Post on 28-Jun-2022
Página 1 de 35
TRABAJO FIN DE GRADO:
ESTUDIO DE LA FRACCIÓN DE CARBOHIDRATOS EN
FÓRMULAS INFANTILES
Carlos Sabater Sánchez
Tutores: Dra. Antonia Montilla Dr. Marín Pródanov
Página 2 de 35
ABSTRACT
Human milk oligosaccharides have shown to have a wide range of biological activities including
their prebiotic effect. Since breastfeeding is not always possible, infant formulae are supplemented
with prebiotic oligosaccharides. Numerous studies point out the benefits of mixtures of galacto-
oligosaccharides (GOS) and fructo-oligosaccharides, (FOS) ratio 9/1 to exert similar effects to
breastfeed on children Nowadays, a great number of infant formula with prebiotics are disposal in
market, however not data have been reported on their composition. Therefore, the determination of
mono-, di- and oligosaccharide content of different commercial infant formulas, special infant
formula and dairy drinks has been carried out. Initially a precipitation with Carrez as clarifying
agent was selected for sample pre-treatment and two complementary chromatographic methods
have been applied (GC-FID and HPLC-RID) for the separation and quantification of carbohydrates,
showing their advantages, disadvantages and applications. According to the results obtained, GC-
FID is a more adequate technique which allows a better qualitative and quantitative determination
of carbohydrates of polymerization degree up to 7. Nevertheless, the GC-FID profiles allowed the
identification of the specific GOS and FOS commercial mixture that was added during the formulas
elaboration. For HPLC analysis, four ratio acetonitrile/water as mobile phase were tested, being
55:45 the best option. HPLC-RID analysis allowed the detection of polymers formed by 16
monomers. However, the individual quantification of single compounds was not possible.. The
utilization of both techniques allows an overall characterization of the carbohydrate fraction,
including prebiotic oligosaccharides in commercial infant formulae.
Página 3 de 35
ÍNDICE Página
1. INTRODUCCIÓN
1.1. La lactancia materna y las fórmulas infantiles 4
1.2. La leche materna 4
1.2.1. Composición de la leche materna 4
1.2.2. La flora intestinal en relación con la leche materna 5
1.3. Las fórmulas infantiles 6
1.3.1. Leche materna y fórmulas infantiles: Diferencias en la flora intestinal 6
1.3.2. Fórmulas infantiles: marco legal 6
1.3.3. Fórmulas infantiles con la fracción de carbohidratos modificada 7
1.3.3.1. Las fórmulas especiales: concepto y finalidad 8
1.3.3.2. Fórmulas infantiles enriquecidas en prebióticos 8
1.4. Los compuestos prebióticos 9
1.4.1. Los fructo-oligosacáridos (FOS) 9
1.4.2. Los galacto-oligosacáridos (GOS) 9
1.4.3. Mezclas de prebióticos comerciales 11
1.4.4. Fuentes alternativas de prebióticos 11
1.4.5. Regulación del uso de prebióticos en fórmulas infantiles 12
1.5. Análisis de la fracción de carbohidratos de Fórmulas Infantiles 12
1.5.1. Cromatografía en fase Líquida de Alta Eficacia (HPLC) 12
1.5.2. Cromatografía en fase Gaseosa (GC) 13
1.5.2.1. Reacciones que tienen lugar durante la derivatización 13
2. OBJETIVO Y PLAN DE TRABAJO 14
3. MATERIALES Y MÉTODOS 15
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 20
5. CONCLUSIONES 33
6. BIBLIOGRAFÍA 33
Página 4 de 35
1. INTRODUCCIÓN
1.1. La lactancia materna y las fórmulas infantiles
De acuerdo con la Organización Mundial de la Salud (OMS) la leche materna constituye el
alimento más adecuado para los recién nacidos sanos a término, ya que aporta todos los nutrientes
necesarios durante el primer semestre de vida, a excepción de algunos micronutrientes como el
hierro en caso de bajo peso al nacer [1]. Además, se aconseja la lactancia materna complementada
con otros alimentos hasta los 2 años de vida. Por otro lado, conlleva una mejor regulación
metabólica y mayor protección inmunológica, disminuye el riesgo de sensibilidad alérgica y muerte
súbita y reduce la incidencia de enfermedades infecciosas y crónicas [2]. A pesar de estas
recomendaciones, no siempre es posible la lactancia materna siendo necesario el uso de fórmulas
infantiles que la sustituyen total o parcialmente, existiendo en la actualidad una gran demanda de
estos productos en el mercado. Su elaboración y contenido en nutrientes deben cumplir una serie de
requisitos y adaptarse a la legislación vigente. A medida que se van conociendo las diferentes
funciones que la leche humana tiene en el organismo de los recién nacidos se han ido desarrollando
ingredientes funcionales encaminados a la obtención de fórmulas infantiles capaces de simularlas.
En este sentido, tiene un gran interés el conocimiento de todo el proceso de colonización
microbiana [3], poniendo de manifiesto el beneficio potencial derivado de la adición de
microorganismos probióticos o de compuestos prebióticos a las fórmulas infantiles [4].
1.2. La leche materna
1.2.1. Composición de la leche humana
Es conocido el hecho de que la leche humana ejerce funciones de gran importancia además de la
nutritiva como la contribución al buen desarrollo de la flora intestinal. Posee diversos componentes
en capaces de modular el crecimiento de determinados tipos de bacterias. Se ha visto que el efecto
bifidogénico de la leche materna es debido al bajo contenido en proteínas y fósforo [5, 6], al alto
contenido en nucleótidos, a la presencia de la lactoferrina, (proteína capaz de quelar cationes hierro
e inhibir in vitro el crecimiento de algunos microorganismos patógenos [7]) y, especialmente a la
elevada concentración de oligosacáridos [8]. Estos últimos se encuentran en cantidades de 8 a 12
g/L, siendo el tercer componente mayoritario en su composición después de la lactosa (60 g/L) y los
lípidos (40 g/L). Estas concentraciones son considerablemente mayores en el calostro: de 15 a 23
g/L. En comparación, las leches del resto de mamíferos tienen contenidos en oligosacáridos muy
inferiores [9]. Actualmente se conocen casi 200 tipos de oligosacáridos diferentes, de los cuales 80
están caracterizados [10]. Difieren en composición monomérica, tamaño, carga eléctrica y
abundancia. Los 5 monosacáridos que los componen (glucosa, galactosa, N-acetil-glucosamina,
Página 5 de 35
fucosa y ácido N-acetil-neuramínico o siálico) son capaces de establecer hasta un total de 12 tipos
de enlaces glicosídicos α y β. Estos oligosacáridos son producidos por las glándulas mamarias,
donde los monosacáridos son unidos a una molécula de lactosa mediante la acción específica de
enzimas glicosil-transferasas [10]. También es necesario considerar que, dada su enorme variedad y
complejidad estructural, no es posible replicarlos y añadirlos a las fórmulas infantiles [11].
Se ha comprobado que los oligosacáridos de la leche humana son resistentes a la digestión en los
primeros tramos del tracto gastrointestinal y sirven como sustrato para el crecimiento de
microorganismos en el colon como las bifidobacterias [12]. Hay constancia de que la gran cantidad
y diversidad de oligosacáridos que posee la leche humana facilita el desarrollo de una microbiota
beneficiosa para el hospedador [3]. La sialización y la fucosilación en los extremos terminales los
vuelven inaccesibles a aquellas bacterias intestinales que no poseen las enzimas glicosil-hidrolasas
necesarias para cortar los enlaces y utilizar los monosacáridos liberados [12, 13]. Es importante
destacar que las bifidobacterias sí son capaces de producir las enzimas fucosidasas y sialidasas que
les permiten metabolizar estos compuestos para su crecimiento [3]. Se ha visto en estudios que el
metabolismo de determinadas cepas de las especies Bifidobacterium infantis y Bifidobacterium
bifidum era diferente en presencia de distintos tipos de oligosacáridos [14]. Además, los
oligosacáridos que contienen fucosa y ácido siálico comparten similitudes estructurales con los
glicanos del epitelio intestinal, que actúan como receptores de membrana para los microorganismos
patógenos [15, 16]. Por ello, algunos patógenos pueden adherirse a esos oligosacáridos evitando su
adhesión a la superficie de la mucosa del intestino [12].
1.2.2. La flora intestinal en relación con la leche materna
Como ya se ha comentado, los niños amamantados son menos susceptibles a padecer enfermedades
infecciosas. Este hecho podría estar relacionado con la presencia temprana de bifidobacterias y
lactobacilos en sus tractos gastrointestinales capaces de inhibir el crecimiento de microorganismos
patógenos mediante la producción de ácidos grasos de cadena corta y ácido láctico. Esto conlleva
un descenso del pH en el medio que impide el desarrollo de patógenos [17-19]. Por el contrario, las
fórmulas infantiles favorecen el desarrollo de una flora que favorece un pH neutro en el colon.
Además, bifidobacterias y lactobacilos compiten con patógenos tanto por la captación de nutrientes
como por la adhesión al epitelio intestinal. La microflora también contribuye a la regulación del
sistema inmune y la respuesta inflamatoria [20].
Página 6 de 35
1.3. Las fórmulas infantiles
1.3.1. Leche materna y fórmulas infantiles: Diferencias en la flora intestinal
El desarrollo de la flora intestinal en los seres humanos es un proceso gradual. Antes del nacimiento
el tracto gastrointestinal permanece estéril, pero al cabo de las horas es colonizado por diferentes
tipos de bacterias, fundamentalmente coliformes y estreptococos [21] cuyo origen puede ser
materno o ambiental [22-24], que consumen de manera progresiva el oxígeno del medio. Los niños
nacidos por la vía vaginal desarrollan rápidamente una flora intestinal en la que predominan las
bacterias anaerobias, Bifidobacterium, Bacteroides y Clostridium, [25] mientras que los niños
nacidos mediante cesárea tardan más tiempo en desarrollar este tipo de flora [22]. Generalmente, en
los niños amamantados las especies del género Bifidobacterium se convierten rápidamente en las
predominantes [21]. Existen estudios que no encuentran diferencias significativas entre la
alimentación con leche materna o fórmulas infantiles [26], aunque la mayoría sugieren que la
primera induce el crecimiento de lactobacilos y bifidobacterias [27-29] mientras que una
alimentación a base de fórmulas infantiles favorece el desarrollo de una flora rica en enterobacterias
y otros microorganismos Gram-negativos [30]. La introducción de alimentos complementarios
durante el destete es un punto crítico en este proceso de colonización ya que conduce a un patrón
adulto en la composición de la flora al reducirse el número de bacterias como Escherichia coli y
Clostridium spp y aumentarse el de cocos anaerobios Gram-positivos y el de bacterias del género
Bacteroides [31, 32]. Finalmente, a los 18 meses de vida se considera que la microflora se ha
desarrollado completamente [33]. En un estudio relativamente reciente se ha visto que la flora
intestinal de un individuo adulto contiene entre 1000 y 1500 especies bacterianas diferentes [34].
Teniendo en cuenta los beneficios que conlleva una flora intestinal rica en bifidobacterias se han
desarrollado diferentes estrategias para el control de la colonización bacteriana en aquellos bebés
alimentados con fórmulas infantiles, ya sea mediante la administración de probióticos, prebióticos o
la combinación de ambos (simbióticos) [4].
1.3.2. Fórmulas infantiles: marco legal
Las fórmulas infantiles han evolucionado mucho a lo largo del tiempo. En la Unión Europea la
nomenclatura utilizada es: “fórmula o preparado de inicio” para designar al producto que sustituye
la alimentación del lactante hasta los 4-6 meses de vida y “fórmula o preparado de continuación”
para los productos de este tipo administrados a partir de esta edad [35]. Por el contrario, el Comité
de Nutrición de la Academia Americana de Pediatría no realiza distinción entre ambos términos y
habla solamente de “fórmulas infantiles”, Cuando se elaboran utilizando leche de vaca como
materia prima a la que se añade una serie de ingredientes también se puede denominar “leche para
Página 7 de 35
lactantes” y “leche de continuación”, atendiendo a las edades a las que esté destinado [35], este tipo
de productos son los mayoritariamente elaborados.
Existen diversos organismos internacionales encargados de elaborar las recomendaciones y
normativas que deben cumplir estos productos. El “American Academy of Pediatric Committee on
Nutrition” (AAPCON) y el Comité de Nutrición de la ”European Society for Paediatric
Gastroenterology, Hepatology and Nutrition” (ESPGHAN) son los dos organismos principales que
se ocupan de redactar listados con recomendaciones de carácter orientativo, siendo otras
organizaciones como el “Scientific Committee on Food” (SCF) de la Comisión Europea los que
dictan la normativa de obligado cumplimiento. Todo ello ha sido elaborado teniendo en cuenta las
consideraciones previas realizadas por la Comisión del Codex Alimentarius de la “Food and
Agriculture Organization” (FAO), la OMS y la “United Nations International Children´s
Emergency Fundation” (UNICEF) [36].
