummings).
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57Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos
Descripción. Mastín macho entero de cuatromeses de vida.
Historia. Este perro de 18 kg que vivía en Okla-
homa hacía dos semanas que estaba inapetente
cuando los dueños hicieron la consulta con el
veterinario.Durante este tiempo el perro había
hecho materia fecal blanda y había perdido casi
un kilo de peso corporal.Se había tratado al pe-
rro con varias tandas de antibióticos entre ellos
enrofloxacina, trimetoprima-sulfa y cloranfeni-
col. El perro estaba al día con todas las vacunas
y había recibido prednisona durante 3 días jus-
to antes de la presentación.
Exámen físico. El perro estaba flaco y presenta-
ba una leve linfoadenopatía. Tenía fiebre leve
(40ºC). Se encontró anemia no regenerativa mo-
derada que era normocrómica y normocítica y
también una leve linfopenia. No se detectaron
parásitos en el análisis de materia fecal.
Evaluación inicial. Se tomaron aspirados con
aguja fina de un nódulo linfático poplíteo
agrandado. Los frotis realizados con los aspira-
dos se tiñeron con tinción de Wright-Giemsa.
Los frotis contenían linfocitos maduros y linfo-
blastos desparramados. Había numerosos orga-
nismos extracelulares identificados como trofo-
zoitos de Trypanosoma cruzi por ser fusiformes
y tener cinetoplasto posterior grande, núcleo
central y membrana ondulante.
Diagnóstico presuntivo. Infección por Trypano-
soma cruzi.
CASO 17
Plan diagnósticoSe ve ri ficó la infección mediante dos pruebas adiciona-l e s : aislación de cultivos celulares de organismos prove-n i entes de aspirados de nódulos linfáticos adicionales y se-rología utilizando una prueba de anticuerpos con fl u o re s-
cencia indire c t a .Ambas pruebas ve ri fi c a ron el resultado dela observación inicial realizada en el aspirado teñido.
Diagnóstico: Trypanosoma cruzi
R e s u l t a d oDebido a la mala prognosis para tratar esta infección en
los perro s , se sugi rió que el dueño considera ra la posibi-
lidad de sacri ficar a este animal. Esta fue la decisión del
dueño y también se obtuvo la autorización para re a l i z a r
una necropsia y un exámen patológico al perro . E l
exámen histológico de los dive rsos tejidos mu s c u l a re s ,
i n cluso el cora z ó n , reveló grandes cantidades de estadíosa m a s t i gota de los organismos presentes en los tejidos.
Por lo ge n e ra l , las infecciones en los seres humanos se
a d q u i e ren cuando una persona frota las heces de los
grandes insectos triatomidas que se alimentan de sangre
en la picadura causada por el art r ó p o d o .En los perro s ,
se cree que la infección puede adquiri rse por la inge s-
tión de los mismos insectos.Cuando los insectos se
aplastan en la boca del perro , los organismos iniciarán la
i n fección penetrando en la mucosa bucal.Los estadíos
t ri p o m a s t i gotas en la sangre de los perros son dire c t a-
mente infecciosos para otros huéspedes, i n cluso las per-
s o n a s ;por lo tanto la manipulación de la sangre de ani-
males potencialmente infectados se debe realizar cuida-dosamente para evitar pinch a rse con las ag u j a s . En la
m ayoría de los casos crónicos, los estadíos en el torre n t e
sanguíneo son bastante ra ro s ; la transmisión por estadíos
en la sangre por lo ge n e ral sería un pro blema en los pe-
rros dadores de sangre y se los debe analizar para detec-
tar esta potencial infe c c i ó n .
Figura 7.5. La película de sangre con tin-ción de Giemsa muestra tres tripomasti-gotas de Trypanosoma cruzi, que, a dife-rencia de los de tripanosomas africanos,tienden a tener forma de "C" en lugar def o rma de "S" cuando se los ve en pelícu-las de sangre. La tripomastigota de T.c ruzi tiene un cinetoplasto muy grande enel extremo posterior que parece sobre s a-lir en el citoplasma y las formas divididasno se observan dentro de la sangre .
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos58
Figura 7.6. La preparación con tinción de Giemsa muestra losestadíos promastigota de T. cruzi que se obtienen en cultivo.
Figura 7.7. Este corte histológico a través del tejido muscularmuestra dos nidos de amastigotas dentro de las fibrasmusculares.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 59
Descripción. Pastor Alemán macho entero decuatro años.
Historia. El perro había pasado los últimos seis
meses en Grecia con la familia de su dueño.
Desde que volvió a su casa,mostraba signos de
anorexia,pérdida progresiva de peso y depre-
sión. Mientras estuvo en Grecia, el perro estuvo
sano, había visitado al veterinario para una con-
sulta de rutina y le habían administrado trata-
miento preventivo para Dirofilaria immitis.Ade-
más, recibía una dosis mensual de imidaclopri-
da (Advantage®;Bayer) para la prevención de
pulgas. El perro vivía principalmente adentrode la casa, sólo salía en ocasiones para realizar
caminatas por el campo con la familia. El due-
ño informó que la consistencia de la materia fe-
cal y la frecuencia de la defecación y micción
eran normales.
Exámen físico. Se notó que el perro tenía fie-
bre (temperatura rectal 40.5ºC) y membranas
mucosas pálidas.Al palparlo se observó que te-
nía el bazo agrandado. No se observaron lesio-
nes dérmicas. Se encontró que el hematocrito
era 28%.
Evaluación inicial. Dado el antecedente del via-
je y los signos, parecía que había una enferme-
dad sistémica que podría estar relacionada con
diversos agentes infecciosos como Leishmania,
especie Ehrlichia,especie Rickettsia o Babesia.
Diagnóstico presuntivo. Enfermedad infecciosa
potencialmente relacionada con uno o varios
agentes infecciosos que podrían haber sido ad-
quiridos en Grecia
CASO 18
Plan diagnósticoSe pre p a ra ron frotis de sangre y se los tiñó con tinciónde Diff-Quik y W ri g h t / G i e m s a . Se tomaron mu e s t ras des u e ro y se las presentó para obtener la serología parae h r l i chiosis y ri ckettsiosis canina. Se decidió que para
seguir trabajando en la leishmaniosis se esperarían losresultados de las pruebas para estas otras dos infe c c i o-n e s .El frotis de sangre reveló merozoitos de Babesia ca-nis en los glóbulos ro j o s . Después de va rios días, se en-t re g a ron los resultados de la serología y el perro re s u l t óser sero l ó gicamente negativo para las otras infe c c i o n e s .
Diagnóstico: Babesia canis
R e s u l t a d oSe inició el tratamiento utilizando dipropionato de imi-
docarb (Imizol®; S ch e ring-Plough para Salud A n i m a l )
en una dosis subcutánea de 6,6 mg/kg. El tra t a m i e n t ose repitió a las dos semanas (se re a l i z a ron dos tra t a-
mientos en total).Al mes del primer tra t a m i e n t o , se vo l-
v i e ron a examinar las películas de sangre y no se ev i-
d e n c i a ron organismos en los frotis de sangre .Al mes
del tra t a m i e n t o , el bazo seguía un poco agrandado pero
el hematocrito estaba dentro de los va l o res límite nor-
m a l e s .
Debido a los signos pre s e n t e s , también se sospechó de
leishmaniasis como causa potencial o infección conco-
mitante en este caso.A los 2 meses, la enfe rmedad del
p e rro había mejorado notoriamente pero se decidió
que sería mejor ve ri ficar si el perro era negativo para
L e i s h m a n i a . Por lo tanto, se tomó una mu e s t ra de suero
y se la envió a un lab o ra t o rio comercial (Heska Corp.,
Fo rt Collins, C O ) . Los resultados del análisis reve l a ro n
que el perro no tenía anticuerpos para Leishmania.A
los seis meses del tratamiento para Babesia canis,el pe-
rro no tenía ningún signo que pudiera estar re l a c i o n a-
do con cualquiera de los patóge n o s .
Figura 7.8. Película de sangre continción de Giemsa que muestra un
glóbulo rojo con un par de mero z o i t o sde Babesia canis con forma de lágrimaen una célula.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos60
Descripción. Gato Siamés de cinco años.
Historia. El gato presentaba una enfermedad
de duración desconocida. El dueño informó
que su gato había desaparecido durante varios
días y que había aparecido bastante enfermo.
Después de haberlo cuidado durante dos días
sin lograr mejoría,el dueño llevó al gato a la clí-
nica. Era un animal de interior-exterior que vi-
vía en los suburbios del sur de Arkansas.
Exámen físico. El gato estaba deprimido y tenía
una temperatura rectal de 37.5ºC.Al ingresar a
la clínica, presentaba severa ascitis e ictericia y molestias respiratorias relativamente graves.Los
ensayos ELISA realizados en el lugar dieron re-
sultado negativo para el Virus de la Inmunodefi-
ciencia Felina y el Virus de la Leucemia Felina.
La material fecal parecía normal,pero hacía va-
rios días que el gato no comía. La orina era de
color marrón oscuro. El hematocrito era 22%.
Se prepararon y tiñeron portaobjetos con san-
gre. Los glóbulos rojos contenían elementos
identificados en ese momento como Haemo-
bartonella.
Evaluación inicial. Se inició la administración
endovenosa de solución de lactato sódico com-
puesta y al gato se le colocó una inyección sub-
cutánea de enrofloxacina.
Diagnóstico presuntivo. Infección sistémica, he-
mobartonelosis, o tal vez enfermedad sistémica
por aparato digestivo perforado o trauma .
CASO 19
Plan diagnósticoM o n i t o rear y estab i l i z a r.
Diagnóstico: Cytauxzoon felis
Las infecciones por Cytauxzoon felis transmitidas por las garrapatas,que es un organismo que existe natu-
ralmente en los gatos monteses sin signos de enfer-
medad declarada,con frecuencia resultan fatales para
los gatos domésticos. Sin embargo,algunos gatos do-
mésticos han sobrevivido a la infección y algunos de
estos gatos sobrevivientes han recibido tratamiento
(por ejemplo con dipropionato de imidocarb [Imizol]
o antibióticos) mientras que otros no recibieron nin-
gún tratamiento.Se cree que las aislaciones pueden
diferir en cuanto al grado de virulencia.
Los estadíos anulares muy pequeños de Cytauxzoon
presentes en los glóbulos rojos de los gatos son bas-
tante pequeños en comparación con los de Babesiacanis de los perros.Se parecen a la forma más peque-
ña de babesiosis canina,Babesia gibsoni.Por desgra-
cia, los gatos que sucumben a una enfermedad grave
causada por citauxzoonosis con frecuencia no pre-
sentan estadíos en los glóbulos rojos; los estadíos en
los macrófagos que ocluyen los vasos sanguíneos ocu-
rren antes del asentamiento de la mayoría de los esta-
díos en los glóbulos rojos.Una biopsia de médula
ósea o de un nódulo linfático tal vez podría ayudar a
mejorar el diagnóstico de infección con la identifica-
ción de los macrófagos hipertrofiados.
Figura 7.9. Película de sangre teñida que
muestra varios glóbulos ro j o sparasitados por los pequeños tro f o z o i t o sde Cytauxzoon felis con forma anular.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 61
R e s u l t a d oEl gato empeoraba rápidamente. Se le administró líquido
por vía endovenosa pero siguió desarrollando molestias
re s p i ra t o rias cada vez más seve ra s . El gato mu rió a las
48 horas de haber ingresado al hospital.Se realizó una
n e c ropsia y el hígado, los pulmones, los riñones y el ba-zo apare c i e ron conge s t i o n a d o s . Se env i a ron mu e s t ras de
tejido de estos órganos a un lab o ra t o rio de diagnóstico
p a ra poder determinar la causa de la mu e rt e .La histopa-
tología reveló oclusión de todos los vasos en los órg a n o s
p resentados con células altamente agrandadas que con-
tenían nu m e rosos merozoitos del agente causal, C y t a u x-
zoon fe l i s .Al examinar nu evamente la película de sangreteñida se vio que los organismos presentes eran C. fe l i s ,
y no Haemobartonella fe l i s .
Figura 7.10. Corte a través del tejido pulmonar del gato. La ima-gen muestra un corte longitudinal de un vaso sanguíneo que tie-ne el lumen completamente obstruido por los grandes macrófa-gos hipertrofiados parasitados por C. felis.
Figura 7.11. Corte a través del tejido pulmonar del gato. Laimagen muestra un corte a través de un vaso obstruido conlos mismos estadíos presentes en el corte longitudinal en laFigura 7.10.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 63
Plan diagnósticoRealizar un análisis de materia fecal, una ecografía y una prueba de antígenos fecales para los virus.
Diagnóstico: Heterobilharzia americanaUna vez que se ha realizado el diagnóstico, el exámen
exhaustivo de las heces mediante la simple sedimen-
tación posterior a la dilución en solución salina reve-
la una gran cantidad de huevos de esta especie de
trematodo.
Se trató a la perra como paciente interno con praci-
cuantel en una dosis elevada de 50 mg/kg (10 veces
la dosis utilizada típicamente para tratar parásitos in-
testinales).La perra toleró bien el tratamiento y a las
6 semanas aproximadamente había retornado a su
comportamiento y a su peso normales.El hecho de
que ahora la perra viviera en la ciudad significaba
que probablemente no sería susceptible a repetir la
infección por nadar en ríos pantanosos con cercaria
infecciosa .
ResultadoNo se diagnosticaron virus y no se detectaron parási-tos mediante la prueba de flotación estacionaria. Serealizó una flotación con sulfato de zinc para buscar Giardia,pero no se encontraron organismos. De ma-nera similar, las pruebas de antígenos para Giardia y Cryptosporidium fueron negativas. La ecografía reve-ló recorridos intestinales levemente engrosados. Sibien la perra había estado bajo tratamiento preventi- vo mensual de rutina para Dirofilaria immitis que po-
Descripción. Hembra de cinco años,cazadora
de mapaches,esterilizada.
Historia.Aproximadamente tres semanas antes
de visitar la clínica, la perra comenzó con dia-
rrea. Salvo este síntoma y la pérdida de peso
durante el ultimo mes, estaba sana. La perra
recibe un tratamiento preventivo de rutina para
Dirofilaria immitis y usa collares para pulgas
que le cambian mensualmente. La perra se mu-
dó recientemente de la zona rural de Louisiana
a Nueva Orleans.
Exámen físico. La perra parecía normal salvo
que se veía levemente delgada.Al palparla, se
notó un recorrido intestinal un poco engrosado
y fibrosis en el hígado.Parece haber una leve
eosinofilia según el hemograma y parece que la
orina contiene proteína incrementada.
Evaluación inicial. Parece que la perra tiene en-
teritis de etiología desconocida.
Diagnóstico presuntivo. Enteritis causada por
virus (parvovirus, coronavirus),bacterias (coli-
bacilosis, salmonelosis),parásitos (Trichuris tri-
chiura,ancylostomas,heteroesquistosomosis) y
toxinas (cuerpos extraños, plomo, zinc), gas-
troenteritis hemorrágica, invaginación intesti-
nal, enfermedad sistémica (insuficiencia renal o
cardíaca)
CASO 20
Capítulo 8: Parásitos detectados en muestras de tejido— Estudio de casos
Figura 8.1. Corte histológico a través de una muestra de biop-sia de hígado que presenta dos huevos de trematodo Hetero b i l-h a rzia americana en el tejido hepático.
Figura 8.2. Corte histológico a través de un vaso en la muestrade biopsia del hígado que exhibe un corte transversal a través
de un macho adulto enroscado alrededor de un helminto hem-bra más delgado. Las áreas más oscuras dentro del helmintoson el intestino.
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dría haber eliminado otras infecciones por nemato-dos, se le administró pracicuantel / embonato de pi-rantel / febantel (Drontal Tablets Plus).El estado de la perra no cambia y la diarrea y la pérdi-da de peso parecen empeorar. Por lo tanto,se realiza
una laparotomía exploratoria.Al abrir la cavidad abdo-minal, se nota que el hígado está firme y veteado. Setoma una muestra del hígado para realizar una biop-sia. Se observan objetos pequeños y elongados con
forma de gusano en las venas mesentéricas y se tomauno de éstos objetos.El exámen del material de la biopsia revela huevos deltrematodo esquistosomático, Heterobilharzia america-na, en los tejidos hepáticos.Además, se observa que el
objeto que parecía un gusano recuperado de la venamesentérica es un par adulto de trematodos.
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos64
Figura 8.3. Macho y hembra adultos de H. americana (teñidos de rojo) recuperados de una vena mesentérica. El macho,más grande y con cuerpo más grueso, retiene a la hembra más delgada dentro de su canal ginofórico.
Figura 8.4. Huevo de H. americana recuperado con el métodode sedimentación fecal. Obsérvese que el huevo contiene unmiracidio completamente desarrollado y que si se lo colocaraen agua en lugar de solución salina podría desovar. La
imagen es gentileza del Dr. J. Flowers, North Carolina StateU n i v e r s i t y, Raleigh, NC.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 65
Descripción. Gato doméstico entero, de pelocorto, de nueve años.
Historia. El gato, originariamente de Oklahoma,
visitó al veterinario por alopecia en el pabellón
auditivo.
Exámen físico. El gato presentaba alopecia en
aproximadamente dos tercios del pabellón in-
terno y un tercio del pabellón externo en am-
bos oídos.También presentaba una moderada
descamación alrededor de los márgenes de los
pabellones en ambos oídos. En todos los de-
más aspectos, el gato parecía relativamente nor-mal. Un análisis de materia fecal de rutina no
mostró ningún estadío parásito detectable. El
gato había estado recibiendo ivermectina.
(Heartgard para Gatos) como tratamiento pre-
ventivo para Dirofilaria immitis y una dosis re-
gular de imidacloprid (Advantage) para el con-
trol de pulgas.
Evaluación inicial. Se consideró que el gato pre-
sentaba una afección dérmica que coincidía
con dermatofitosis, sarna o leishmaniasis.
Diagnóstico presuntivo. Dermatitis infecciosa
posiblemente causada por dermatofitos (Mi-
crosporum o Trichophyton), sarna (notoédrica
o demodéctica), o leishmaniasis.
CASO 21
Plan diagnósticoSe trató al gato por las tres afe c c i o n e s . Se ex a m i n a ro nlos oídos del gato con una lámpara de Wood y no seo b s e rvó fl u o re s c e n c i a . Se ex t ra j e ron pelos de la zonap e ri f é rica a la lesión para realizar un cultivo de hongo s
con un medio de prueba para derm a t o fitos que dio re-sultado negativo cuando se lo examinó a los 6 días. S eencontró que los raspajes de piel pre p a rados en aceitem i n e ral no contenían garrapatas Notoedres ni Demo-d ex . Un frotis de raspaje de piel con tinción de W ri g h t -Giemsa reveló nu m e rosas células con fo rmas amastigo-tas lo cual llevó a diagnosticar leishmaniasis.
Diagnóstico: Leishmania mexicana
R e s u l t a d oEl diagnóstico de leishmaniasis se hizo en base a fro t i s
teñidos de las lesiones de los oídos.La leishmaniasis vis-c e ral se considera ra ra en los gatos, por lo tanto se con-
sideró que era una infección cutánea por Leishmania
m ex i c a n a . Las opciones potenciales de tra t a m i e n t o
e ran eliminar quirúrgicamente el pabellón de ambos oí-
dos o realizar una terapia ex p e rimental con una tanda
de seis semanas de itra c o n a z o l e . El dueño eligió re a l i z a r
la escisión de los pab e l l o n e s . La eliminación quirúrgi c a
del tejido afectado no presentó complicaciones y el ga-
to se curó sin re c u rrencia de las lesiones.
La infección en el gato causó preocupación por el po-
tencial de transmisión zoonótica al dueño o al pers o n a l
del hospital.Esto tendría que ocurrir a través de la
t ransmisión directa de los organismos a una lesión o
h e rida ab i e rta en la piel de la persona que manipula al
g a t o . Si bien se consideró que el ri e s go era pequeño, s e
pensó que era posible que las lesiones no desapare c e-
rían espontáneamente y que la amenaza estaría pre s e n-
t e .Por lo tanto,se consideró que tratarlo era la única
o p c i ó n .