En cuanto al contenido en carbohidratos, la Legislación Europea de 1991 estableció que los únicos
permitidos eran la lactosa, maltosa, sacarosa, maltodextrinas y almidón pretostado o gelatinizado.
En las leches de continuación la cantidad de sacarosa, fructosa o miel añadida no debía superar el
20% de los hidratos de carbono totales para evitar sabores dulces. Y, en todos los casos, los
ingredientes que contenían gluten se excluían de la composición de ambas [37]. Esta legislación ha
cambiado y en Europa la adición de compuestos prebióticos a las fórmulas infantiles está regulada
según la Directiva 2006/141/CE, que ha sido transpuesta a la legislación española mediante el Real
Decreto 867/2008 [38]. El marco legal de estos productos condiciona su comercialización.
1.3.3. Fórmulas infantiles con la fracción de carbohidratos modificada
Existe en el mercado un número importante de fórmulas infantiles en la que se ha modificado su
composición en carbohidratos. Uno de los compuestos más ampliamente utilizados son las
maltodextrinas, que son polímeros de α-glucosa unidos mediante enlaces α-glicosídicos. Se
clasifican dentro del grupo de los α-glucanos y su papel en la nutrición humana es,
fundamentalmente, servir como sustrato de energía fácilmente asimilable. Además, presentan
algunas ventajas respecto a otros α-glucanos como el almidón como su mayor solubilidad en agua,
su menor carga osmótica y su rápida digestión en el intestino. No obstante, se ha visto que las
también tienen un importante papel fisiológico ya que podrían ayudar a tratar algunos trastornos
digestivos como la intolerancia a la lactosa o el reflujo gastroesofágico y prevenir el estreñimiento,
el cáncer colorrectal y la diabetes [39].
Página 8 de 35
1.3.3.1. Las fórmulas especiales: concepto y finalidad
Las fórmulas especiales son aquellas que han sido diseñadas para el tratamiento nutricional de
problemas asociados con la intolerancia y/o alergia a algunos componentes de las fórmulas
convencionales que, a su vez, están relacionados con el desarrollo de enfermedades tanto congénitas
como adquiridas a lo largo de la infancia [39]. Se caracterizan por estar modificadas en uno o varios
de sus principios inmediatos: hidratos de carbono, proteína y grasa. Algunos de los productos
incluidos dentro de esta clasificación son las fórmulas sin lactosa y de soja [40].
La intolerancia a la lactosa es debida a un déficit en la producción de la enzima lactasa y entre sus
síntomas más frecuentes se encuentran la diarrea, el vómito y los dolores abdominales [39]. La
galactosemia es producida por un déficit en la enzima galactosa-1-fosfato uridil transferasa y entre
sus síntomas más conocidos destacan la ictericia, hepatomegalia, vómitos, hipoglucemia e incluso
convulsiones [41]. En caso de intolerancia a la lactosa pueden utilizarse fórmulas sin lactosa que
utilizan como fuente de hidratos de carbono las maltodextrinas u otros polímeros de glucosa cuya
digestión depende de otras enzimas diferentes a la lactasa, como la sacarasa-isomaltasa y maltasa-
glucoamilasa [39]. Este tipo de fórmulas suele utilizarse de forma transitoria (4 ó 6 semanas) ya que
la malabsorción de lactosa más frecuente es debida a una lesión en la mucosa intestinal y pasajera
en el tiempo. En un ensayo clínico de 2009 se vio que la alimentación con fórmulas sin lactosa
favorecía la remisión de la diarrea de manera significativa, además de reducir la posible alteración
de la flora intestinal en comparación con las fórmulas convencionales [42]. El tratamiento de la
galactosemia consiste en la eliminación de la galactosa de la dieta, siendo necesario utilizar leches
de soja que carecen de lactosa (y por tanto de galactosa) [40].
1.3.3.2. Fórmulas infantiles enriquecidas en prebióticos
Existe otro tipo de fórmulas infantiles cuya fracción de carbohidratos ha sido enriquecida en
oligosacáridos prebióticos. Los prebióticos se definieron originalmente como “ingredientes
alimentarios no digeribles que estimulan el crecimiento y/o actividad de un número limitado de
bacterias en el colon y como consecuencia se produce una mejora en el estado de salud del
hospedador” [43]. Como indica su definición un compuesto prebiótico debe ser resistente a la
digestión y absorción, alcanzar el intestino grueso y ser fermentado selectivamente por una serie de
microorganismos promotores de la salud como las bifidobacterias y los lactobacilos [44]. Existen
tres tipos de oligosacáridos no digeribles que cumplen plenamente estos criterios: la inulina y los
fructo-oligosacáridos (FOS), los galacto-oligosacáridos (GOS) y la lactulosa [45], aunque hay
numerosos oligosacáridos con claras evidencias de ejercer efecto prebiótico [46]. En general, se
puede considerar que la adición de prebióticos es una manera más natural de modificar la flora
Página 9 de 35
intestinal que la adición de microorganismos probióticos [47]. Muchos de los estudios con
prebióticos se han centrado en las bifidobacterias como principales especies de interés aunque,
atendiendo a la propia definición de prebiótico, no se especifica el tipo de microorganismos
beneficiosos cuyo crecimiento se debe promover [12]. No obstante, los prebióticos pueden ser
fermentados por gran variedad de microorganismos. Se sabe que cuando se utilizan fructanos
derivados de la inulina aumenta la producción de acetato y butirato, y dado que las bifidobacterias
no son grandes productoras de este último compuesto, se pone de manifiesto el crecimiento de otras
especies bacterianas [48]. La producción de ácido butírico es muy positiva ya que neutraliza la
actividad de algunos compuestos carcinógenos como las nitrosaminas [49]. Además del efecto
bifidogénico, se ha sugerido que la utilización de prebióticos podría incrementar la
biodisponibilidad de calcio y mejorar la mineralización ósea, incrementar la resistencia a patógenos
gastrointestinales, modular la respuesta inmune y alérgica, mejorar la función intestinal, reducir el
colesterol y el riesgo a padecer cáncer de colon [44]. En Europa y Estados Unidos los principales
prebióticos añadidos a los alimentos son los fructanos, (inulina y FOS), y los GOS. En Japón
también se utilizan compuestos como los isomaltooligosacáridos, α-galactósidos,
gentioligosacáridos y xilooligosacáridos [50].
1.4. Los compuestos prebióticos
1.4.1. Los fructo-oligosacáridos (FOS)
Tradicionalmente la investigación en el campo de los prebióticos se ha centrado, en buena parte, en
la inulina [51]. Los FOS son polímeros lineales que se producen mediante la transfructosilación de
la sacarosa mediada por enzimas β-fructosidasas e invertasas, [52]. Estos compuestos carecen de
extremo reductor y contienen un residuo de glucosa y dos o más de fructosa [53]. Los FOS también
se obtienen por hidrólisis enzimática de la inulina, presente en numerosos vegetales, y están
compuestos mayoritariamente por moléculas de fructosa unidas por enlace β(2→1). Hay numerosos
estudios en humanos sobre diversos efectos fisiológicos beneficiosos, como efecto prebiótico,
mejora de la absorción de minerales, disminución del nivel de colesterol y triglicéridos en sangre
[8] [54].
1.4.2. Los galacto-oligosacáridos (GOS)
Recientemente, se ha prestado un mayor interés en los GOS a la hora de elaborar fórmulas
alimentarias enriquecidas en compuestos prebióticos. Los GOS son polímeros que se sintetizan a
partir de la lactosa utilizando enzimas β-galactosidasas, que hidrolizan una molécula de lactosa para
transferir la galactosa a otra molécula de lactosa en una reacción de transgalactosilación. Se
obtienen mezclas complejas, difíciles de caracterizar [55], en las que están presentes los enlaces
Página 10 de 35
β(1→2), β(1→3), β(1→4) y β(1→6) y los grados de polimerización (GP) están comprendidos entre
2 y 8, aunque en estudios recientes se han detectado GOS con GP 15 [56]. Una característica
importante de estos compuestos es que las estructuras formadas dependen de la fuente de la que se
obtiene la enzima [55]. En general, las distintas β-galactosidasas favorecen un tipo particular de
enlaces, así el enzima de Bacillus circulans favorece el enlace β(1→4), el de B. infantis β(1→3) y
Kluyveromyces lactis y Aspergillus oryzae enlaces β(1→6) [12]. Este hecho permite sintetizar
mezclas de GOS con distintas propiedades fermentativas y así potenciar la selectividad que se exige
a los prebióticos [12]. Los GOS están presentes, aunque en muy pequeñas cantidades, de manera
natural en la leche humana, por lo que han sido considerados como GRAS (Generally Regarded As
Safe) en EEUU y FOSHU (Food For Special Health Use) en Japón [57]. Los GOS han mostrado
ser unos componentes muy interesantes para su adición a fórmulas infantiles [21, 58] al poder ser
metabolizados selectivamente por distintas especies de bifidobacterias [3].
En estudios previos in vitro se han apreciado diferencias en el efecto bifidogénico dependiendo del
preparado comercial de GOS. Utilizando un simulador gastrointestinal los preparados Vivinal® y
Bimuno® ejercían su efecto en diferentes regiones del colon [59, 60]. Ambos, al ser suministrados a
individuos voluntarios producían un incremento significativo de las bifidobacterias en comparación
con un placebo de maltodextrinas [61]. En una revisión reciente de 2014 se han recopilado los
efectos in vivo de diferentes mezclas de GOS comerciales como el Vivinal, Bimuno, Purimuno y
mezclas de GOS con otros compuestos como FOS, apreciándose diferencias entre ellos, aunque, en
general, todos ejercían efecto prebiótico [62]. En otros estudios se ha visto que los GOS mejoran la
absorción de minerales [63] y estimulan el sistema inmune, aunque no se ha podido determinar su
impacto en la susceptibilidad a padecer enfermedades atópicas [64]. También disminuyen la
incidencia de la diarrea del viajero [65] y mejoran los síntomas del síndrome del colon irritable
[66]. A la vista de su potencial interés para la salud humana se ha registrado un gran número de
patentes fruto de la investigación en este campo. Se ha consultado la base de datos online de la
Oficina de Patentes Europea (EPO) [67] utilizando como criterio de búsqueda la palabra clave
“galactooligosaccharide” y, tras comprobar la existencia de un número importante de patentes
recientes, se han clasificado en función de su diferente finalidad como muestra la Figura 1.
Destacan aquellas relacionadas con la obtención de GOS (que suponen un 29% del total), la
elaboración de fórmulas alimentarias (siendo un 22%) y la mejora en el estado de salud (19%).
Cabe señalar que solamente dos de las patentes encontradas hacen referencia a una separación
cromatográfica para la purificación de estos compuestos y una indica expresamente el uso de
lactosuero como fuente de estos compuestos.
Página 11 de 35
Figura 1. Clasificación de un total de 187 patentes registradas en la Oficina de Patentes Europea (EPO) relativas a GOS
en función de sus diferentes usos (última vez accedido 30 enero de 2014). En la elaboración de fórmulas alimentarias se
han distinguido aquellas que contienen solamente GOS añadidos, las que contienen GOS junto a otros componentes
como FOS, y las fórmulas alimentarias en las que se declara explícitamente una contribución a la mejora de la salud
intestinal. A su vez los métodos de obtención de GOS se han dividido en métodos fermentativos utilizando
microorganismos vivos, uso de enzimas aisladas y aislamiento y purificación por métodos instrumentales.
1.4.3. Mezclas de prebióticos comerciales
Como ya se ha comentado, los GOS y los FOS son estructuras más simples que los oligosacáridos
presentes en la leche humana y sus características funcionales se complementan. Una de las mezclas
más estudiada está compuesta por GOS y FOS en una proporción 9:1, y ha demostrado incrementar
el número de bifidobacterias en las heces de los bebés y reducir la incidencia de patógenos [68], así
como reducir la consistencia de las heces y el tiempo de tránsito intestinal [69]. También se ha
demostrado que los efectos de esta mezcla son mayores cuanto menor sea el tiempo de vida del
bebé [70]. Algunos de los preparados comerciales más conocidos son el Vivinal® y la Raftilosa®,
los cuales han demostrado estimular el crecimiento de bifidobacterias y lactobacilos [71].