Figura 8.5. Este macrófago en una preparación de la piel continción de Giemsa muestra un macrófago lleno del estadíoamastigota de Leishmania mexicanum. Morfológicamente, las
f o rmas amastigotas no se pueden distinguir de las otrasespecies de Leishmania y cuando están en los macrófagos nose pueden distinguir de las de Trypanosoma cru z i .
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos66
Descripción.Terrier de Norwich macho,entero,de siete años.
Historia. El perro recientemente había presen-
tado alopecia en la cara y en la parte posterior
de las rodillas de las patas traseras.También se
notó pérdida de pelo en las orejas. Esto ocurría
desde hacía varios meses. El perro parecía estar
un poco pruriginoso, pero no en exceso. No ha
habido cambios significativos en la dieta ni
cambios en la casa donde vive el perro. El pe-
rro está al día con las vacunas y recibe el trata-
miento preventivo de 6 meses de duración para
Dirofilaria immitis todos los veranos. Hace dosaños, tuvo un problema de pulgas, pero el uso
de milbemicina oxima / lufenuron (Sentinel®;
Novartis) en el tratamiento para la prevención
de Dirofilaria immitis controló el problema de
las pulgas.Un exámen de material fecal realiza-
do en la última visita,hace 6 meses, dio resulta-
dos negativos para todos los parásitos.
Exámen físico. El perro estaba atento, alerta y
normal al palparlo.Se observó alopecia en el
hocico y en la parte de atrás de las rodillas.
Las orejas parecían tener las puntas inflamadas.
El exámen con lámpara de Wood no reveló
fluorescencia.
Evaluación inicial. Infección dermatológica: los
potenciales diferenciales incluyen demodicosis,
sarna sarcóptica,dermatofitosis.
Diagnóstico presuntivo. Lesiones dermatológi-
cas que concuerdan con infección por derma-
tofitos o garrapatas.
CASO 22
Plan diagnósticoSe realizaron raspajes de piel para obtener un diag-
nóstico. Los raspajes se tiñeron con tinción de Diff-
Quik y Gram. Los raspajes también se desmenuzaron
en aceite mineral usando agujas finas sobre el por-
taobjetos antes de colocar un cubreobjetos sobre elmaterial para examinarlo.
Diagnóstico: Sarcoptes scabiei
ResultadoSe encontraron garrapatas Sarcoptes scabiei (se reco-
nocen por su forma redondeada y pretarsos largos y
no segmentados) en los raspajes de piel. Se trató al
perro con una inoculación subcutánea de ivermecti-
na (200 µg/kg).Al mes, las lesiones habían mejorado
significativamente y el perro inició un tratamientopreventivo para Dirofilaria immitis con una dosis
mensual de selamectina (Revolution).A los seis me-
ses, el perro ya no presentaba lesiones y los raspajes
de piel tomados en ese momento dieron resultado ne-
gativo para garrapatas.
Figura 8.7. Macho adulto de garrapata Sarcoptes scabieirecuperada en un raspaje de piel.
Figura 8.6. Hembra adulta de garrapata Sarcoptes scabieirecuperada en un raspaje de piel. Se notan bien las grandesespinas en el cuerpo.
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 67
Descripción. Gata doméstica de pelo corto, es-terilizada, de ocho años.
Historia. La gata había sido adoptada en un re-
fugio de animales hacía dos meses y tenía pro-
blemas de micción inadecuada en la casa. Se
la llevó a la clínica para consultar sobre cómo
minimizar el problema de micción.Se realizó
un exámen físico de rutina.
Exámen físico. La gata parecía normal y su pelo
estaba en buen estado.Tenía los nódulos linfáti-
cos inguinales agrandados y en el muslo trasero
derecho se sintió algo que parecía ser un perdi-gón; sin embargo, la falta de lesiones sugirió
que era una herida vieja. El reflejo auricular-pe-
dio era positivo y tenía los oídos llenos de una
suciedad fina de color gris amarronado que su-
gería la presencia de garrapatas.
Evaluación inicial. Gata normal con problemas
de conducta relacionados con la micción.Se
consideró que la lesión por el perdigón no re-
quería ningún tratamiento.El reflejo auricular-
pedio y la presencia de cera sugerían una alta
probabilidad de garrapatas en los oídos.
Diagnóstico presuntivo. Problemas de conducta
y potencial invasión de garrapatas en el oído.
CASO 23
Plan diagnósticoPreparación para una potencial infección urinaria;
exámen de los oídos para detectar garrapatas.
Diagnóstico: Otodectes cynotis
ResultadoEl exámen otoscópico reveló cientos de garrapatas en
cada oído. Esto también se pudo verificar colocando
una pequeña cantidad del material sobre un portaob-
jetos y examinándolo con un microscopio. Se le lim-
piaron los oídos masajeando con 1 mL de aceite mi-
neral en cada canal auditivo y un hisopo. Luego se tra-
tó la afección mediante la aplicación de ivermectina
(ACAREXX®;Blue Ridge Pharmaceuticals/IDEXX La-
boratories) en cada oído.
Los estudios para detectar una potencial infecciónurinaria no revelaron infección subyacente .La mic-
ción mejoró con la incorporación de más cajas sanita-
rias, sin embargo,si bien el problema se redujo, no
terminó. Luego el tratamiento comenzó a determi-
nar si el gato tenía aversión al sustrato o a la ubica-
ción o preferencia por algún sustrato. El dueño mos-
tró muchos deseos de pasar por las diversas pruebas
hasta rectificar el problema.
Figura 8.9. Garrapata hembra adulta O. cynotis recuperada conun hisopo para oídos.
Figura 8.8. Huevos de Otodectes cynotis recuperados del canalauditivo en la limpieza con hisopos. Dentro del cascarón delos huevos, pueden verse las garrapatas en desarro l l o .
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Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos68
Descripción. Perra cruza de cuatro años.Historia. Esta perra era miembro activo regular
de la casa en el sur de Wisconsin. Con frecuen-
cia acompañaba a la familia a los parques loca-
les y a campamentos y excursiones en canoa.
La perra había viajado mucho, había realizado
distintos viajes a varios estados del sur, había
hecho varios viajes largos a las montañas de
Colorado y había caminado mucho por el Sen-
dero de los Apalaches.La perra recibe atención
veterinaria de rutina y se le administra milbemi-
cina oxima / lufenuron (Sentinel) y fipronil
(Frontline) regularmente desde que nació.Una
semana antes, la perra había desarrollado unaprotuberancia en el lado interno de la pata de-
lantera izquierda. La lesión de la pata delantera
se convirtió en una pápula que se rompió.Los
dueños pensaban que veían algo que parecía
un hilo blanco o una parte de un tendón en la
herida. La perra no parece tener ningún otro
signo de infección.
Exámen físico. La perra parecía tener buena sa-
lud, no presentaba signos de infección generali-
zada. No tenía fiebre y no hubo hallazgos signi-
ficativos en el hemograma o en el panel de aná-
lisis bioquímicos.
Evaluación inicial. La perra presentaba una le-
sión en el codillo que podía coincidir con un
trauma o algún tipo de lesión del tubo de dre-
naje. Se decidió realizar tinciones con Diff-Quik
y Gram en el lugar de la lesión. El exámen del
portaobjetos reveló la presencia de algunos
neutrófilos polimorfonucleares (PMN) y eosinó-
filos y unos pocos cocos gram negativos.Tam-
bién se observaron algunas estructuras largas
con forma de gusano de aproximadamente 600
µm de longitud.
Diagnóstico presuntivo. Dracunculus,Dirofilaria
immitis, rhabditis u otro parásito nemátodo que
vive en la piel.
CASO 24
Plan diagnósticoExaminar las larvas para obtener detallesmorfológicos.Las larvas también se pueden examinar en preparaciones frescas con solución salina; laslarvas de Dracunculus deben tener una cola larga que
termina bien en punta.
Diagnóstico: Dracunculus insignis
ResultadoSe decidió que la cirugía sería el mejor tratamientopara eliminar el gusano.Se anestesió a la perra y sehizo una incisión quirúrgica a lo largo del área delextremo libre del gusano. Con una cuidadosadisección fue posible eliminar todo el gusano. Lapreocupación inicial era que el gusano iba a requerir una incisión muy extendida que causaría una cicatriz
significativa.Por suerte, el gusano estaba replegadoen sí mismo varias veces, lo cuál permitió que laextracción resultara sencilla.Una segunda preocupación potencial era laposibilidad de que hubiera más de un gusano dentrode la perra. No se observó un segundo gusano en ellugar de la incisión, pero existía la preocupación deque pudiera haber gusanos presentes en otros tejidos.No se le administró Ivermectina porque se cree quetiene muy poco efecto en los adultos de este parásito.Se informó a los dueños que la perra se habíainfectado por la ingestión de agua con copépodos deeste nemátodo,que se encuentran típicamente en lasnutrias y otros carnívoros.Existía poco o ningún
riesgo de que los dueños hubieran adquirido elmismo parásito de manera similar.
Figura 8.11. Larva de D. insignis extraída del líquido re c u p e r a d ode alrededor del área donde salía el gusano de los tejidos de lapata.
Figura 8.10. Pata de un perro con una hembra de Dracunculusinsignis saliente.
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Descripción. Labrador Retriever color chocola-te, macho, intacto, de 4 años.
Historia. Se examinó a este perro del sur de
Vermont como parte de un exámen de salud de
rutina. El perro recibía tratamiento preventivo
de rutina para Dirofilaria immitis y los análisis
anteriores de materia fecal habían dado resulta-
dos negativos.Si bien era por lo general una
mascota de interior, a veces tenía acceso a los
terrenos que rodeaban la casa, que se encuen-
tra en el límite de la ciudad.
Exámen físico. El perro parece estar sano y enbuen estado físico. D u rante el exámen físico se le
sacó una garrapata de la base del oído dere ch o .
En todo lo demás, el perro parecía norm a l .
Evaluación inicial. Invasión de garrapatas.
Diagnóstico presuntivo. Ixodes dammini (o Ixo-
des scapularis).
CASO 25
Plan diagnósticoSe identificó a la garrapata como un adulto del géne-ro Ixodes mediante la identificación de la ranura pre-anal que es característica de este género. Surgen trespeguntas en relación con la presencia de la garrapata.
Primera pregunta, la garrapata aislada ¿es una especiede Ixodes dammini o alguna otra especie de Ixodes,como por ejemplo, Ixodes cookei, que es menos pro-bable que actúe como vector de la enfermedad de Ly-me? Segunda,la garrapata, ¿alberga al agente de la en-fermedad de Lyme,Borrelia burgdorferi? Tercera, lagarrapata ¿está lo suficientemente congestionada co-mo para haber transmitido el agente al perro? Por precaución,se comenzó a administrar al perro unatanda de tetraciclina.También se recomendó darle fi-pronil (Frontline) para el control de las garrapatas.Seenvió la garrapata a un laboratorio de diagnóstico lo-cal para su identificación específica y para determinar mediante reacción en cadena de la polimerasa si esta-
ba infectada con espiroquetas.
Figura 8.12. Hembra adulta de ga-rrapata Ixodes dammini (Ixodes
scapularis) que se ha alimentadodurante dos días.
Figura 8.13. Hembra adulta de ga-rrapata Ixodes dammini que se haalimentado durante cuatro días.
Figura 8.14. Hembra adulta de garrapata Ixodesdammini que se ha alimentado durante seisdías.
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Diagnóstico: Ixodes dammini (Ixodes scapu-laris) A diferencia de los seres humanos,que por lo generalse infectan con la enfermedad de Lyme por medio delas garrapatas en estadíos ninfales, resulta típico que
los perros se infecten con el agente de las garrapatasen estadío adulto. Si bien existen casos de transmisióntransovárica de la hembra a los huevos, dichas trans-misiones son raras y los estadíos de larva casi nuncase infectan con el agente.Sólo cuando las larvas se ali-mentan de un roedor infectado adquieren la infecciónque luego está presente en los estadíos ninfales y adultos. La garrapata tiene que permanecer adheridaal huésped durante más de 24 y hasta 48 horas paraque las espiroquetas se abran camino en las glándulassalivales, a través de la picadura de garrapata y lleguenal perro. Por lo tanto,si se sacan las garrapatas el mis-
mo día que se adquirieron, las probabilidades detransmisión al perro son mínimas. Se debe tener cui-dado de no aplastar la garrapata al sacarla porque sino se pueden liberar las espiroquetas y entrar a la he-rida causada por la picadura.
ResultadoEl laboratorio confirmó que la garrapata era de la es-pecie Ixodes scapularis y que era positiva para elagente de la enfermedad de Lyme.El gran tamaño dela garrapata en el momento que se la extrajo sugeríaque había estado en el perro y se había alimentado almenos durante varios días y que habría tenido tiempode transmitir el agente al perro.Por lo tanto, la tandade antibióticos era probablemente la acción correcta.
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos70
Figura 8.15. Ninfa no alimentada de I.dammini. Este es el estadío queusualmente transmite la enfermedad deLyme a los seres humanos.
Figura 8.16. Ninfa no alimentada de I.dammini; vista ventral para mostrar laranura pre-anal.
Figura 8.17. Larva de I. dammini re c i é nsalida y la cáscara de su huevo. La ranurap re-anal no se puede ver en esta vista dorsalde la larv a .
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Descripción. Gato doméstico entero, de pelocorto, de cuatro años.
Historia. Los dueños notaron una inflamación
debajo de la mandíbula derecha del gato.
Exámen físico. El gato parece responder total-
mente a la manipulación.No hay signos de do-
lor en el lugar de la inflamación. La inflamación
parece firme y tiene un poco más de 1 cm de
diámetro. Un minucioso exámen de la lesión re-
vela un pequeño orificio en la piel cercano al
centro de la lesión.
Diagnóstico presuntivo. Posible cuerpo extraño
o miasis.
CASO 26
Plan diagnósticoEscisión
Diagnóstico: Especie Cuterebra
Este caso ocurrió en el norte de Arizona y casos simi-lares ocurren en gran parte de toda Norteamérica. Enel noreste de los Estado Unidos, las infecciones esta-cionarias ocurren principalmente entre Agosto y Sep-tiembre. Las lesiones se pueden presentar como eneste caso o como una enfermedad sistémica más gra- ve. Parece haber tres formas principales de presenta-ción: una tos transitoria posiblemente relacionadacon la migración de las larvas a través de los pulmo-nes, el desarrollo de la larva madura en un mosquitoen la piel o la desgraciada migración de la larva al sis-tema nervioso, por ejemplo el cerebro o la médula es-pinal. Ocasionalmente, se han sacado larvas de la cavi-dad nasal o de la órbita del ojo.
ResultadoDespués de aplicar anestesia local, se hace una pe-
queña incisión en el lugar del orificio sobre la piel. En
este momento, se observó que había un organismo vi-
vo ubicado ahí adentro.El organismo era muy proba-
blemente una larva de una especie de Cuterebra. Con
cuidado se sacó la larva del tejido. Por el gran tama-
ño y las grandes espinas negras se identificó a la larva
como Cuterebra.Se lavó la herida pero no se indicó
ningún otro tratamiento.
Figura 8.19. Larva extraída del género Cuterebra. Lal a rva se identifica por su gran tamaño, las hileras deespinas negras y, si se le examina con cuidado ele x t remo posterior, por los característicos espiráculos
(no se pueden ver en esta ilustración con estam a g n i f i c a c i ó n ) .
Figura 8.18. Lesión en la quijada de un gato de la cual
se extrajo una larva de Cutere b r a . .
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Parte III
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-A-Amastigota, estadíos: Estadío en el ciclo de vida de
muchos protozoos tripanosomas que están formados
por una célula redondeada u oval con un núcleo,el ci-
netoplasto, y un cuerpo basal pero que no tienen un
flagelo que fluya libre.
Antígenos, pruebas de: Pruebas diagnósticas que de-
tectan los antígeno de ciertos parásitos cuando están
presentes en una muestra de materia fecal o sangre.
Actualmente se cuenta con inmunoensayos de fase
sólida y ensayos inmunoabsorbentes vinculados a en-
zimas (ELISA) para Cryptosporidium y Giardia que se
utilizan en muestras de materia fecal. En el caso de
muestras de sangre, se cuenta con kits para pruebas
de antígenos para Dirofilaria immitis con el objetivo
de determinar si un perro tiene infección por Dirofila-
ria immitis.
Aspirados de médula ósea: Pequeños volúmenes de
médula ósea extraídos de la pelvis o el esternón con
anestesia general o local que se examinan con un mi-
croscopio para identificar las anormalidades en las cé-
lulas sanguíneas en desarrollo.
Axoestilo: Estructura elongada con forma de tubo o varilla de soporte que pasa a través del eje longitudi-
nal de algunos protozoos flagelados,como por ejem-
plo las tricomonas. Puede ser simple o múltiple, fila-
mentoso o rígido y con frecuencia proyecta el extre-
mo posterior hacia afuera.
-B-Baermann, aparato de: Este método se usa para diag-
nosticar infecciones causadas por nematodos en las
cuales aparecen larvas,en lugar de huevos,en las he-ces. El dispositivo consta de un embudo unido a un
trozo de tubo de goma con un clamp; la materia fecal
se coloca sobre una gasa o colador de té y se la sus-
pende en el agua dentro del embudo.Las larvas salen
de las heces y se asientan en el fondo del tubo,donde
se pueden juntar colocando una gota de la punta so-
bre un portaobjetos o centrifugando el contenido en
un tubo de centrífuga.
Bradizoitos: Pequeñas formas de Toxoplasma gondii si-
milares a una coma que se encuentran en grupos en-
cerrados en un pseudoquiste. Los bradizoitos, a dife-
rencia de los taquizoitos, tienen tendencia a ser resis-tentes a la digestión de pepsinas y a contener glucó-
geno almacenado.
-C-Copépodos: Pequeños artrópodos crustáceos acuáti-
cos que sirven como huésped intermedio para los pa-
rásitos de Diphyllobothrium, Dracunculus,y otros pa-
rásitos.
Cultivo de materia fecal: Método diagnóstico para la
detección de protozoos en el cual se inocula el medio
de cultivo con hisopados fecales. Existe un kit comer-
cial para realizar la prueba y detectar tricomonas utili-
zando sobres con medio de cultivo para cultivar trico-
monas a temperatura ambiente.
-D-Diff-Quik, tinciones: Tinciones de tipo Giemsa con
una metodología simplificada que permite una prepa-
ración más rápida de un producto terminado para su
exámen.
-E-Ensayo inmunoabsorbente vinculado a enzimas (ELI-
SA): Inmunoensayo que se realiza utilizando un anti-
cuerpo rotulado con un marcador de enzimas para
diagnosticar parasitosis. Según cómo esté configurado
el test, el ensayo se puede utilizar para detectar antí-
genos o anticuerpos,circulantes, a parásitos específi-
cos en la sangre de un animal. En parasitología veteri-
naria, se cuenta con kits comerciales para el ensayo
ELISA para el diagnóstico de Cryptosporidium y Giar-
dia en materia fecal. En los laboratorios comerciales
se utilizan ensayos ELISA para la detección de anti-
cuerpos y para evaluar si los animales han estado ex-
puestos a Leishmania,Toxoplasma, u otras Dirofilariaimmitis y también muchos otros parásitos.
Esporoblasto: Esporoquiste inmaduro de un parásito
coccidio.
Esporoquiste: Estadío en el ciclo de vida de diversos
trematodos que se desarrolla a partir de un huevo. Por
desgracia, el mismo término se utiliza para describir
las etapas de diagnóstico de la especie Sarcocystis
que se eliminan con las heces de los carnívoros y que
representan los estadíos producidos dentro del ovo-
quiste de un protozoo apicomplejo.