1.4.4. Fuentes alternativas de prebióticos
Una fuente alternativa a partir de la cual obtener oligosacáridos con actividad biológica potencial,
son los subproductos de la industria láctea. El permeado obtenido del suero de quesería es de
especial interés dadas las enormes cantidades en que se genera y permitiría obtener oligosacáridos
que se parecen más a los de la leche humana. Se ha sugerido que su producción a gran escala podría
Prevención/tratamiento de enfermedades
8% Mejora de una función
corporal 2%
Uso específico como prebiótico
9% Mejora de la acción de otro prebiótico
1%
Fórmulas alimentarias para mejora de salud intestinal
(GOS + Otros) 12%
Fórmulas alimentarias en general (GOS + Otros)
7%
Fórmulas alimentarias (sólo GOS) 3%
Fórmulas alimentarias (GOS obtenidos a partir de
lactosuero) 1%
Métodos instrumentales de purificación de GOS
2%
Métodos de obtención de GOS a partir de lactosuero
2%
Métodos de obtención de GOS mediante fermentación
16%
Métodos de obtención de GOS cone enzimas aisladas
11%
Aditivo en medios de cultivo
1%
Aditivo en fórmulas alimentarias
6%
Aditivo para la mejora de propiedades tecnológicas
3%
Reducción de patógenos en animales
1%
Aditivo en piensos 7%
Cosmética 2%
Otros 8%
Patentes de la EPO relativas a GOS
Página 12 de 35
realizarse empleando tecnologías de membrana [72]. Numerosas líneas de investigación están
dedicadas a mejorar los prebióticos actuales, siendo la búsqueda de fuentes alternativas uno de los
puntos clave [12]. Los oligosacáridos presentes en la leche de animales domésticos tienen
estructuras menos complejas, con menos isómeros y menor proporción de fucosa y ácido siálico que
los de la leche humana [73]. Estas diferencias y similitudes deben ser tenidas en cuenta a la hora de
desarrollar productos destinados a mimetizar a la leche humana.
1.4.5. Regulación del uso de prebióticos en fórmulas infantiles
El SCF de la Comisión Europea declaró que la adición de una mezcla de GOS/FOS en una
proporción 9/1 y a una concentración de 0,8 g/100 ml a las fórmulas infantiles no implicaba riesgos
graves y destacó las limitaciones de los ensayos clínicos realizados hasta la fecha [74]. Por otro
lado, en una revisión realizada por el Comité de Nutrición de la ESPGHAN se llegó a la conclusión
de que los datos publicados en cuanto a actividad prebiótica son limitados y no se puede
recomendar de manera su uso generalizado con fines preventivos o terapéuticos [4]. En general, las
distintas revisiones concluyen que son necesarios más ensayos clínicos correctamente diseñados
[75]. También se debe estandarizar las cantidades suplementadas [64]. A pesar de ello, la constancia
de su seguridad y la presencia de compuestos similares en la leche materna (GOS) y en vegetales
(FOS) avalan la tendencia actual a incluirlos en las fórmulas infantiles [76].
1.5. Análisis de la fracción de carbohidratos de Fórmulas Infantiles
Aunque la variedad y complejidad estructural de los carbohidratos que se encuentran en las
fórmulas infantiles es mucho menor que la de los oligosacáridos de leche humana se requieren
técnicas de alto poder de resolución para su análisis, como son las técnicas cromatográficas.
1.5.1. Cromatografía en fase Líquida de Alta Eficacia (HPLC)
La cromatografía en fase líquida de alta eficacia (HPLC) con detector de índice de refracción (RID)
es una de las técnicas más utilizadas para la determinación cuantitativa de carbohidratos en
alimentos. Sus principales ventajas son la sencillez y rapidez de la preparación de muestras y la
suficiente resolución para analizar los azúcares más comunes. Como inconveniente cabe destacar
que los materiales de la fase estacionaria que se utilizan (grupos amino ligados y de intercambio
iónico) pueden reaccionar con compuestos de la matriz alimentaria y reducir su vida útil. También
la sensibilidad y selectividad en la detección es baja y por ello, si el carbohidrato de interés se
encuentra en pequeña cantidad, es posible que no sea determinado [77] [78].
Página 13 de 35
1.5.2. Cromatografía en fase Gaseosa (GC)
La cromatografía en fase gaseosa con detector de ionización de llama (GC-FID) ofrece grandes
ventajas en cuanto a resolución, sensibilidad y selectividad, pero su principal inconveniente radica
en la necesidad de transformar los analitos en sus derivados volátiles antes de su separación
cromatográfica [79]. No obstante, esta técnica está limitada al análisis de azúcares de baja masa
molecular principalmente, mono di y trisacáridos, aunque si se forman los derivados apropiados y
se utilizan fases estacionarias que soportan altas temperaturas pueden detectarse carbohidratos de un
GP de hasta 12 [80]. El tiempo necesario para preparar los derivados volátiles es un inconveniente
aunque, en ocasiones, la extracción y purificación previos necesarios para las determinaciones por
HPLC pueden ser igual de laboriosas que la preparación de muestra en GC [81]. La mayor venya de
la GC con columnas capilares es su gran resolución, sensibilidad y selectividad, necesarias cuando
se quieren estudiar muestras complejas de carbohidratos [82, 83].
1.5.2.1.Reacciones que tienen lugar durante la derivatización
El análisis por GC requiere una preparación para formar derivados volátiles [80, 84]. Los
carbohidratos se caracterizan por una escasa volatilidad y elevada reactividad química [85]. Esto
facilita reacciones de sustitución de los grupos polares por otros apolares más volátiles
(derivatización) [80]. El alto número de grupos funcionales presentes en los azúcares y la presencia
de formas tautoméricas pueden dar lugar a cromatogramas muy complejos. Pora simplificarlos, se
lleva a cabo una derivatización en dos etapas, oximación y sililación:
La reacción de oximación tiene como finalidad el bloqueo del centro anomérico del azúcar a
analizar, por medio de la condensación de un aminoalcohol como la hidroxilamina con un grupo
aldehído o cetona. Como resultado de esta reacción, los azúcares reductores forman dos isómeros
diferentes (denominados E y Z), que presentan una relación isomérica fija, y que dan lugar a dos
picos en el cromatograma, mientras que los azúcares no reductores dan un solo pico.
La reacción de sililación tiene como objetivo disminuir la temperatura de vaporización de los
azúcares a analizar y en ella que hacen reaccionar los grupos hidroxilo de los azúcares con un
agente sililante, sustituyéndose cada hidrógeno de dichos grupos por un grupo metil-silil. Los
derivados formados se pueden aplicar tanto a aldosas como cetosas y dan cromatogramas
relativamente simples [80]. Sin la reacción de oximación previa el centro anomérico permanecería
libre, pudiendo un mismo azúcar generar hasta 5 anómeros diferentes y, por tanto, 5 picos diferentes
en el cromatograma. Esto supondría un enorme problema a la hora de analizar muestras complejas
como son las fórmulas infantiles.
Página 14 de 35
2. OBJETIVO Y PLAN DE TRABAJO
Dada la importancia que tienen los carbohidratos prebióticos en la modulación de la microbiota
intestinal y la relación que tiene ésta con un gran número de funciones del huésped, así como la
falta de datos experimentales en cuanto a la composición cualitativa y cuantitativa en prebióticos de
las fórmulas infantiles comercializadas en España, el objetivo de este trabajo se centra
fundamentalmente en: “la evaluación cualitativa y cuantitativa de la fracción de carbohidratos
presente en fórmulas infantiles que, según el etiquetado, contienen prebióticos y fórmulas con la
fracción de carbohidratos modificada, tomando como referencia las fórmulas infantiles clásicas”.
Para alcanzar este objetivo, se desarrollará el siguiente plan de trabajo dividido en los siguientes
apartados:
1. Caracterización básica de las fórmulas infantiles: pH y extracto seco total.
2. Puesta a punto de los métodos de análisis de carbohidratos. Optimización de las condiciones
de extracción de la fracción de carbohidratos, así como las de análisis por cromatografía de
gases (GC) y cromatografía líquida de alta eficacia (HPLC).
3. Cuantificación de la fracción de carbohidratos utilizando dos técnicas cromatográficas
complementarias:
GC, que permite una mejor separación de los carbohidratos de menor peso molecular.
HPLC, que permite cuantificar carbohidratos de mayor grado de polimerización.
Este plan de trabajo logró cumplirse satisfactoriamente en el plazo establecido, habiéndose podido
obtener datos cuantitativos y cualitativos de todas las muestras estudiadas suficientes como para
permitir una caracterización detallada de la fracción de carbohidratos presente así como establecer
una comparativa entre las diferentes categorías de productos a fin de sacar conclusiones. No
obstante, durante el transcurso de su realización surgieron una serie de dificultades en su mayoría
relacionadas con la puesta a punto del método: desde la necesidad de escoger entre diferentes
procedimientos de preparación de muestra, con el fin de eliminar compuestos interferentes, a la
elección de las condiciones de análisis que, si bien pueden no ser óptimas, sí son apropiadas para
alcanzar el principal objetivo de este trabajo. Todas las alternativas consideradas a la hora de
realizar este proyecto serán explicadas en detalle en los siguientes apartados así como los motivos
que han llevado a su aceptación o su descarte.
Página 15 de 35
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Muestras estudiadas
En este trabajo se han analizado hasta un total de 28 fórmulas infantiles diferentes disponibles en el
mercado, 24 de ellas en forma de leche en polvo. Estas muestras comprenden fórmulas de inicio y
continuación convencionales, fórmulas de inicio y continuación con prebióticos añadidos, fórmulas
de inicio y continuación sin lactosa y fórmulas de soja, dos fórmulas líquidas (una de ellas con
lactosa hidrolizada) y dos complementos lácteos a base de yogur. Todos estos productos han sido
clasificados en la Tabla 1 junto a las características más relevantes relacionadas con los
carbohidratos que aparecen en la etiqueta.
3.2. Medición del pH
Para la medición del pH los productos en polvo fueron previamente reconstituidos al 10% en agua.
Las fórmulas líquidas y complementos lácteos se midieron directamente. Se utilizó un pHmetro
Metler Toledo, modelo Five Easy Plus, previamente calibrado con dos soluciones estándar de pH 7
y 4. Todo el agua utilizada para preparar soluciones era de calidad ultra—pura (18.2 MΩ cm) y fue
producida mediante un sistema Milli-Q Synthesis A10 system de Millipore (Billerica, MA, USA).
3.3. Cálculo del Extracto Seco Total
Para la determinación del Extracto Seco Total (EST) se pesaron aproximadamente 100 mg de
muestra en el caso de los productos sólidos y de 150 a 300 mg para los productos líquidos o
semilíquidos, en viales previamente desecados. En el caso de las muestras líquidas fue necesario
pesar una cantidad mayor para asegurar un mínimo valor de extracto seco, ya que si la cantidad de
muestra seca obtenida fuese excesivamente baja (inferior a 15 mg) el resultado podría no ser
significativo. Los viales con las muestras se introdujeron en una estufa a una temperatura de 102 ⁰C
durante un periodo de tiempo mínimo de 48 h hasta peso constante. El EST se determinó por
diferencia de pesada
Página 16 de 35
Tabla 1. Relación de fórmulas infantiles analizadas, características relacionadas con la fracción de carbohidratos que aparecen en la etiqueta y fecha de consumo
preferente (FCP).
Abreviaturas utilizadas: Fórmula de Inicio (FI), Fórmulas de Continuación (FC), Fórmulas de Soja (FS), Fórmulas con Lactosa Hidrolizada (LH) y
Complementos Lácteos (LC) que se han analizado en este trabajo. Las abreviaturas utilizadas según los carbohidratos adicionados son: mdx, maltodextrinas; preb,
compuestos prebióticos, SL, si carece de lactosa. Otras abreviaturas utilizadas: HC (hidratos de carbono), la (lactosa), almd (almidón), GOS (galacto-
oligosacáridos), FOS (fructo-oligosacáridos), glu (glucosa), ma (maltosa), fru (fructosa), sac (sacarosa), Bf (Bifidobacterias), Lb (Lactobacilos).