Esporozoito: Estadío en el ciclo de vida de algunos
protozoos apicomplejos (por ejemplo, Plasmodium)
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Glosario de Términos
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que resulta de las divisiones por reducción que ocu-
rren dentro del ovoquiste y que constituye el estadío
infeccioso que se produce por la fusión de gametos.
-F-Filariforme, esófago: Forma de esófago que se en-
cuentra en los nematodos que no está dividida en tres
secciones distinguibles. Este tipo de esófago presente
en las larvas metastrongiloides lleva este nombre por
el tipo de esófago que se encuentra en los nematodos
filaroides. (Comparar con Rabditiforme, esófago).
Flagelos: Apéndices con forma de látigo de los proto-
zoos utilizados para motilidad en la superficie. Los
zoólogos con frecuencia llaman a la estructura de las
células de protozoo "ondulipodium" para diferenciarlade los flagelos de las células de las bacterias que son
estructuras morfológicamentes bastante diferentes.
Flotación estacionaria, métodos de: Método de diag-
nóstico en el cual los huevos y quistes de parásitos se
hacen flotar a la superficie de un medio líquido y lue-
go se examinan con un microscopio. La solución debe
tener una densidad boyante superior a la de los hue-
vos pero inferior a la de otros materiales que puedan
estar presentes en las heces para que ocurra la separa-
ción (es ideal una gravedad específica de 1,2).Entre
los reactivos comunes que se utilizan están la sal demesa (salmuera), el sulfato de zinc, el sulfato de mag-
nesio y el nitrato de sodio. El proceso se puede reali-
zar utilizando materiales que se tengan en la clínica o
el laboratorio o adquiriendo un kit comercial.
Flotación, métodos de: Cualquiera de varios procedi-
mientos utilizados para concentrar los huevos de pa-
rásitos para una detección más confiable que el
exámen directo de las muestras de materia fecal.Se
utiliza un líquido con una gravedad específica lo sufi-
cientemente alta (~1,180 o superior) para hacer que
los huevos floten a la superficie.Ver también Flota-
ción con sulfato de zinc,Flotación estacionaria y Flo-tación centrífuga de azúcar.
Flotación centrífuga de azúcar: Método de diagnósti-
co comúnmente utilizado para detectar huevos y quis-
tes de parásitos en una muestra de materia fecal. Se
suspende la muestra de materia fecal en agua, la mez-
cla acuosa se pasa por un tamiz de fieltro y se centrí-
fuga. Luego, el pellet se vuelve a suspender en una
solución de azúcar con una gravedad específica de
aproximadamente 1,3. Se coloca un cubreobjetos so-
bre el tubo de la centrífuga y se vuelve a centrifugar.
Finalmente, se retira el cubreobjetos y se lo coloca en
un portaobjetos para microscopio para examinarlo.
Flotación con nitrato de sodio: Método diagnóstico
para visualizar los huevos de parásitos en una muestra
de materia fecal.Es la misma técnica que para la flota-
ción con sulfato de zinc,pero se utiliza nitrato de so-
dio en lugar de usar sulfato de zinc.Ver Flotación con
sulfato de zinc.
Flotación con sulfato de magnesio: Método diagnósti-
co para visualizar los huevos de parásitos en una
muestra de materia fecal.Es la misma técnica que pa-
ra la flotación con sulfato de zinc, pero se utiliza sulfa-
to de magnesio (sales de Epsom),una alternativa muy
económica,en lugar de usar sulfato de zinc.Ver Flota-
ción con sulfato de zinc.
Flotación con sulfato de zinc: Método diagnóstico rá-
pido y relativamente sencillo para visualizar los hue-
vos y quistes de parásitos en una muestra de materia
fecal. Se suspende la muestra en agua,se la filtra a tra-
vés de una gasa, se la centrifuga, se la vuelve a suspen-der en solución de sulfato de zinc y se la vuelve a
centrifugar. Se utiliza un loop de alambre para tomar
la capa de la superficie que se coloca en un portaob-
jetos y se examina con un microscopio para detectar
huevos o quistes de protozoos.
Frotis de materia fecal: Técnica de diagnóstico básica
en la cual una pequeña cantidad de heces se despa-
rrama suavemente en una gota de solución salina so-
bre un portaobjetos para microscopio.
Frotis de piel: Técnica de diagnóstico básica en lacual se desparraman las células de la piel en un por-
taobjeto para microscopio para ser examinadas. La tin-
ción con Giemsa u otras tinciones hematológicas pue-
den mejorar la visualización de los parásitos,como
por ejemplo los estadíos amastigotas de los tripanoso-
mas y Leishmania.
Frotis de sangre: Se coloca una pequeña muestra de
sangre en un portaobjetos para estudiarla con un mi-
croscopio. Por lo general, se seca la sangre en el por-
taobjetos y luego se la fija y tiñe utilizando varios mé-
todos diferentes. En un frotis de sangre "delgado", el
objetivo es dispersar la sangre con el borde de otroportaobjetos de modo tal que el frotis tenga sólo una
célula de espesor.
Frotis directo de materia fecal: Técnica de diagnóstico
básica en la cual una pequeña cantidad de heces se
desparrama suavemente en una gota de solución sali-
na sobre un portaobjetos para microscopio.
-G-
Giemsa, tinción: Compuesto de azul de metileno-eosi-na y azul de metileno utilizado para la tinción diferen-
cial de los frotis de sangre.
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-H-Hemograma: Registro escrito o gráfico de los recuen-
tos de células sanguíneas.
Hidrómetro: Instrumento utilizado para determinar la
gravedad específica de un líquido.
-K-Knott, técnica de: Técnica de diagnóstico para análisis
de sangre a fin de detectar microfilarias en base al he-
cho de que las soluciones hipo-osmóticas causarán la
lisis de los glóbulos rojos sin afectar a las microfila-
rias. Por lo general se utiliza formol al 2% para lisar los
glóbulos rojos y fijar las microfilarias para su posterior exámen.Luego se centrifuga la muestra y se puede
agregar tinción con azul de metileno para hacer que
las microfilarias sean más fáciles de visualizar.
-M-Membrana, técnicas de: Técnica de diagnóstico para
examinar muestras de sangre para la detección de mi-
crofilarias. Se lisan las células sanguíneas como en la
técnica de Knott, pero en lugar de usar centrifuga-ción, la sangre lisada se hace pasar por un filtro de
membrana.Luego se coloca el filtro en un portaobje-
tos y se lo examina con un microscopio.
Merozoitos: Estadío en el ciclo de vida de algunos
Protozoos (por ejemplo,Plasmodium) que se desarro-
llan a partir de un esporozoito.
Microfilarias: Estadío previo a la larva de los parásitos
nematodos (Filarioideas) que se encuentran en la san-
gre y los tejidos.
Miracidio: Larva ciliada de primer estadío de un tre-matodo. Estadío que sale de los huevos.
Montaje húmedo: Técnica de diagnóstico básica en la
cual se coloca una gota de sangre en un portaobjetos
y se la examina con un microscopio.El montaje hú-
medo es un medio rápido para diagnosticar infeccio-
nes por tripanosomas o nematodos filarioides si hay
estadíos suficientes circulando en la sangre en el mo-
mento de realizar el exámen.
Muestras fijadas: Muestras tratadas con un conservan-
te, como por ejemplo formol, para su conservación.
-O-Ovoquiste: Estadío en el ciclo de vida de un protozoo
apicomplejo caracterizado por un zigota encapsulado
que representa la fusión de un macrogameto y un mi-crogameto.
Opérculo: Estructura con forma de tapa o cubierta.
-P-Proglotis: Segmento del cuerpo de una tenia.
-R-Rabditiforme, esófago: Forma de esófago que se en-
cu e n t ra en los nematodos en los cuales hay tres porc i o-
nes bien distinguidas, una porción anterior mu s c u l a r,
una porción media más delgada y un bulbo cerca de la
unión con el intestino. Esta fo rma lleva el nombre de
los nematodos rabditoides de vida libre ya que todos
éstos por lo ge n e ral poseen este tipo de esófago .
Raspaje de piel: Se realiza un raspaje de piel para ob-
tener una muestra para la detección de parásitos ex-
ternos como por ejemplo las garrapatas de las espe-
cies Sarcoptes scabei, Notoedres cati y Demodex.Se
obtiene la muestra utilizando un bisturí y una peque-
ña cantidad de aceite mineral y luego se examina el
material con un microscopio. El material ceroso de
los oídos se puede examinar de la misma forma para
detectar garrapatas de los oídos.
Romanovsky, tinción: Tinción con azul de metileno-
eosina utilizada para frotis de sangre.
-S-Sedimentación con ácido / acetato etílico, : Método
diagnóstico en el cual se prepara una mezcla aguada a
partir de heces frescas, se centrífuga y se suspende en
una solución ácida (por lo general HCl diluído).Se
agrega acetato etílico y, después de volver a centrifu-
gar, se examina el sedimento final con un microscopio
para detectar parásitos.Ver también Sedimentación,
ensayos de.
Sedimentación con formol / acetato etílico: Este mé-
todo es similar a la sedimentación con ácido / acetato
etílico, pero sustituye la solución de ácido por el for-
mol.Ver también Sedimentación con ácido / acetatoetílico y Sedimentación,ensayos de.
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Sedimentación, ensayos de: Método de diagnóstico
para detectar huevos de parásitos en una muestra de
materia fecal. Los ensayos de sedimentación se utili-
zan muy poco en medicina veterinaria;se prefieren
los métodos de flotación porque detectan en forma
efectiva los parásitos más comunes en los perros y ga-tos y porque los ensayos de sedimentación requieren
el exámen de una mayor cantidad de materia fecal.En
los ensayos de sedimentación con ácido / acetato etíli-
co y formol / acetato etílico se prepara una mezcla
acuosa que luego se pasa por un tamiz,se centrífuga,
decanta y mezcla con el ácido o la solución de for-
mol. Se agrega acetato etílico al tubo que se vuelve a
centrifugar y se examina el sedimento con un micros-
copio.