Clave HC Lactosa Azúcares Prebióticos Maltodextrinas Fibra Inositol (mg/100g) Componentes FCP
(g/100g)
Fórmulas de inicio y continuación convencionales (n=2)
FI_1 57,8 57,8 - - - - 80,0 la 01/03/2015
FC_mdx_1 61,7 - 35,1 - - - - la,mdx 01/03/2015
FC_mdx_2 60,0 - 47,7 - 12,3 0,5 - la,almd,mdx,Bf 01/06/2015
FC_mdx_3 55,6 - 25,6 - - - 9,9 la,mdx 22/02/2016
FC_mdx_Lq_4 7,3 3,1 - - 4,3 - 3,3 la,mdx,Lb 14/04/2014
Fórmulas de inicio y continuación disponibles en el mercado con prebióticos (n=16)
FC_mdx,preb_1 59,3 41,9 44,9 3,8 - - 24,7 la,mdx,GOS/FOS 25/07/2014
FC_mdx,preb_2 59,3 41,9 44,9 3,8 - - 24,7 la,mdx,GOS/FOS 07/07/2014
FC_mdx,preb_3 59,3 41,9 44,9 3,8 - - 24,7 la,mdx,GOS/FOS 20/06/2014
FI_mdx,preb_1 53,3 - - 5,7 - - 45,0 la,FOS/inulina,mdx 01/05/2015
FC_mdx,preb_4 56,0 - - 3,0 - - 45,0 la,mdx,FOS/inulina,Lb,Bf 01/02/2015
FI_SL,mdx,preb_1 50,8 SL - 5,7 50,8 - 25,0 mdx,FOS 01/07/2015
FI_mdx,preb_2 -
55,0 1,5 1,5 3,1 51,0 la,GOS,mdx 25/06/2015
FC_mdx,preb_5 62,9 - 41,3 2,2 - - 25,0 la,mdx,GOS 01/08/2014
FI_preb_1 50,1 46,0 46,0 3,5 2,5 - 32,0 la,GOS,glu,ma 19/03/2015
FC_preb_1 59,0 56,5 58,3 3,9 - - 25,0 la,GOS/FOS 14/05/2014
FC_mdx,preb_6 55,7 19,7 23,9 3,8 - - 23,0 mdx/almd,GOS/FOS,la 19/10/2014
FC_mdx,preb_7 53,6 - - 2,9 - 2,0 - mdx,la,GOS/FOS,Lb,Bf 01/11/2014
FI_mdx,preb_3 56,4 - - 1,9 - 1,3 30,0 la,GOS,mdx 01/05/2015
FC_mdx,preb_8 61,7 - - 2,6 - 1,7 26,0 la,mdx,GOS 05/01/2015
FC_mdx,preb_9 55,6 35,6 38,1 2,5 19,4 1,7 24,4 la,mdx,GOS 01/09/2015
FI_mdx,preb_4 50,9 45,3 - 2,8 5,0 1,9 27,2 la,mdx,GOS 03/07/2015
Página 17 de 35
Clave HC Lactosa Azúcares Prebióticos Maltodextrinas Fibra Inositol (mg/100g) Componentes FCP
(g/100g)
Fórmulas de inicio y continuación sin lactosa (n=2)
FI_SL,mdx_1 58,6 SL - - - - 36,0 mdx 01/07/2015
FC_SL,mdx_1 60,8 SL - - 60,8 - 9,9 mdx,Lb 01/03/2015
Fórmulas de soja (n=2)
FS_mdx_1 57,6 - - 20,3 36,1 - 47,0 mdx,glu 31/10/2014
FS_mdx_2 55,0 - - - - - 30,0 mdx 14/06/2015
Fórmulas con lactosa hidrolizada (n=1)
LH_1 3,2 < 0,01 - - - - 36,0 LH,fru 19/04/2014
Complementos lácteos (n=2)
CL_mdx,preb_Lq_1 13,0 5,0 - 0,8 - 1,1 - la,almd,FOS,sac 21/05/2014
CL_mdx_Lq_1 11,0 - 8,5 - - 0,5 - la,sac,almd 01/07/2014
Página 18 de 35
3.4. Preparación de muestra para el análisis cromatográfico. Extracción de la fracción de
carbohidratos
Se realizaron dos tipos diferentes de precipitaciones durante la preparación de muestra:
Precipitación con metanol: Se pesaron 100 mg de una muestra en polvo que fue disuelta en 1 mL
de agua y en un matraz aforado se completó hasta 10 mL con metanol.
Precipitación con agente clarificante (Carrez): Se pesaron 400 mg de muestras en polvo que
fueron reconstituidas en 5 mL de agua mientras que para el resto de fórmulas se diluyeron 3g de
producto líquido en 3 mL de agua. Se añadieron 200 µL del reactivo Carrez I [K4Fe(CN)6.3H20
7,2% (m/v)], se agitó y se añadieron 200 µL del reactivo Carrez II [ZnSO4.7H20 14% (m/v)]. Una
vez se enrasaron las muestras a 10 mL, se dejó precipitar durante un total de 30 minutos y se
centrifugó durante 3 minutos a 10.000 revoluciones por minuto (rpm). Cada muestra fue preparada
por duplicado.
3.5. Análisis de carbohidratos por GC
Se tomaron 500 µL del sobrenadante resultante de la precipitación con metanol ó 150 µL del
sobrenadante resultante de la precipitación con Carrez y se llevaron a un matraz de corazón junto a
200 µL de β-fenilglucósido, utilizado como patrón interno (PI), preparado a una concentración de
0,5 mg/mL. Se llevó a sequedad en un rotavapor a 40 ºC y posteriormente se derivatizó en dos
etapas:
1. Adición de 250 µL de cloruro de hidroxilamina al 2,5% en piridina seguido de dos etapas de
15 min de incubación en estufa a 70 ⁰C.
2. Adición de 250 µL de hexametildisilaxano (HMDS) y 25 µL de ácido trifluoroacético
seguidos de un periodo de incubación en estufa a 50 ⁰C.
Estas etapas se realizaron con pasos de agitación intensa para garantizar una correcta formación de
los derivados. Una vez se formaron los derivados se centrifugó la muestra a 10.000 rpm durante 2
minutos y se recogió el sobrenadante en un vial para ser inyectado en el cromatógrafo.
El análisis se llevó a cabo utilizando un cromatógrafo Agilent Technologies 7890A gas
chromatograph (Agilent Technologies, Wilmington, DE, EEUU) equipado con un detector de
ionización de llama (FID) y empleando nitrógeno como gas portador a un flujo de 1 mL/min. Se
utilizó una columna capilar SGE HT5 Aluminum Clad Fused Silica Capillary Column de
dimensiones 12 m x 0,32 mm x 0,10 µm (North Harrison Road, Bellefonte, EEUU). La temperatura
del inyector fue de 280 °C y la del detector 385 °C. La temperatura inicial de análisis fue 150 ºC y
Página 19 de 35
la final 380 ºC con una rampa de temperatura de 3 ºC/min. La adquisición y el tratamiento de los
datos se llevaron a cabo utilizando el software Agilent ChemStation (Wilmington, DE, EEUU).
Para la cuantificación de los carbohidratos presentes en las muestras se prepararon patrones de
Galactosa (Ga), Glucosa (Glu), myo-inositol (Myo), lactosa (La), kestosa (Kes) y nistosa (Nis) en
un rango de concentraciones de 2,5 a 0,004 mg/mL. Todos ellos fueron obtenidos de la casa
comercial Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, EEUU). Se calcularon los factores de respuesta (FR)
frente al P.I. β-fenilglucósido. Las desviaciones estándar relativas de los FR calculados no
superaron el 10 %. Para los azúcares de GP superior a 4 se utilizó el factor de respuesta de la
nistosa.
3.6. Análisis de carbohidratos por HPLC
Para este análisis la preparación posterior de la muestra fue una simple dilución y filtración [84]. Se
tomaron 0,7 mL del sobrenadante obtenido en el paso anterior y se mezclaron con otros 0,7 mL de
acetonitrilo. Se dejó reposar durante toda la noche y al día siguiente se filtró con filtros de PVDF de
0,22 µm de tamaño de poro, eliminando así una posible precipitación de la muestra [84].
El análisis de los carbohidratos se llevó a cabo en un equipo de HPLC-RID Agilent Technologies
1220 Infinity LC System – 1260 RID (Boeblingen, Alemania) utilizando una columna Kromasil
100-5NH2 de dimensiones 25 cm x 4,6 mm x 5 µm. (Akzo Nobel, Brewster,NY, EEUU), a 30 ⁰C.
Como parte de la puesta a punto del equipo se ensayaron como fase móvil diferentes proporciones
de acetonitrilo/agua: 70:30; 60:40; 55:45; 50:50. La adquisición y el procesamiento de datos se
llevaron a cabo utilizando el software Agilent ChemStation (Agilent Technologies, Boeblingen,
Alemania). Para la cuantificación se prepararon patrones de Fructosa (Fru), Galactosa (Ga), Lactosa
(La), Kestosa (Kes) y Nistosa (Nis) (Sigma-Aldrich) en un rango de concentraciones comprendido
entre 5,0 y 0,05 mg/mL para el análisis por HPLC. Los valores de R2 obtenidos para las distintas
rectas de calibrado fueron superiores a 0,999.
3.7. Preparación de muestra tipo y patrones comunes a ambas técnicas
Además, con fines identificativos, se prepararon otros patrones de lactulosa (Lu), maltosa (Ma),
maltulosa (Mu) y maltodextrinas (Mdx) (GP 2-5), (Sigma-Aldrich), y como muestras tipo
Raftilosa®
(RFT), FOS®
, Vivinal®
(Vi) y lactosa tratada con enzima β-galactosidasa de
Kluyveromyces lactis (Lactozym, Novozyme).
Página 20 de 35
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1. Caracterización de las muestras
4.1.1. Medida de pH
Los valores de pH obtenidos para cada una de las fórmulas se muestran en la Tabla 2. Como se
puede observar la gran mayoría de ellos se halla cercano a la neutralidad con unos valores
comprendidos entre 6,5 y 7,5 tal y como cabría esperar de un producto infantil cuya base es, en
numerosos casos, la leche de vaca. Los valores más bajos se encuentran en los dos complementos
lácteos analizados ya que ambos productos tienen como base una leche fermentada. Ambos
productos han sido pasteurizados después de la fermentación, posiblemente para permitir su
conservación a temperatura ambiente, ampliando así el mercado al que va destinado. Este hecho
podría explicar en parte que su pH, aun adaptándose a la legislación (según la cual el valor de pH de
los yogures deben ser igual o inferior 4,6 [86]) sea ligeramente inferior al que cabría esperar en un
yogur convencional. En un yogur común los valores de pH continúan disminuyendo aún más
durante el almacenamiento como consecuencia de la acción de las bacterias lácticas que
permanecen viables, y que por el contrario son eliminadas durante la pasteurización de estos
productos. Este resultado sugiere que puede haberse alargado la etapa fermentativa disminuyendo el
pH por debajo de 4,6 para contrarrestar el no poder seguir descendiendo durante el almacenamiento.
4.1.2. Cálculo del Extracto Seco Total (EST)
Los valores de Extracto Seco Total (EST) obtenidos para cada una de las muestras analizadas se
recogen en la Tabla 2 junto a los valores de pH. Las fórmulas en polvo presentan unos valores de
EST comprendidos entre 94 y 98% y las muestras líquidas y semilíquidas tienen unos valores
claramente inferiores, de 7,4 a 19%.
En el caso de las fórmulas infantiles en polvo era de esperar valores de EST (cercano al 95%), ya
que la legislación establece un contenido de agua igual o inferior al 5% para las leches totalmente
deshidratadas [87], como consecuencia de haber sido procesadas exclusivamente para este fin:
eliminar la máxima cantidad de agua y así aumentar su vida útil y reducir los costes de transporte y
almacenamiento. Igualmente los yogures, presentan valores esperables, entre el 18 y 20% ya que se
elaboran con leche enriquecida, normalmente con leche en polvo, para facilitar que se forme un gel
consistente o en el caso de yogures batidos que tengan una consistencia cremosa. La fórmula
infantil líquida tiene el EST equivalente a una leche normal y únicamente el resultado que no
concuerda totalmente con lo esperado corresponde a la muestra del producto líquido con lactosa
hidrolizada, que presenta un valor excesivamente bajo, 7,4%. Este dato posiblemente se deba a que,
según se especifica en la etiqueta parte de la lactosa es hidrolizada enzimáticamente y parte retirada,
Página 21 de 35
lo cual lleva a una disminución del EST. Contrastando esta información con la etiqueta del
producto, y sumando las cantidades de los componentes mayoritarios (hidratos de carbono, grasa y
proteínas) se esperaría un valor mínimo del 8,5%.
Tabla 2. Caracterización básica de los 28 productos analizados: valores de Extracto Seco Total (EST) y pH.
Clave EST pH (disol 10%)
FI_1a 95,41 ± 0,51b 6,74
FC_mdx_1 99,16 ± 0,03 6,93
FC_mdx_2 96,12 ± 0,00 6,83
FC_mdx_3 98,28 ± 0,03 6,70
FC_mdx_Lq_4 12,21 ± 0,34 7,21
FC_mdx,preb_1 98,47 ± 0,13 7,12
FC_mdx,preb_2 94,96 ± 0,53 6,80
FC_mdx,preb_3 95,63 ± 0,19 6,68
FI_mdx,preb_1 96,81 ± 0,02 6,89
FC_mdx,preb_4 96,55 ± 0,23 6,80
FI_SL,mdx,preb_1 97,73 ± 0,43 6,96
FI_mdx,preb_2 97,82 ± 0,20 7,22
FC_mdx,preb_5 96,47 ± 0,21 7,00
FI_preb_1 98,00 ± 0,07 7,04
FC_preb_1 96,54 ± 0,17 6,91
FC_mdx,preb_6 98,35 ± 0,22 6,99
FC_mdx,preb_7 97,47 ± 0,75 7,23
FI_mdx,preb_3 98,52 ± 0,41 6,92
FC_mdx,preb_8 94,54 ± 0,59 6,83
FC_mdx,preb_9 96,65 ± 0,38 7,13
FI_mdx,preb_4 96,60 ± 0,40 7,16
FI_SL,mdx_1 96,84 ± 0,04 6,67
FC_SL,mdx_1 97,89 ± 0,17 6,74
FS_mdx_1 98,94 ± 0,02 7,12
FS_mdx_2 97,27 ± 0,13 6,83
LH_1 7,44 ± 0,01 6,83
CL_mdx,preb_Lq_1 19,64 ± 0,04 4,41
CL_mdx_Lq_1 18,10 ± 0,43 4,18 aLas claves de cada muestra han sido asignadas conforme a los criterios de la Tabla 1. bCada muestra fue
preparada por duplicado (media ± desviación estándar).
4.2. Precipitación de la muestras
Una parte muy importante a la hora de analizar los carbohidratos de un alimento es la extracción de
los mismos que debe ser completa y lo más selectiva posible, para evitar interferencias en el
posterior análisis. De los dos tipos diferentes de precipitación ensayados, la precipitación mediante
los reactivos de Carrez resultó ser la más adecuada ya que el cromatograma obtenido en GC al tratar
la muestra con metanol presentaba un gran número de picos no identificados que correspondían a
Página 22 de 35
otros compuestos diferentes a los carbohidratos y que, por tanto, interferían con los analitos de
interés. Estas interferencias podrían ser debidas a ácidos grasos libres que no son precipitados con el
metanol y sí con los reactivos de Carrez. La adición de ácidos grasos de cadena larga es frecuente
en productos como fórmulas infantiles ya que contribuyen a un correcto desarrollo del recién nacido
[88] y, comprobando con el etiquetado, se observa que varias de las muestras contienen ácidos
grasos poliinsaturados de cadena larga como el DHA. Por el contrario, tal y como se muestra en la
Figura 3, el cromatograma obtenido con los reactivos de Carrez se hallaba libre de estas impurezas
y permitía una mejor identificación y cuantificación de los hidratos de carbono.
Figura 3. Comparación de los dos cromatogramas obtenidos en GC según la preparación de muestra: precipitación con
metanol (rojo) y precipitación con los reactivos de Carrez (azul).
4.3. Caracterización de la Fracción de Carbohidratos por GC
Los resultados de la caracterización de la fracción de carbohidratos presente en cada una de las
fórmulas infantiles se recogen en la Tabla 3. El máximo grado de polimerización (GP) que se ha
podido detectar en las muestras con esta técnica es 7. Hay que considerar que la respuesta va
disminuyendo al aumentar el GP por lo que aunque haya carbohidratos mayores pueden no ser
detectados.
La lactosa es el carbohidrato mayoritario en la mayoría de las muestras a excepción de,
lógicamente, las fórmulas sin lactosa (SL), las fórmulas de soja (FS) y la fórmula con lactosa
hidrolizada (LH). Los mayores valores de lactosa se encuentran en la fórmula infantil convencional
FI_1, aproximadamente 730 mg/g EST en cuyo etiquetado se indica un contenido prácticamente
exclusivo de este azúcar, concordando con los resultados obtenidos analíticamente. En el resto de
min10 20 30 40 50 60 70 80
pA
20
40
60
80
100
120
FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\140214 MUESTRAS Y CARREZ CARLOS 2014-02-14 14-19-58\106F0901.D) FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\140214 MUESTRAS Y CARREZ CARLOS 2014-02-14 14-19-58\102F0201.D)
min35 37.5 40 42.5 45 47.5 50 52.5 55 57.5
pA
16
18
20
22
24
26
FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\140214 MUESTRAS Y CARREZ CARLOS 2014-02-14 14-19-58\106F0901.D) FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\140214 MUESTRAS Y CARREZ CARLOS 2014-02-14 14-19-58\102F0201.D)
tiempo (min)
tiempo (min)
Página 23 de 35
fórmulas en polvo los valores de lactosa oscilan entre 200 y 500 mg/g EST, indicando una
importante variabilidad según el producto, y en los complementos lácteos su contenido es
notablemente inferior (100-160 mg/g EST) debido a que este azúcar ha sido metabolizado por las
bacterias lácticas.
En el producto con lactosa hidrolizada este disacárido ha dado lugar a un elevado contenido en los
dos monosacáridos que lo componen: glucosa y galactosa, obteniéndose unos valores de 62 y 57
mg/g EST respectivamente, muy por encima del resto de muestras aunque estos valores ponen de
manifiesto que gran cantidad de lactosa ha sido retirada. Por otra parte el menor contenido en
galactosa indica que ese monosacárido podría estar formando parte de otros compuestos como los
GOS. Los contenidos de glucosa en el resto de muestras oscilan entre 2 y 40 mg/g EST y los de
galactosa en torno a 0,1 y 2 mg/g EST, salvo el complemento lácteo CL_mdx_Lq_1, con un contenido
de 45 mg/g EST, probablemente debido a que la galactosa debe ser más difícil de metabolizar por
las bacterias lácticas que la glucosa. En cuanto a la fructosa, que a diferencia de los otros azúcares
mencionados no se encuentra de manera natural en la leche y por tanto ha sido añadida durante la
elaboración, se encontró en todas las muestras pero generalmente permanece a bajas
concentraciones (inferiores a 1 mg/g EST), destacando el producto líquido con lactosa hidrolizada
donde se ha añadido en mayor cantidad (11 mg/g EST) y el complemento lácteo CL_mdx_2.
El polialcohol myo-inositol también se encuentra presente de forma natural en la leche de vaca (0,1-
0,3mg/g EST), aunque su contenido es mayor en la leche humana (0.5-4 mg/g EST, [89]), siendo
frecuente su enriquecimiento en esta clase de productos infantiles, ya que se ha visto que ayuda al
desarrollo del bebé. Los mayores valores se encontraron en el producto de yogur CL_mdx_1 (1,5
mg/g EST) y en la fórmula infantil control FI_1 (1,3 mg/g EST) a la que según la etiqueta le ha
adicionado 0,8 mg/g de myo-inositol mientras que en la mayoría de leches en polvo sus valores
oscilan entre 0,3 y 0,6 mg/g EST.
En cuanto a los disacáridos distintos a la lactosa, la sacarosa permanece a bajas concentraciones
(inferiores a 1 mg/g EST en muchos casos) con dos notables excepciones: en los dos complementos
lácteos su contenido es muy elevado (150 y 330 mg/g EST), al tratarse de productos azucarados,
superior al de las muestras que contienen FOS (con valores comprendidos entre 1,3 y 2 mg/g EST),
apreciándose un ligero incremento en aquellas en que se especifica la presencia de inulina.
Como consecuencia del tratamiento térmico de estos productos se forma lactulosa por
isomerización de la lactosa y maltulosa a partir de la maltosa, ambos disacáridos se han utilizado
como indicadores del tratamiento térmico [90]. Como se observa la lactulosa, se encuentra a bajas
concentraciones (iguales o inferiores a 1 mg/g EST), destacando su bajo contenido en el
Página 24 de 35
complemento lácteo CL_mdx,preb_1 (inferior a 0,1mg/g EST) que corresponde a un yogur
líquido, aunque la cuantificación es aproximada ya que el método analítico no es el óptimo [91]. La
maltulosa se ha podido determinar en algunas fórmulas (FC_mdx_4 FI_SL, FI_SL_mdx_1,
FC_SL-mdx_1, CL_mdx-preb_1, FS_mdx_2, FS_ mdx_3) y sus cantidades oscilan entre 0,5 y
2,5 mg/g EST, encontrándose estos valores dentro del rango de los obtenidos por Morales y col.
(0,1-8,4 mg/g producto) en fórmulas infantiles convencionales [90].
Analizando los compuestos de mayor peso molecular, los contenidos en maltodextrinas fueron
variables pudiéndose encontrar en concentraciones de 210 mg/g EST en la fórmula convencional
FC_mdx_3. No obstante, los mayores valores se encontraron en las fórmulas de soja donde estos
compuestos aparecen en concentraciones de hasta 360 mg/g EST (FS_mdx_2). También se apreció
que el GP predominante en las fórmulas de soja es 5 mientras que es variable en el resto de
productos, siendo los grados 5 y 6 los predominantes en la mayoría de casos. Pero se debe tener
presente que con esta técnica no es posible determinar maltodextrinas con GP superior a 6.
Entre las muestras enriquecidas con GOS es interesante observar que en su mayoría (FI_preb_1,
FC_preb_1, FC_mdx,preb_1, FC_mdx,preb_2, FC_mdx,preb_3, FI_mdx,preb_2, FC_mdx,preb_5,
FC_mdx,preb_6, FC_mdx,preb_7, FI_mdx,preb_3, FC_mdx,preb_8, FC_mdx,preb_9, FI_mdx,preb_4),
según el perfil cromatográfico, estaban enriquecidas con Vivinal® o un producto similar, cuyo
compuesto mayoritario es el trisacárido 4’galactosil-lactosa. Este tipo de GOS se puede obtener
gracias a la β-galactosidasa de Bacillus circulans [92]. Sin embargo, sólo se pudieron cuantificar en
2 muestras (FI_preb_1 y FC_preb_1 con valores en torno a 32 y 40 mg/g EST).
Solamente en dos de las muestras, el preparado con lactosa hidrolizada (LH_1) y el complemento
lácteo (CL_mdx,preb_1) que contienen GOS se encontró un perfil similar al de la muestra de
referencia de lactosa transgalactosilada con β-galactosidasa de K. lactis, en el que predominan los
derivados de lactosa con enlace β(1→6), allolactosa, 6-galactobiosa y 6’galactosil-lactosa,
deduciéndose la procedencia del enzima utilizada en el producto hidrolizado. Según los datos de
lactosa de este producto (0,1 mg/g EST, ó 7.5 mg/L de producto) podemos observar, en
comparación con los obtenidos por Ruiz-Matute y col. [93], para preparados lácteos sin lactosa, que
la hidrólisis está muy avanzada y por tanto gran cantidad de GOS han sido hidrolizados presentando
contenidos muy inferiores (2,7 mg/g EST ó 201 mg/L de producto) al valor mínimo determinado
por dichos autores (602 mg/L). Este hecho pone de manifiesto la importancia de controlar el
proceso de hidrólisis durante la elaboración de estos productos bajos en lactosa ya que de lo
contrario se originaría una enorme pérdida de compuestos con carácter prebiótico como ocurre en la
muestra analizada en este estudio cuyo contenido en GOS es inferior a 0,5 mg/g EST.
Página 25 de 35
Cabe destacar que en aquellas fórmulas que contienen tanto GOS como Maltodextrinas añadidas
(FC_mdx,preb_1, FC_mdx,preb_2, FC_mdx,preb_3, FI_mdx,preb_2, FC_mdx,preb_5, FC_mdx,preb_6,
FC_mdx,preb_7, FI_mdx,preb_3, FC_mdx,preb_8, FC_mdx,preb_9, FI_mdx,preb_4) y en los
complementos lácteos, no se pudieron diferenciar los perfiles correspondientes a cada uno de los
compuestos, a partir del GP 3, ya que se superponían tal y como se muestra en la Figura 4. Por ello,
en estas muestras se cuantificaron los hidratos de carbono exclusivamente por GP incluyéndose en
la categoría “otros”. En estas muestras resultaría necesario utilizar otro tipo de columna con mayor
poder de resolución.
Figura 4. Perfiles cromatográficos obtenidos al superponer una muestra de referencia de Vivinal (en verde), un patrón
de Maltodextrinas (en azul) y una muestra que contiene tanto GOS como maltodextrinas añadidos (en rojo).