-T-Tripoamastigota, estadíos: Estadío en el ciclo de vida
de ciertos protozoos tripanosomatoides caracterizado
por un cuerpo esbelto y elongado con un cinetoplas-
to, membrana ondulante en toda la longitud del cuer-
po, y un flagelo que emerge del lateral del cuerpo.
Trofozoitos: Estadío de alimentación móvil y activo de
un protozoo.
-V-Vermiforme: Que se parece a un gusano tanto por la
forma como por el movimiento.
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Ash LR, Orihel TC. Parasites: A Guide to Laboratory
Procedures and Identification. Chicago:ASCP Press,
1987; 328 páginas. Es un excelente libro de métodos, sin embargo, contempla principalmente a los
parásitos de los seres humanos.
Ash LR, Orihel TC. Atlas of Human Parasitology, 4th
ed. Chicago:ASCP Press, 1997; 410 páginas. Atlas de
parasitología humana con hermosas ilustraciones,
proporciona también una introducción a cada
parásito y a los métodos de diagnóstico.
Bowman DD.Georgis’ Parasitology for
Veterinarians, 8th ed. Philadelphia:WB Saunders,
2002; 408 páginas. Texto general sobre parasitología
veterinaria que abarca los parásitos tanto de
animales grandes como pequeños.
Hendrix CM. Diagnostic Veterinary Parasitology,
2nd ed. St. Louis: Mosby, 1998; 321 páginas. Este libro
presenta una excelente y concisa descripción de los
métodos de diagnóstico para los parásitos de los
animales.
Foreyt WJ. Veterinary Parasitology, Reference
Manual, 5th ed.Ames, IA: Iowa State University Press,
2001; 244 páginas. Excelente guía de parasitología y
diagnóstico veterinario; contiene información
importante sobre parásitos exóticos.
Garcia,LS.Diagnostic Medical Parasitology, 4th ed.
Washington, DC:ASM Press,2001; 1092 páginas.
Excelente y detallada fuente bibliográfica sobre
parásitos y métodos de laboratorio para
laboratorios de parasitología en seres humanos.
Sloss MW, Kemp RL, Zajac AM. Veterinary Clinical
Parasitology, 6th ed.Ames, IA: Iowa State University
Press, 1994; 208 páginas. Ningún parasitólogo o
médico veterinario puede trabajar sin este práctico
manual.Pronto se publicará una edición aún
mejor con nuevos colores.
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Bibliografía sugerida
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Capítulo 1:Figura 1.1. Los materiales necesarios para realizar
un frotis directo son: cubreobjetos de22 x 22 mm (o de 18 x18 mm), unportaobjetos para microscopio,un aplicador, heces y solución salina.Siempre es mejor hacer la preparacióncon solución salina en lugar de agua,de modo que los trofozoitos vivospermanecerán viables y móviles.
Figura 1.2. Al preparar el frotis directo,es importante colocar una pequeña
cantidad de solución salina en elportaobjetos y luego agregar unapequeña cantidad de heces, más omenos del tamaño del extremo del apli-cador, aproximadamente 2 mm2. Luegose mezclan las heces con la soluciónsalina y se las desparrama hasta formar una mezcla relativamente clara (A).Sihay sólidos presentes, especialmentecomún cuando se administra a los anima-les, alimento seco, se pueden apartar concuidado los sólidos a un costado de lagota con el borde del cubreobjetos antes
de bajar el cubreobjetos sobre lapreparación (B).
Figura 1.3. Ya sea que se use sulfato de zinc o demagnesio,o nitrato de sodio, siempre esmejor verificar la gravedad específicacon un hidrómetro. El nitrato de sodio sepuede adquirir seco en una cantidadpre-medida para flotacionesestacionarias. El sulfato de zinc se pue-de a d q u i rir líquido con una gravedade s p e c í fica de 1,18. El sulfato de magnesioprobablemente sea la solución para
flotación más económica,pero algunassales de Epsom (si bien están graduadaspara alimentos y aprobadas para usar como laxante) pueden estar levementedescoloridas o pueden contener algunossólidos cuando están presente ensoluciones de gravedad específica 1,2; laelección de otra marca con frecuenciaresolverá estos problemas. (A)Este hidrómetro tiene una escala de1,000 (gravedad específica del agua) a1,220. (B) En esta imagen, el menisco see n c u e n t ra en 1,200, e n t re los números 80
(1,180) y 20 (1,220). Este hidrómetrosería inapropiado para verificar una solu-
ción azucarada pesada.
Figura 1.4. Al tomar la muestra de la parte superior
del tubo de la centrífuga, se lo debeempujar con cuidado hacia abajo en
forma recta a través de la parte superior
del líquido y luego se debe tirar en fo rm a
recta hacia arriba. En ocasiones,el
material que se encuentra en la parte
superior del tubo puede ser tan espeso
que se parece más a un barro que a un
menisco.En estos casos, parte del
material se puede trasladar del lateral del
loop al portaobjetos.
Figura 1.5. Cuando se traslada el loop al
portaobjetos del microscopio, se lo pue
de examinar como la simple y pequeña
porción tomada con el loop o debajo de
un cubreobjetos.La observación de una
o dos porciones tomadas con el loop
tiene la ventaja de que la muestra no se
desparrama debajo de una superficie
más grande como ocurre con el
cubreobjetos. La desventaja de
examinar la porción tomada con el loop
es que se puede secar si el examinador
tarda demasiado durante la observación.
Figura 1.6. El loop utilizado para tomar una muestra
de la parte superior de un tubo es más
fino que el loop típico que se utiliza en
microbiología y tiene un diámetro un
poco más grande. Es importante que el
loop sea de alambre resistente a la llama,
de lo contrario se derretirá.
La colocación del loop sobre la llama
parece ayudarlo a tomar la muestra del
menisco del tubo de la centrífuga.
En ocasiones,el loop acumulará una
costra de material seco producto de los
restos de heces y la colocación sobre lallama que se puede quebrar con cuidado
y sacar del alambre con el extremo de
un aplicador.
Figura 1.7. El Fecalyzer es un dispositivo de
flotación estacionaria que ha sido
desarrollado para la toma y el
procesamiento de muestras de materia
fecal.La parte interna se puede usar para
tomar una porción de las heces del tamaño
apropiado mediante la inserción del
extremo en las heces. Luego se puede
colocar la muestra en el recipiente
exterior y se la lleva a la clínica.
En el momento de examinar la muestra,
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Índice de Figuras
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se puede agregar medio de flotación y
mezclar la muestra girando el accesorio
de inserción dentro del soporte. Luego
se llena el accesorio de inserción con
solución de flotación de modo tal que se
forme un menisco positivo. Un tamizcolocado en el accesorio de inserción
evita que las grandes partículas floten en
la superficie. Luego se coloca un
cubreobjetos de 22 x 22 mm en la parte
superior del tubo y se lo deja reposar de
5 a 10 minutos. Por último,se retira el
cubreobjetos y se coloca en un
portaobjetos para microscopio para
determinar qué parásitos han flotado a la
superficie.
Figura 1.8. El Ovassay es un dispositivo para
recolección y procesamiento de materia
fecal que se utiliza para realizar unaflotación de materia fecal estacionaria.El
dispositivo interno se puede usar para
tomar una mu e s t ra del tamaño apro p i a d o
clavándolo en las heces. Luego,
el accesorio de inserción se puede
colocar en el soporte y llevar a la clínica.
En el momento de procesar la muestra,
se puede agregar medio de flotación al
tubo y mezclar las heces girando el
accesorio de inserción dentro del
soporte.
A continuación,se llena el accesorio deinserción con medio de flotación de
modo tal que se forme un menisco
positivo. Se coloca un cubreobjetos de
22 x 22 mm sobre el menisco y se lo deja
reposar de 5 a 10 minutos. Por último,se
re t i ra el cubreobjetos y se lo traslada a un
portaobjetos para microscopio para
identificar aquellos parásitos que han
flotado a la superficie.
Figura 1.9. Cuando se prepara el azúcar para la
flotación, por lo general se necesitan
aproximadamente 900 gr. cada 700 ml.de agua ( aproximadamente 1300 gr./l).
Será necesario agregar el azúcar lenta-
mente y disolverla revolviendo. Con fre-
cuencia se puede entibiar el agua para
ayudar en la disolución del azúcar, pero
se la debe enfriar antes de verificar la
gravedad específica con un hidrómetro.
A algunos les resulta muy útil preparar la
solución de azúcar en un hervidor doble
igual que cuando se hace caramelo. Es
cuando el producto se ha enfriado
agregar una pequeña cantidad de formol
(10 ml/l) para evitar que el moho crezcaen el medio.
Figura 1.10. Mezclar las heces en un vaso pequeño y
luego volcarlas sobre una gasa para
eliminar los sólidos antes de revolver y
mezclar con el azúcar. Algunos técnicos
pasan por alto la etapa de tamizado,pero
si esto se hace, los sólidos en la muestra
final pueden hacer que resulte muy difícil de examinar bajo el microscopio.
Figura 1.11. Una vez que se decantó el agua del
sedimento tamizado y centrifugado, se
debe agregar solución de azúcar
(aproximadamente 3 a 4 ml.) y el
sedimento debe quedar suspendido en la
solución de azúcar. Es importante que se
mezcle bien la muestra y esto resulta
más fácil si se usan dos aplicadores. Se
puede usar un mezclador Vortex si los
aplicadores están insertados en las
muestras,pero se puede generar grancantidad de burbujas de aire si no se
tiene cuidado.
Figura 1.12. Una vez que la centrífuga se detiene por
completo, se puede levantar el
cubreobjetos directamente de la parte
superior del tubo.
Figura 1.13. El cubreobjetos se debe colocar con
cuidado sobre un portaobjetos para
capturar la menor cantidad de burbujas
de aire que sea posible.
Figura 1.14. Cuando el acetato etílico se mezcla con
el agua fecal,el formol o la mezcla de
ácidos y luego se centrifuga, se formará
una capa entre el solvente orgánico y la
fase acuosa.Es necesario desalojar esta
obstrucción con un aplicador antes de
decantar el tubo.Se debe tener cuidado
al desalojar el material de las paredes del
tubo de modo tal que no vuelva a caer
en el pellet cuando decante.Si el pellet
está en alcohol ácido,probablemente sea
deseable volver a suspenderlo en aguaantes de colocarlo en un portaobjetos;
de lo contrario, tiende a no formar un
lodo sino que se desparrama
rápidamente a los bordes del
portaobjetos y se sale.