En las muestras que contienen FOS también se distinguieron dos tipos de perfiles: las fórmulas
FI_mdx,preb_1 y FC_mdx,preb_4 poseen un perfil correspondiente a la Raftilosa®
, que proviene
de la hidrólisis enzimática de la inulina. Los compuestos mayoritarios son moléculas de fructosa
con enlace β(2→1), de inulobiosa (2 moléculas de fructosa F2) a inuloheptosa (F7), siendo
minoritarios aquellos con moléculas de glucosa en el extremo terminal como kestosa, nistosa y los
derivados mono, di y trifructosilados de la nistosa [94]. Por el contrario, los productos
FI_SL,mdx,preb_1, FC_preb_1 y CL_mdx,preb_1 tienen un perfil correspondiente a FOS
obtenidos mediante síntesis enzimática a partir de sacarosa, kestosa, nistosa, etc. Los contenidos en
FOS fueron variables, pudiéndose encontrar hasta 30 mg/g EST.
En las fórmulas de soja se pensaba que podrían encontrarse α-GOS, unos derivados galactosilados
de la sacarosa unidos mediante enlaces α(1→6) presentes en las plantas de la familia de las
min10 20 30 40 50 60 70
pA
0
200
400
600
800
1000
FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\COLUMNA NUEVA\270214 MUESTRAS CARLOS 2014-02-27 20-41-56\106F0601.D) FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\COLUMNA NUEVA\280214 MUESTRAS CARLOS 2014-02-28 14-18-45\116F1601.D) FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\COL...14 CARREZ Y REFERENCIAS CARLOS 2014-02-11 17-41-40\108F0801.D)
min32 34 36 38 40 42
pA
0
50
100
150
200
250
300
350
400
FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\COLUMNA NUEVA\270214 MUESTRAS CARLOS 2014-02-27 20-41-56\106F0601.D) FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\COLUMNA NUEVA\280214 MUESTRAS CARLOS 2014-02-28 14-18-45\116F1601.D) FID1 A, FID1A, Front Signal (CARLOS\COL...14 CARREZ Y REFERENCIAS CARLOS 2014-02-11 17-41-40\108F0801.D)
tiempo (min)
tiempo (min)
Página 26 de 35
leguminosas. No obstante, no se detectó rafinosa (un α-GOS de GP 3) en ninguna de las fórmulas
descartándose la presencia de compuestos de este tipo como posibles impurezas de las proteínas de
soja utilizadas en la elaboración. Este tipo de fórmulas es adecuado para niños con alergia a las
proteínas lácteas y/o intolerancia a la lactosa, si bien deben ser cuidadosamente testadas a la hora de
utilizarlos para niños con galactosemia ya que podría presentar pequeñas cantidades de galactosa
como es el caso de la muestra FS_mdx_2.
Tabla 3. Caracterización de la fracción de carbohidratos por GC-FID de los 28 productos analizados. Los
carbohidratos han sido agrupados en función de su grado de polimerización (GP). Abreviaturas utilizadas:
Fru (Fructosa), Ga (Galactosa), Glu (Glucosa), Myo (Myo-inositol), Sac (Sacarosa), Lu (Lactulosa), La
(Lactosa), Mu (Maltulosa), Ma (Maltosa), Di-GOS (Di-Galacto-oligosacáridos), Kes (Kestosa), RFT
(Raftilosa), Mdx (Maltodextrinas), Vi (Vivinal) Nis (Nistosa), FNis (Fructosil-Nistosa), DFNis (Di-
Fructosil.Nistosa).
Clave FI_1 FC_mdx_1 FC_mdx_2 FC_mdx_3 FC_mdx_Lq_4
GP
= 1
Fru 0,12 ± 0,07 0,22 ± 0,01 0,13 ± 0,01 0,54 ± 0,02 0,03 ± 0,01
Ga 2,27 ± 0,24 2,55 ± 0,11 2,66 ± 0,01 0,49 ± 0,03 0,13 ± 0,01
Glu 2,88 ± 0,29 3,90 ± 0,22 1,56 ± 0,03 16,22 ± 0,40 0,27 ± 0,06
Myo 1,31 ± 0,62 0,30 ± 0,01 0,49 ± 0,01 0,79 ± 0,06 0,13 ± 0,03
GP
= 2
Sac - - - - -
Lu 0,67 ± 0,32 0,48 ± 0,03 0,74 ± 0,02 0,41 ± 0,03 0,04 ± 0,00
La 729,90 ± 61,11 310,01 ± 17,19 472,82 ± 2,89 226,13 ± 5,99 67,93 ± 1,38
Mu - - - - 0,41 ± 0,00
Ma - 14,40 ± 0,58 2,09 ± 0,03 50,64 ± 1,13 4,32 ± 0,14
Di-GOS - - - - -
Otros 8,66 ± 2,69 4,91 ± 0,17 6,33 ± 0,02 5,54 ± 0,00 0,87 ± 0,17
GP
= 3
Kes - - - - -
RFT - - - - -
Mdx - 18,93 ± 0,78 0,87 ± 0,03 50,64 ± 1,03 7,19 ± 0,02
Vi - - - - -
Otros 4,76 ± 0,90 3,28 ± 0,50 2,02 ± 0,17 3,39 ± 0,10 0,80 ± 0,04
GP
= 4
Nis - - - - -
RFT - - - - -
Mdx - 20,04 ± 0,04 0,40 ± 0,07 38,73 ± 0,10 6,81 ± 0,21
Vi - - - - -
Otros - 6,79 ± 0,14 1,29 ± 0,41 6,33 ± 1,13 2,08 ± 0,30
GP
= 5
FNis - - - - -
RFT - - - - -
Mdx - 18,87 ± 1,21 0,49 ± 0,08 49,82 ± 0,12 6,24 ± 0,37
Vi - - - - -
Otros - 6,46 ± 0,33 0,72 ± 0,33 4,94 ± 0,13 1,25 ± 0,11
GP
= 6
DFNis - - - - -
Mdx - 18,45 ± 0,63 - 71,02 ± 1,10 5,82 ± 0,30
Otros - 5,14 ± 0,46 - 9,63 ± 0,30 1,98 ± 0,10
GP = 7 - 0,39 - 0,42 ± 0,26 0,12 ± 0,04
aLas claves de cada muestra han sido asignadas de acuerdo a los criterios establecidos por la Tabla 1. bCada muestra fue
preparada por duplicado (media ± desviación estándar).
Página 27 de 35
Clave FC_mdx,preb_1 FC_mdx,preb_2 FC_mdx,preb_3 FI_mdx,preb_1 FC_mdx,preb_4 FI_SL,mdx,preb_1 FI_mdx,preb_2 FC_mdx,preb_5 G
P =
1 Fru 0,45 ± 0,00 1,64 ± 2,11 0,33 ± 0,03 3,48 ± 1,67 1,35 ± 0,08 0,48 ± 0,03 0,51 ± 0,01 0,38 ± 0,01
Ga 2,00 ± 0,44 1,82 ± 0,11 1,25 ± 0,14 0,22 ± 0,01 0,80 ± 0,04 1,36 ± 0,06 2,30 ± 0,07 1,30 ± 0,02
Glu 18,59 ± 1,57 6,78 ± 1,45 16,71 ± 1,61 1,97 ± 1,02 1,73 ± 0,08 7,11 ± 0,27 9,36 ± 0,16 12,03 ± 0,01
Myo 0,39 ± 0,02 0,36 ± 0,05 0,31 ± 0,05 0,52 ± 0,04 0,65 ± 0,02 0,32 ± 0,00 0,56 ± 0,01 0,45 ± 0,00
GP
= 2
Sac 0,09 ± 0,01 0,49 ± 0,47 0,07 ± 0,01 1,74 ± 0,62 1,31 ± 0,07 1,92 ± 0,09 - -
Lu 0,69 ± 0,08 1,00 ± 0,06 0,60 ± 0,07 0,14 ± 0,02 0,99 ± 0,10 - 0,73 ± 0,16 0,87 ± 0,08
La 405,21 ± 37,62 405,75 ± 19,61 354,50 ± 31,03 429,99 ± 16,87 492,22 ± 27,00 - 461,82 ± 8,83 399,30 ± 0,09
Mu - - - - - 0,63 ± 0,03 - -
Ma 12,98 ± 2,44 12,00 ± 1,20 12,74 ± 0,86 3,07 ± 0,35 3,80 ± 0,01 29,38 ± 1,30 3,27 ± 0,13 16,29 ± 0,21
Di-GOS - - - - - - - -
Otros 19,14 ± 1,31 20,70 ± 2,03 16,88 ± 0,97 4,37 ± 0,48 3,50 ± 0,10 2,48 ± 0,44 11,26 ± 0,02 11,80 ± 0,62
GP
= 3
Kes NS NS NS 0,92 ± 0,03 0,84 ± 0,05 18,65 ± 0,93 - -
RFT NS NS NS 4,07 ± 0,17 3,95 ± 0,23 - - -
Mdx NS NS NS 3,43 ± 0,48 4,32 ± 0,01 45,89 ± 2,01 NS NS
Vi NS NS NS - - - NS NS
Otros 30,14 ± 1,62 31,65 ± 3,20 28,96 ± 3,50 1,59 ± 0,45 1,62 ± 0,12 3,60 ± 0,01 13,74 ± 0,60 32,82 ± 0,64
GP
= 4
Nis NS NS NS 2,65 ± 0,13 2,15 ± 0,10 0,01 ± 0,00 - -
RFT NS NS NS 4,17 ± 0,13 4,72 ± 0,08 - - -
Mdx NS NS NS 7,44 ± 0,85 5,34 ± 0,07 38,09 ± 1,58 NS NS
Vi NS NS NS - - - NS NS
Otros 22,70 ± 1,03 28,69 ± 2,29 28,93 ± 1,10 5,95 ± 1,18 10,12 ± 0,00 12,29 ± 0,66 10,91 ± 1,97 34,66 ± 1,47
GP
= 5
FNis NS NS NS 2,95 ± 0,07 1,77 ± 0,09 6,18 ± 0,38 - -
RFT NS NS NS 1,01 ± 0,08 2,44 ± 0,05 - - -
Mdx NS NS NS 3,95 ± 0,28 0,92 ± 0,01 45,97 ± 3,11 NS NS
Vi NS NS NS - - - NS NS
Otros 13,21 ± 1,04 21,27 ± 2,23 26,23 ± 1,43 2,43 ± 0,31 0,58 ± 0,04 7,03 ± 0,92 8,60 ± 2,14 25,10 ± 1,09
GP
= 6
DFNis NS NS NS 2,33 ± 0,10 0,40 ± 0,01 0,46 ± 0,05 - -
Mdx NS NS NS 2,60 ± 0,48 - 54,42 ± 2,27 NS NS
Otros 8,83 ± 0,25 13,15 ± 2,25 30,45 ± 13,46 7,36 ± 2,75 1,03 ± 0,08 12,28 ± 1,03 3,67 ± 1,91 24,34 ± 2,40
GP = 7 - 0,41 ± 0,06 2,58 ± 0,11 - - 2,80 ± 0,20 0,31 ± 0,17 0,98 ± 0,14
Página 28 de 35
Clave FI_preb_1 FC_preb_1 FC_mdx,preb_6 FC_mdx,preb_7 FI_mdx,preb_3 FC_mdx,preb_8 FC_mdx,preb_9 FI_mdx,preb_4
GP
= 1
Fru 0,30 ± 0,06 0,35 ± 0,04 0,76 ± 0,07 0,41 ± 0,01 0,28 ± 0,03 0,33 ± 0,04 0,47 ± 0,02 0,49 ± 0,00
Ga 1,62 ± 0,08 1,28 ± 0,10 1,82 ± 0,07 1,11 ± 0,04 1,26 ± 0,17 1,62 ± 0,15 1,33 ± 0,10 1,67 ± 0,00
Glu 13,16 ± 0,37 16,51 ± 1,37 20,92 ± 0,97 12,49 ± 0,20 8,22 ± 0,90 13,59 ± 1,34 11,26 ± 0,94 13,91 ± 0,25
Myo 0,47 ± 0,01 0,33 ± 0,08 0,33 ± 0,00 0,70 ± 0,05 0,45 ± 0,02 0,43 ± 0,02 0,24 ± 0,01 0,53 ± 0,02
GP
= 2
Sac - 0,07 ± 0,00 0,06 ± 0,00 0,38 ± 0,03 - - - -
Lu 0,62 ± 0,01 0,62 ± 0,03 0,38 ± 0,03 0,34 ± 0,08 0,89 ± 0,03 0,60 ± 0,01 0,64 ± 0,09 0,32 ± 0,03
La 454,03 ± 10,20 529,41 ± 39,78 194,89 ± 8,76 302,89 ± 5,59 498,06 384,79 ± 34,58 362,25 ± 31,19 478,87 ± 32,22
Mu - - - - - - - -
Ma 4,02 ± 0,07 - 21,90 ± 1,11 17,39 ± 0,28 5,48 ± 0,74 16,64 ± 1,67 8,47 ± 0,94 7,48 ± 0,20
Di-GOS 14,59 ± 0,15 21,76 ± 1,69 - - - - - -
Otros - - 16,74 ± 0,91 12,10 ± 0,19 10,11 ± 2,69 11,70 ± 0,47 12,12 ± 1,50 14,14 ± 0,64
GP
= 3
Kes - 0,04 ± 0,00 NS NS - - - -
RFT - - NS NS - - - -
Mdx - - NS NS NS NS NS NS
Vi 12,16 ± 0,35 13,21 ± 1,13 NS NS NS NS NS NS
Otros 3,42 ± 0,21 3,56 ± 0,27 39,76 ± 1,78 35,79 ± 2,05 12,61 ± 1,50 30,26 ± 3,31 23,80 ± 1,67 18,90 ± 0,20
GP
= 4
Nis - 0,04 ± 0,00 NS NS - - - -
RFT - - NS NS - - - -
Mdx - - NS NS NS NS NS NS
Vi 3,91 ± 0,19 4,06 ± 0,40 NS NS NS NS NS NS
Otros 6,80 ± 0,32 5,71 ± 0,10 29,60 ± 1,26 42,82 ± 0,99 8,47 ± 1,37 29,21 ± 3,21 22,24 ± 0,27 22,60 ± 0,34
GP
= 5
FNis - - NS NS - - - -
RFT - - NS NS - - - -
Mdx - - NS NS NS NS NS NS
Vi 1,17 ± 0,07 1,16 ± 0,11 NS NS NS NS NS NS
Otros 1,59 ± 0,01 1,45 ± 0,16 24,51 ± 2,55 24,79 ± 0,71 4,31 ± 0,64 26,40 ± 2,66 16,80 ± 0,13 3,11 ± 0,26
GP
= 6
DFNis - - NS NS - - - -
Mdx - - NS NS NS NS NS NS
Otros 0,35 ± 0,26 - 17,09 ± 4,77 21,82 ± 3,90 0,87 ± 0,33 19,18 ± 4,54 12,93 ± 0,72 1,98 ± 0,05
GP = 7 0,13 ± 0,01 - - - - 0,43 ± 0,15 0,20 ± 0,05 -
Página 29 de 35
Clave FI_SL,mdx_1 FC_SL,mdx_1 FS_mdx_1 FS_mdx_2 LH_1 CL_mdx,preb_Lq_1 CL_mdx_Lq_1
GP
= 1
Fru 0,56 ± 0,01 0,36 ± 0,01 0,26 ± 0,03 0,32 ± 0,03 11,31 ± 0,20 3,07 ± 0,02 7,50 ± 0,20
Ga 0,10 ± 0,02 0,73 ± 0,02 - 0,09 ± 0,03 56,83 ± 0,85 1,06 ± 0,01 44,97 ± 0,06
Glu 13,10 ± 0,39 10,07 ± 0,05 40,07 ± 0,40 15,70 ± 0,06 61,85 ± 1,39 3,61 ± 0,05 10,72 ± 0,05
Myo 0,15 ± 0,00 0,11 ± 0,03 0,32 ± 0,03 0,31 ± 0,01 0,23 ± 0,01 0,14 ± 0,11 1,48 ± 0,25
GP
= 2
Sac - - - - 4,14 ± 0,05 153,02 ± 1,47 329,30 ± 6,86
Lu - - - - - 0,07 ± 0,03 0,52 ± 0,07
La - - - - 0,10 ± 0,01 91,23 ± 1,51 167,84 ± 0,02
Mu 2,35 ± 0,05 0,53 ± 0,03 0,83 ± 0,00 0,55 ± 0,02 - - -
Ma 59,21 ± 1,99 30,74 ± 0,15 70,96 ± 0,50 52,54 ± 0,14 - - -
Di-GOS - - - - 0,40 ± 0,01 0,07 ± 0,01 -
Otros 2,14 ± 0,19 2,26 ± 0,23 2,32 ± 0,58 1,96 ± 0,58 0,99 ± 0,01 1,22 ± 0,14 484,85 ± 36,14
GP
= 3
Kes - - - - - 0,09 ± 0,00 -
RFT - - - - - - -
Mdx 72,10 ± 2,36 47,16 ± 0,22 81,54 ± 0,70 60,22 ± 0,19 - 0,52 ± 0,00 -
Vi - - - - - - -
Otros 4,07 ± 0,13 2,82 ± 0,65 4,03 ± 0,18 3,11 ± 0,48 1,19 ± 0,07 0,78 ± 0,22 15,12 ± 0,15
GP
= 4
Nis - - - - - 0,08 ± 0,03 -
RFT - - - - - - -
Mdx 47,16 ± 2,24 39,16 ± 0,27 51,75 ± 0,67 55,58 ± 1,41 - 0,73 ± 0,47 -
Vi - - - - - - -
Otros 10,37 ± 0,01 9,88 ± 0,48 8,18 ± 0,49 8,33 ± 1,25 - 1,15 ± 0,87 -
GP
= 5
FNis - - - - - 0,08 ± 0,00 -
RFT - - - - - - -
Mdx 107,67 ± 5,14 44,29 ± 1,43 140,46 ± 2,31 83,70 ± 1,81 - 0,21 ± 0,03 -
Vi - - - - - - -
Otros 8,68 ± 0,85 5,86 ± 0,09 9,58 ± 0,09 9,31 ± 1,12 - 0,45 ± 0,20 -
GP
= 6
DFNis - - - - - - -
Mdx 61,53 ± 11,88 54,91 ± 1,29 92,08 ± 2,07 77,15 ± 7,87 - - -
Otros 12,66 ± 2,11 10,77 ± 0,44 11,89 ± 0,49 16,50 ± 2,33 - 0,91 ± 0,68 -
GP = 7 1,32 ± 0,21 1,49 ± 0,27 0,52 ± 0,19 3,16 ± 0,30 - - -
Página 30 de 35
4.4. Caracterización de la Fracción de Carbohidratos por HPLC
Puesta a punto del método
Se ensayaron hasta un total de 4 fases móviles utilizando diferentes proporciones de acetonitrilo
(AcN)/agua: 70:30; 60:40; 55:45; 50:50. La mejor resolución de los carbohidratos de bajo peso
molecular se produjo utilizando una fase móvil de AcN/Agua 70:30, con ella era posible separar los
monosacáridos Fructosa y Galactosa, sin embargo, tras un tiempo de análisis de 50 minutos sólo se
podían detectar compuestos hasta un GP 7. Por otra parte la separación y sensibilidad conseguida
para compuestos con un GP entre 1 y 6 era muy inferior a la alcanzada con GC y con la técnica de
HPLC la fracción que más nos interesaba era la de alto peso molecular. Al aumentar la proporción
de agua en la fase móvil 50:50 el tiempo de análisis era muy breve los monosacáridos eluían con el
frente impidiendo su distinción (dado su fuerte carácter hidrofílico), y el GP máximo detectado era
14indicando que había compuestos que coeluían. Según se pudo comprobar la mejor separación de
los carbohidratos, para el fin de este trabajo, se produjo utilizando una fase móvil AcN/agua 55:45
ya que los compuestos se separaban de forma adecuada según su GP y se detectaban compuestos
hasta un GP máximo de 17.
Caracterización
En esta técnica los carbohidratos presentes en las muestras solamente pudieron separarse en función
de su GP. El mayor GP encontrado fue 17 en la muestra FI_SL,mdx,preb_1, que carece de lactosa
y ha sido enriquecida en maltodextrinas, lo cual explica la presencia de polímeros de elevado peso
molecular. En la mayoría de muestras se encontraron GP de 11-12, siendo la fórmula convencional
FI_1 y las muestras de lactosa hidrolizada LH_1 las que menores GP presentaban, 3 y 4
respectivamente a concentraciones mínimas, inferiores a 0,7 mg/g EST. Como ya se ha
comentado, el gran avance de la hidrólisis de la lactosa en la muestra LH_1 ha supuesto la
degradación de la casi totalidad de los GOS que se forman en las primeras etapas del proceso.
Mientras que en la fórmula convencional parece haber una cantidad ínfima de trisacáridos. Como
cabía esperar, las muestras en las que se ha encontrado un mayor GP son aquellas enriquecidas en
maltodextrinas en muchas de las cuales se podía apreciar fácilmente GP de 11 a 13. También en las
fórmulas de soja se observaron GP elevados. Estas fórmulas junto a la muestra sin lactosa
enriquecida en prebióticos (FI_SL,mdx,preb_1) presentaban las mayores concentraciones de
polímeros de GP 10 y superior (de 17 a 34 mg/100g). En las muestras con maltodextrinas también
se puede ver que, en general, los compuestos derivados de la maltosa más abundantes son los de GP
Página 31 de 35
entre 3 a 7, a partir de este GP la tendencia general indica que la concentración de los compuestos
disminuye al aumentar dicho GP.
Comparación entre los valores del etiquetado y los obtenidos por HPLC y GC:
Finalmente, para concluir este trabajo se realiza un análisis comparativo de los resultados obtenidos
por las dos técnicas cromatográficas utilizadas comparándolos entre sí y contrastándolos con la
información disponible en el etiquetado. Para ello se tendrán en cuenta los contenidos en Hidratos
de Carbono totales, azúcares, lactosa y prebióticos:
Hidratos de Carbono totales: En líneas generales, como era de esperar, los valores de
carbohidratos cuantificados por GC son menores que los que figuran en la etiqueta, estas diferencias
son especialmente reseñables para las muestras sin lactosa, incluidas las fórmulas de soja, así como
las muestras con alto contenido en maltodextrinas como FI_SL,mdx,preb_1, FS_mdx_1 o
FI_SL,mdx_1. La única excepción destacable es la fórmula infantil convencional FI_1, en la que
se obtiene un valor de lactosa muy elevado, aunque comparable con valores de una leche humana.
En cuanto a los valores de carbohidratos obtenidos por HPLC son, en general más parecidos a los
de la etiqueta, e incluso algunos más altos. Hay que tener en cuenta que se desconoce la técnica
utilizada por los laboratorios de análisis en el control de calidad de estos productos y, dada la
compleja preparación de muestra que hay que seguir para el análisis por GC, es poco probable que
esta técnica haya sido empleada de manera rutinaria en la industria, siendo un equipo de HPLC la
opción más probable. Además, dependiendo del método seguido y la fase móvil escogida pueden
detectarse compuestos de distinto peso molecular. También puede ocurrir que el análisis de haya,
centrado solamente en los compuestos mayoritarios, como la lactosa, dependiendo del criterio
escogido.
En la determinación de carbohidratos por HPLC únicamente se obtienen valores mucho más bajos
que los que aparecen en la etiqueta para las fórmulas a base de maltodextrinas, sin lactosa,
pudiéndose esto deber en parte al uso de una técnica que permita detectar compuestos de mayor
grado de polimerización a las aquí utilizadas, más específica para este tipo de productos.
Por otro lado hay que considerar que no todos los lotes de productos son iguales, como se puede
observar en el análisis realizado de las muestras FI_mdx,preb_1, 2 y 3 en las que se aprecia una
variación importante especialmente en el contenido en lactosa de la muestra 3, a pesar de que en la
etiqueta aparecen los mismos valores.
Página 32 de 35
Lactosa: En el análisis de la lactosa los valores más fiables son los obtenidos por GC, ya que en
HPLC no se pueden dar valores de lactosa aislada, correspondiendo estos valores realmente al total
de disacáridos presentes en la muestra, y dependiendo del porcentaje que suponga la lactosa en la
composición (generalmente mayoritaria) podría dar lugar a grandes diferencias entre unos valores y
otros. En los productos en los que aparece el valor de lactosa en el etiquetado se puede observar una
muy buena correlación con los valores obtenidos por GC, siendo mayor la diferencia en la muestra
FC_mdx,preb_3, posiblemente debido a la variabilidad de los lotes, y la muestra FI_1 que, como
ya se ha comentado presenta un contenido en lactosa muy elevado.
En todos los casos hay que tener en cuenta que no todos los laboratorios de análisis utilizan la
misma técnica para la determinación de carbohidratos y que los criterios a la hora de elaborar el
etiquetado no son exactamente iguales en todas las empresas, siendo frecuente dar el valor de un
azúcar mayoritario como la lactosa como el valor total de azúcares o incluso de hidratos de carbono,
lo cual puede generar grandes diferencias a la hora de comparar unos productos y otros.
5. CONCLUSIONES
- Para analizar fórmulas infantiles con la fracción de carbohidratos modificada es necesario la
utilización de 2 técnicas cromatográficas complementarias: CG-FID y HPLC-RID
- GC-FID es una técnica más exacta que aporta una mejor resolución y mayor información
cualitativa aunque solo se pueden cuantificar compuestos de GP ≤ 7.