Figura 1.15. Este dispositivo consta de un embudo
unido a un tubo de goma por medio de
un clamp.La materia fecal se coloca
sobre un trozo de gasa o un colador de
té y se la suspende sobre agua en el
embudo. Las larvas salen de las heces y
pasan al agua. Con el tiempo, las larvasse asentarán en el fondo del tubo y se las
podrá recolectar ya sea colocando un
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gotero en la punta que gotee a un
portaobjetos o centrifugando el
contenido en un tubo de centrífuga y
examinando el sedimento.
Figura 1.16. Este es un ejemplo de un inmunoensayo
de fase sólida diseñado para usar conuna sola muestra (ProSpecT® Giar-
dia/Cryptosporidium Formato Rápido).
La prueba es similar a las desarrolladas
para detectar diversos antígenos y anti-
cuerpos en muestras de sangre o suero.
Las heces diluídas se aplican a la
membrana y, luego, después de una
serie de pasos, ocurrirá un cambio
colorimétrico en la membrana con
manchas que se oscurecerán si el
antígeno está presente en las heces.
Dichas pruebas han sido desarrolladaspara detectar los antígenos de Giardia y
Cryptosporidium.
La foto es gentileza de REMEL Inc.
Figura 1.17. Este es un ensayo ELISA que se ha usado
de rutina para detectar antígenos de
Cryptosporidium en materia fecal
(ProSpecT® Cryptosporidium Ensayo de
Microplacas;hay un ensayo similar para
Giardia).El costo de las placas hace que
la prueba sea muy cara, por lo tanto sólo
se utiliza de rutina en laboratorios de
diagnóstico centralizados. Por lo general
la muestra se analiza con una muestra decontrol positiva y negativa.
Los resultados se pueden leer
visualmente o mediante el uso de un
lector de ELISA. En la prueba mostrada
(A), las cubetas positivas se ponen de
color amarillo al finalizar la prueba y las
negativas quedan transparentes.
La intensidad del color se puede utilizar
como una aproximación para la
intensidad de la infección.Las fotos son
gentileza de REMEL Inc.
Figura 1.18. Hasta hace poco tiempo, no existían métodos que se aplicaran de rutina al
cultivo de organismos en un consultorio
veterinario. El desarrollo y la aplicación
del ensayo en sobres para detectar
infecciones por tricomonas en los gatos
parece ser un método que se puede usar
con mayor frecuencia.Este método se
desarrolló originalmente para el cultivo
de tricomonas de transmisión sexual del
tracto urogenital de ganado vacuno y de
seres humanos,sin embargo el kit para
ganado vacuno parece funcionar para el
cultivo de las tricomonas presentes enlas heces de los gatos. La foto es ge n t i l e z a
de BioMed Diagnostics, Inc.
Capítulo 2:Figura 2.1 La sedimentación centrífuga simple
seguida del exámen del sedimento des-
pués de la decantación,por lo general,proporcionará la mejor posibilidad de
éxito en la recuperación e identificación
de parásitos.
Capítulo 3:Figura 3.1. La colocación de una pequeña gota de
sangre sobre un portaobjetos es un mé
todo excelente para encontrar
microfilarias si están presentes,
cualquiera sea la cantidad. No hay nadamás reconfortante que preparar los
portaobjetos y ver microfilarias
reptantes.También es una forma bastante
buena de distinguir las microfilarias de
Dirofilaria immitis (que se muestran en
la figura) de las de Dipetalonema
reconditum;éstas últimas son capaces de
impulsarse con facilidad en la sangre
mientras que las microfilarias de
Dirofilaria immitis tienden sólo a
m ove rs e . Un hallazgo aún más intere s a n t e
es encontrar algo como un tripanosoma
en una de estas preparaciones.
Figura 3.2. Se transfiere 1 ml. de sangre, ya sea
fresca, tratada con ácido edético (EDTA)
o con heparina,a 10 ml de formol al 2%,
lo cual hace que se lisen los glóbulos ro j o s .
Figura 3.3. Una vez que se ha dejado reposar la
muestra durante 5 a 10 minutos para
permitir que los glóbulos rojos se lisen y
para darle tiempo a las microfilarias para
que el formol las fije, se centrifuga el
tubo para recolectar los glóbulosblancos y las microfilarias en el pellet.
Con frecuencia se agrega una pequeña
cantidad de tinción de metileno al pellet
para ayudar en la visualización de las
microfilarias.
Figura 3.4. El pellet se puede examinar sin tinción y
las microfilarias se pueden identificar
como estructuras delgadas similares a un
cabello con colas en punta. De hecho, se
puede realizar el análisis sin usar formol
y las microfilarias aún estarán reptando
si la pre p a ración se examina rápidamenteuna vez que se ha formado el pellet.
Originalmente,esta prueba se desarrolló
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para mirar las muestras transcurridos
varios días y hasta semanas después de
haber sido tomadas en el campo y la
tinción se agregaba de modo tal que los
diversos tipos de microfilarias que se
presentan comúnmente en los seres hu-manos pudieran ser distinguidos.
Figura 3.5. Con la tinción de azul de metileno
agre g a d a , los nu m e rosos núcleos dentro
de las microfilarias fijadas están teñidos
de azul haciendo que sea más fácil
identificar las microfilarias. Se debe tener
cuidado de no agregar demasiada
tinción, de lo contrario la muestra será
demasiado oscura para examinarla con
facilidad.
Capítulo 4:Figura 4.1. Los materiales necesarios para realizar
un raspaje de piel son aceite mineral,
fórceps,bisturí, portaobjetos para
microscopio y cubreobjetos.
Figura 4.2. Al realizar el raspaje de piel, puede ser
necesario raspar hasta que salga un poco
de sangre del lugar donde se realiza el
raspaje. Esto ocurre especialmentecuando se trata de Sarcoptes scabei,
parásito que vive a mayor profundidad.
La hoja del bisturí se sumerge en el
aceite mineral y luego se lo usa para
raspar la piel. Algunas de las costras
pueden ser bastante duras y esto puede
requerir que se las separe con los
fórceps antes de aplicar el cubreobjetos
al portaobjetos con el material.
Capítulo 5:Figura 5.1. El huevo de Toxocara canis es un buen
huevo para usar como referencia para
recordar por su tamaño; es apenas más
grande que la longitud del eje
longitudinal del Ancylostoma caninum y
tiene un diámetro que es casi igual a la
longitud del eje longitudinal de los
huevos de Trichuris vulpis y Uncinaria
stenocephala.Debajo de un objetivo de
10X que tiene la mayoría de los
microscopios que se usan para
diagnóstico, la distancia a través delcampo de visión es de aproximadamente
1,8 a 2 mm,o 1800 a 2000 µm.El huevo
de T. Canis tiene un diámetro
aproximado de 80 µm (el de T. Cati tiene
un diámetro levemente menor, alrededor
de 70 µm de diámetro), por lo tanto,
debajo de un objetivo de 10X, entrarán
entre 22 y 25 huevos de T. Canis en elcampo de visión. Debajo del objetivo de
40X, el campo de visión es de
aproximadamente 450 a 500 µm, por lo
tanto sólo alrededor de 6 de estos
huevos entrarán en una línea a lo largo
del campo de visión. El otro buen marco
de referencia son los quistes de Giardia
canis o G.cati. Estos quistes tienen una
longitud aproximada de 10 µm o
alrededor de un décimo del diámetro de
un huevo de T. canis. Por lo tanto, debajo
de un objetivo de 40X, se podrán ver 60
quistes de Giardia alineados a lo largodel campo de visión.
Figura 5.2. Huevo de Baylisascaris procyonis en
heces de perro.Este huevo es levemente
más pequeño que los huevos de
Toxocara canis y Toxascaris leonina,
tiene una cáscara marrón gruesa y por lo
general se elimina con una célula simple.
El exterior rugoso de la cáscara del
huevo no tiene un patrón como la
cáscara de los huevos de T. canis y es
rugoso y oscuro comparado con lacáscara del huevo de T. leonina.
Figura 5.3. Segmentos secos de Dipylidium caninum
que se parecen a pequeñas semillas
redondas de tamaño similar al de las
semillas de sésamo. (La muestra es
gentileza de la Dra. Jeanne Baines)
Figura 5.4. Uno de los segmentos secos que ha sido
re-hidratado para mostrar el aspecto
característico de D.Caninum.
Figura 5.5. Primer plano del segmento deD.Caninum para mostrar las esferas de
huevos contenidas dentro del segmento.
Figura 5.6. Se ha aplastado el segmento para liberar
las esferas de huevos (cinco) dentro del
área próxima al segmento.
Figura 5.7. Vista de una esfera de huevos simple
utilizando microscopía de contraste de
interferencia diferencial para mostrar el
aspecto de los organismos individuales
h exacantos dentro de las esfe ras de huevo s .
Figura 5.8. Dos embriones hexacantos individuales
de D.Caninum en los cuales se
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evidencian los ganchos de las larvas.
Figura 5.9. El huevo de este cestodo, Spirometra
mansonoides, se parece al huevo de un
trematodo.En esta muestra,el opérculo
difícil de discernir se encuentra en elextremo más puntudo del huevo.
Algunas muestras parecerán ser más
alargadas o tendrán extremos más
similares en cuanto al tamaño.
Los huevos son similares en tamaño a los
de las especies Paragonimus y a veces
se deberán examinar varias muestras
antes de poder confi rmar un diag n ó s t i c o .
Figura 5.10. En el centro de esta imagen de una
flotación con azúcar de heces de gato
vista con objetivo de 40X, se puede ver
un solo ovoquiste de Toxoplasma gondiisin esporulaciones.En las muestras de
materia fecal que no son tan frescas, el
esporoblasto central puede haberse
dividido en dos esporoquistes separados.
Figura 5.11. Trofozoito de una tricomona visto bajo
microscopía diferencial de interferencia
que muestra la membrana ondulante,
axoestilo que se proyecta desde el
extremo posterior y una punta de los
flagelos dirigidos anteriormente. En las
preparaciones frescas, estos organismosse detectan con mayor facilidad por su
movimiento al nadar.
Figura 5.12. Quistes de Giardia canis recuperados en
una flotación centrífuga con sulfato de
zinc.
Figura 5.13. Los ovoquistes de Cryptosporidium
canis,C. Felis, C.Parvum y C. Hominis
son morfológicamente indistinguibles.
Puede verse que los ovoquistes en las
flotaciones de azúcar tienen una
coloración levemente rosada causadapor la aberración esférica presente en la
mayoría de las lentes de bajo costo que
se usan en los microscopios de
diagnóstico.Con la óptica de alta
corrección presente en la mayoría de los
microscopios que se usan para
investigación, esta coloración rosada
tiende a desaparecer.
Figura 5.14. Esta es una imagen de dos ovoquistes
obtenida con una lente de 100X de
inmersión de aceite y microscopía de
interferencia diferencial para mostrar losesporozoitos y el cuerpo residual
presente dentro de cada ovoquiste.
Figura 5.15. Larvas recuperadas del embudo
de Baermann.Estas larvas tienden a ser
altamente móviles y fáciles de recuperar
con el método de Baermann. Las larvas
están caracterizadas por su largo esófago
y el típico extremo de la cola en formade gancho.
Figura 5.16. Radiografía de los pulmones del gato
que muestra los infiltrados parchados
intersticiales que son característicos de
las infecciones muy fuertes con este
parásito.
Figura 5.17. Larva de Filaroides osleri (también
conocida como Oslerus osleri)
recuperada de una flotación centrífuga
con sulfato de zinc. Estas larvas no son
muy activas y por lo general no serecupera ninguna de los embudos de
Baermann.
Figura 5.18. Nódulo de F. Osleri extraído por
resección durante la visualización con
un tubo endotraqueal.
Figura 5.19. Corte histológico a través de un nódulo
cortado que muestra secciones a través
de la gran cantidad de helmintos
enroscados dentro del nódulo.
Figura 5.20. Esta es la larva de primer estadío,
rabditiforme de Strongyloides stercoralis.
Las características que cabe destacar son
el corto esófago que tiene tres porciones
distintivas,el espacio bucal alineado con
la cutícula y el primordio genital de
tamaño muy grande que se da entre el
intestino y la pared del cuerpo ventral
justo posterior al cuerpo medio.
Las larvas son bastante móviles y se las
puede recuperar con un embudo de
Baermann.
Figura 5.21 Macho adulto de Trichinella Spiralis
recuperado de las heces.El macho
también tiene un esófago esticosoma
que se puede ver que se extiende desde
la cabeza (hacia la izquierda) y vuelve
hacia la mitad del cuerpo. El macho no
tiene espículas como muchos
nemátodos pero, en cambio,tiene un par
de grandes estructuras similares a
papilas que le ayudan a agarrar a la
hembra durante la copulación (una de
estas se puede ver en el extremo
posterior hacia la derecha)
Figura 5.22. Hembra adulta de T. Spiralis recuperada
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de las heces.Se puede notar que el
helminto contiene el típico esófago
esticosoma hacia el extremo anterior (a
la izquierda) y que tiene el cuerpo lleno
de pequeñas pre-larvas desde el nivel del
cuerpo medio hacia la cola (a la dere ch a ) .
Figura 5.23. Sección que atraviesa el músculo de un
gato y muestra una célula del músculo
infectada con larva de T. Spiralis de
primer estadío.
Figura 5.24. Huevo de Paragonimus kellicotti. Nótese
el opérculo y el bulto abvopercular o
estructura con forma de espina en el
extremo opuesto del huevo.
Figura 5.25. Radiografía (vista ventral) que muestra
múltiples infiltrados emparchados en ellóbulo inferior derecho, uno de los
cuales es cavitario.
Figura 5.26. Radiografía (vista lateral) que muestra
extenso infiltrado con una lesión de la
cavidad en el lóbulo inferior derecho. La
lesión de la cavidad probablemente con
tiene un par de trematodos adultos.
El infiltrado se debe probablemente a
una reacción a los huevos en el tejido.
Capítulo 6:Figura 6.1. Huevo del nemátodo Capillaria
pearsonema plica,que es uno de los
pocos huevos que se encuentran en la
orina de los perros.La especie que se
encuentra en los gatos por lo general se
considera que es Pearsonema feliscati.
Capítulo 7:Figura 7.1. Microfilaria de Dirofilaria immitis
teñida con Giemsa.
Figura 7.2. Lo más probable es que este cachorro de
Labrador Retriever se haya infectado en
el útero con Neospora caninum.Los
signos son evidencia de las contracturas
de las extremidades que ocurren cuando
se dañan los nervios en el perro en
crecimiento.Los vendajes en los pies
indican que se intentó proteger al perro
de las ab rasiones cuando intentaba caminar.
Figura 7.3. Corte a través del músculo que muestra
un quiste en una célula muscular.
Figura 7.4. Micrografía electrónica de los
organismos en una célula de Schwann
que muestra el daño causado a la vaina
de mielina.
Figura 7.5. La película de sangre con tinción de
Giemsa muestra tres tripomastigotas de
Trypanosoma cruzi,que, a diferencia de
los de tripanosomas africanos, tienden a
tener forma de "C" en lugar de forma de
"S" cuando se los ve en películas de
sangre.La tripomastigota de T. cruzi tiene
un cinetoplasto muy grande en el
extremo posterior que parece sobresalir
en el citoplasma y las formas divididas
no se observan dentro de la sangre.
Figura 7.6. La preparación con tinción de Giemsa
muestra los estadíos promastigota de T.
cruzi que se obtienen en cultivo.
Figura 7.7. Este corte histológico a través del tejido
muscular muestra dos nidos de
am a s t i gotas dentro de las fi b ras mu s c u l a re s .
Figura 7.8. Película de sangre con tinción de
Giemsa que muestra un glóbulo rojo con
un par de merozoitos de Babesia canis
con forma de lágrima en una célula.
Figura 7.9. Película de sangre teñida que muestra
varios glóbulos rojos parasitados por los
pequeños trofozoitos de Cytauxzoon
felis con forma anular.
Figura 7.10. Corte a través del tejido pulmonar del
gato. La imagen muestra un corte
longitudinal de un vaso sanguíneo que
tiene el lumen completamente obstruído
por los grandes macrófagos
hipertrofiados parasitados por C. felis.
Figura 7.11. Corte a través del tejido pulmonar del
gato. La imagen muestra un corte a
través de un vaso obstruído con los
mismos estadíos presentes en el corte
longitudinal en la Figura 7.10.
Capítulo 8:Figura 8.1. Corte histológico a través de una
muestra de biopsia de hígado que
presenta dos huevos de trematodoHeterobilharzia americana en el tejido
hepático.
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Figura 8.2. Corte histológico a través de un vaso en
la muestra de biopsia del hígado que
exhibe un corte transversal a través de
un macho adulto enroscado alrededor de
un helminto hembra más delgado.Las
áreas más oscuras dentro del helmintoson el intestino.
Figura 8.3. Macho y hembra adultos de
H. americana (teñidos de rojo)
recuperados de una vena mesentérica.El
macho, más grande y con cuerpo más
grueso, retiene a la hembra más delgada
dentro de su canal ginofórico.
Figura 8.4. Huevo de H.americana recuperado con
el método de sedimentación fecal.
Obsérvese que el huevo contiene un
miracidio completamente desarrollado y que si se lo colocara en agua en lugar de
solución salina podría desovar.
Figura 8.5. Este macrófago en una preparación de
piel con tinción de Giemsa muestra un
macrófago lleno del estadío amastigota
de Leishmania mexicanum.
Morfológicamente, las formas
amastigotas no se pueden distinguir de
las otras especies de Leishmania y cuando
están en los macrófagos no se pueden
distinguir de las de Trypanosoma cruzi.
Figura 8.6. Hembra adulta de garrapata Sarcoptes
scabiei recuperada en un raspaje de piel.
Se notan bien las grandes espinas en el
cuerpo.
Figura 8.7. Macho adulto de garrapata Sarcoptes
scabiei recuperada en un raspaje de piel.
Figura 8.8. Huevos de Otodectes cynotis
recuperados del canal auditivo en la lim
pieza con hisopos. Dentro del cascarón
de los huevos,pueden verse lasgarrapatas en desarrollo.
Figura 8.9. Garrapata hembra adulta O. cynotis
recuperada con un hisopo para oídos.
Figura 8.10. Pata de un perro con una hembra de
Dracunculus insignis saliente.
Figura 8.11. Larva de D. insignis extraída del líquido
recuperado de alrededor del área donde
salía el gusano de los tejidos de la pata.
Figura 8.12. Hembra adulta de garrapata Ixodesdammini (Ixodes scapularis) que se ha
alimentado durante dos días.
Figura 8.13. Hembra adulta de garrapata Ixodes
dammini que se ha alimentado durante
cuatro días.
Figura 8.14. Hembra adulta de garrapata Ixodes
dammini que se ha alimentado duranteseis días.
Figura 8.15. Ninfa no alimentada de I. dammini. Este
es el estadío que usualmente transmite la
e n fe rmedad de Lyme a los seres humanos.
Figura 8.16. Ninfa no alimentada de I. dammini; vista
ventral para mostrar la ranura pre-anal.
Figura 8.17. Larva de I.dammini recién salida y la
cáscara de su huevo. La ranura pre-anal
no se puede ver en esta vista dorsal de la
larva.
Figura 8.18. Lesión en la quijada de un gato de la
cual se extrajo una larva de Cuterebra.
Figura 8.19. Larva extraída del género Cuterebra.La
larva se identifica por su gran tamaño,
las hileras de espinas negras y, si se le
examina con cuidado el extremo
posterior, por los característicos
espiráculos (no se pueden ver en esta
ilustración con esta magnificación)
Nestlé Purina Pet Care Company • Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos 87