- Es posible diferenciar el tipo de compuesto prebiótico añadido (GOS y FOS) y su origen
enzimático.
- La técnica HPLC-RID con una fase móvil AcN/agua 55:45 posibilita la separación de los
carbohidratos por su GP detectándose y cuantificándose compuestos con 17 monómeros.
- En líneas generales, los resultados obtenidos concuerdan con los que aparecen en el
etiquetado, aunque existen discrepancias debidas probablemente a la técnica utilizada en los
laboratorios y no existir un mismo criterio unificador en el etiquetado de todos los
productos.
6. BIBLIOGRAFÍA
1. WHO, Infant and young child feeding: Model Chapter for textbooks for medical students and allied health professionals. 2009: p. 1-111.
2. Bick, D., The benefits of breastfeeding for the infant. British Journal of Midwifery, 1999. 7(5): p. 312-319.
3. Chichlowski, M., et al., The Influence of Milk Oligosaccharides on Microbiota of Infants: Opportunities for Formulas, in Annual Review
of Food Science and Technology, Vol 2, M.P. Doyle and T.R. Klaenhammer, Editors. 2011, Annual Reviews: Palo Alto. p. 331-351.
4. Agostoni, C., et al., Prebiotic oligosaccharides in dietetic products for infants: A commentary by the ESPGHAN committee on nutrition.
Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 2004. 39(5): p. 465-473.
5. Heine, W.E., C. Mohr, and K.D. Wutzke, HOST-MICROFLORA CORRELATIONS IN INFANT NUTRITION. Progress in Food and
Nutrition Science, 1992. 16(2): p. 181-197.
6. Radke, M., et al., Phosphate concentration. Does reduction in infant formula feeding modify the micro-ecology of the intestine?
Monatsschrift Kinderheilkunde : Organ der Deutschen Gesellschaft fur Kinderheilkunde, 1992. 140(9 Suppl 1): p. S40-4.
7. Bullen, J.J., IRON-BINDING PROTEINS IN MILK AND RESISTANCE TO ESCHERICHIA-COLI INFECTION IN INFANTS.
Postgraduate Medical Journal, 1975. 51: p. 67-70.
8. Roberfroid, M., et al., Prebiotic effects: metabolic and health benefits. British Journal of Nutrition, 2010. 104(S2): p. S1-S63.
Página 33 de 35
9. Gopal, P.K. and H.S. Gill, Oligosaccharides and glycoconjugates in bovine milk and colostrum. British Journal of Nutrition, 2000. 84: p.
S69-S74.
10. Urashima, T. and E. Taufik, Oligosaccharides in milk: their benefits and future utilization. MEDIA PETERNAKAN-Journal of Animal
Science and Technology, 2011. 33(3).
11. Erney, R.M., et al., Variability of human milk neutral oligosaccharides in a diverse population. Journal of Pediatric Gastroenterology and
Nutrition, 2000. 30(2): p. 181-192.
12. Barile, D. and R.A. Rastall, Human milk and related oligosaccharides as prebiotics. Current Opinion in Biotechnology, 2013. 24(2): p.
214-219.
13. Marcobal, A., et al., Consumption of Human Milk Oligosaccharides by Gut-Related Microbes. Journal of Agricultural and Food
Chemistry, 2010. 58(9): p. 5334-5340.
14. Sela, D.A. and D.A. Mills, Nursing our microbiota: molecular linkages between bifidobacteria and milk oligosaccharides. Trends in
Microbiology, 2010. 18(7): p. 298-307.
15. Morrow, A.L., et al., Human-milk glycans that inhibit pathogen binding protect breast-feeding infants against infectious diarrhea. Journal
of Nutrition, 2005. 135(5): p. 1304-1307.
16. Newburg, D.S., G.M. Ruiz-Palacios, and A.L. Morrow, Human milk glycans protect infants against enteric pathogens, in Annual Review
of Nutrition2005, Annual Reviews: Palo Alto. p. 37-58.
17. Howie, P.W., Protective effect of breastfeeding against infection in the first and second six months of life, in Integrating Population
Outcomes, Biological Mechanisms and Research Methods in the Study of Human Milk and Lactation, M.K. Davis, et al., Editors. 2002,
Kluwer Academic/Plenum Publ: New York. p. 141-147.
18. Howie, P.W., et al., PROTECTIVE EFFECT OF BREAST-FEEDING AGAINST INFECTION. British Medical Journal, 1990. 300(6716):
p. 11-16.
19. Kramer, M.S. and R. Kakuma, Optimal duration of exclusive breastfeeding. Cochrane Database of Systematic Reviews, 2012(8): p. 132.
20. Sudo, N., et al., The requirement of intestinal bacterial flora for the development of an IgE production system fully susceptible to oral
tolerance induction. Journal of Immunology, 1997. 159(4): p. 1739-1745.
21. Oozeer, R., et al., Intestinal microbiology in early life: specific prebiotics can have similar functionalities as human-milk
oligosaccharides. The American journal of clinical nutrition, 2013. 98(2): p. 561S-571S.
22. Rotimi, V.O. and B.I. Duerden, THE DEVELOPMENT OF THE BACTERIAL-FLORA IN NORMAL NEONATES. Journal of Medical
Microbiology, 1981. 14(1): p. 51-62.
23. Brook, I., et al., AEROBIC AND ANAEROBIC BACTERIAL-FLORA OF THE MATERNAL CERVIX AND NEWBORN GASTRIC FLUID
AND CONJUNCTIVA - PROSPECTIVE-STUDY. Pediatrics, 1979. 63(3): p. 451-455.
24. Tannock, G.W., et al., PLASMID PROFILING OF MEMBERS OF THE FAMILY ENTEROBACTERIACEAE, LACTOBACILLI, AND
BIFIDOBACTERIA TO STUDY THE TRANSMISSION OF BACTERIA FROM MOTHER TO INFANT. Journal of Clinical Microbiology,
1990. 28(6): p. 1225-1228.
25. Long, S.S. and R.M. Swenson, DEVELOPMENT OF ANAEROBIC FECAL FLORA IN HEALTHY NEWBORN-INFANTS. Journal of
Pediatrics, 1977. 91(2): p. 298-301.
26. Satokari, R.M., et al., Diversity of Bifidobacterium and Lactobacillus spp. in Breast-Fed and Formula-Fed Infants as Assessed by 16S
rDNA Sequence Differences. MICROBIAL ECOLOGY in Health and Disease, 2002. 14: p. 97-105.
27. Benno, Y., K. Sawada, and T. Mitsuoka, THE INTESTINAL MICROFLORA OF INFANTS - COMPOSITION OF FECAL FLORA IN
BREAST-FED AND BOTTLE-FED INFANTS. Microbiology and Immunology, 1984. 28(9): p. 975-986.
28. Lundequist, B., C.E. Nord, and J. Winberg, THE COMPOSITION OF THE FECAL MICROFLORA IN BREASTFED AND BOTTLE FED
INFANTS FROM BIRTH TO 8 WEEKS. Acta Paediatrica Scandinavica, 1985. 74(1): p. 45-51.
29. Orrhage, K. and C.E. Nord, Factors controlling the bacterial colonization of the intestine in breastfed infants. Acta Paediatrica, 1999. 88:
p. 47-57.
30. Mevissenverhage, E.A.E., et al., BIFIDOBACTERIUM, BACTEROIDES, AND CLOSTRIDIUM SPP IN FECAL SAMPLES FROM
BREAST-FED AND BOTTLE-FED INFANTS WITH AND WITHOUT IRON SUPPLEMENT. Journal of Clinical Microbiology, 1987.
25(2): p. 285-289.
31. Mata, L.J. and J.J. Urrutia, INTESTINAL COLONIZATION OF BREAST-FED CHILDREN IN A RURAL AREA OF LOW
SOCIOECONOMIC LEVEL. Annals of the New York Academy of Sciences, 1971. 176(JAN7): p. 93-&.
32. Stark, P.L. and A. Lee, THE MICROBIAL ECOLOGY OF THE LARGE BOWEL OF BREAST-FED AND FORMULA-FED INFANTS
DURING THE 1ST YEAR OF LIFE. Journal of Medical Microbiology, 1982. 15(2): p. 189-203.
33. Harmsen, H.J.M., et al., Analysis of intestinal flora development in breast-fed and formula-fed infants by using molecular identification
and detection methods. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 2000. 30(1): p. 61-67.
34. Qin, J., et al., A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. Nature, 2010. 464(7285): p. 59-65.
35. Moreno Villares, J. Fórmulas para lactantes sanos. in Anales de Pediatría. 2001. Elsevier.
36. Cilleruelo, M.L. and C. Calvo, Fórmulas adaptadas para lactantes y modificaciones actuales de éstas. Alimentación infantil, 2014.
Fórmulas especiales en Pediatría: p. 325-339.
37. Ruiz, V.M., Avances en el estudio de la calidad de mieles y fórmulas infantiles mediante el análisis de carbohidratos y sus productos de
degradación, 2006, Universidad Autónoma de Madrid.
38. BOE, Real Decreto 867/2008, de 23 de mayo por el que se aprueba la Reglamentación Técnico Sanitaria específica de los preparados
para lactantes y de los preparados de continuación., 2008.
39. Braquehais, F.R. and M.J.B. Cava, Functionality of alpha-glucans in special formulas for infant and clinical nutrition. Starch-Starke,
2011. 63(7): p. 432-442.
40. Pascual, M.C. and S.F. Fernández, Fórmulas especiales. Revista Pediatría de Atención Primaria, 2006. Vol. III.
41. Mayatepek, E., B. Hoffmann, and T. Meissner, Inborn errors of carbohydrate metabolism. Best Practice & Research in Clinical
Gastroenterology, 2010. 24(5): p. 607-618.
42. Xu, J.-H. and Y. Huang, [Efficiency of lactose-free formula feeding as an adjunctive therapy in infants with acute diarrhea]. Zhongguo
dang dai er ke za zhi= Chinese journal of contemporary pediatrics, 2009. 11(7): p. 532-536.
43. Pharmaceutiques, U.d.L., Dietary modulation of the human colonie microbiota: introducing the concept of prebiotics. Journal of Nutrition,
1995. 125: p. 1401-1412.
44. Macfarlane, G.T. and J.H. Cummings, Probiotics and prebiotics: can regulating the activities of intestinal bacteria benefit health? British
Medical Journal, 1999. 318(7189): p. 999-1003.
45. Gibson, G.R., et al., Dietary modulation of the human colonic microbiota: updating the concept of prebiotics. Nutr Res Rev, 2004. 17(2):
p. 259-275.
46. Villamiel, M., et al., 9 Production and Bioactivity of Oligosaccharides Derived from Lactose. Food Oligosaccharides: Production,
Analysis and Bioactivity, 2014: p. 137.
47. Ghisolfi, J., et al., Infant formula supplemented with probiotics or prebiotics: Never, now, or someday? Journal of Pediatric
Gastroenterology and Nutrition, 2002. 35(4): p. 467-468.
48. Szilagyi, A., Lactose - a potential prebiotic. Alimentary Pharmacology & Therapeutics, 2002. 16(9): p. 1591-1602.
Página 34 de 35
49. Kailasapathy, K. and J. Chin, Survival and therapeutic potential of probiotic organisms with reference to Lactobacillus acidophilus and
Bifidobacterium spp. Immunology and Cell Biology, 2000. 78(1): p. 80-88.
50. Playne, M. and R. Crittenden, Commercially available oligosaccharides. International Dairy Federation, 1996.
51. Rastall, R.A., Functional Oligosaccharides: Application and Manufacture, in Annual Review of Food Science and Technology, Vol 1,
M.P. Doyle and T.R. Klaenhammer, Editors. 2010, Annual Reviews: Palo Alto. p. 305-339.
52. Espinosa, R.M., M. Tamez, and P. Prieto, Efforts to emulate human milk oligosaccharides. British Journal of Nutrition, 2007. 98: p. S74-
S79.
53. Fanaro, S., et al., Acidic oligosaccharides from pectin hydrolysate as new component for infant formulae: Effect on intestinal flora, stool
characteristics, and pH. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 2005. 41(2): p. 186-190.
54. Falony, G., et al., In Vitro Kinetic Analysis of Fermentation of Prebiotic Inulin-Type Fructans by Bifidobacterium Species Reveals Four
Different Phenotypes. Applied and Environmental Microbiology, 2009. 75(2): p. 454-461.
55. Ganzle, M.G., Enzymatic synthesis of galacto-oligosaccharides and other lactose derivatives (hetero-oligosaccharides) from lactose.
International Dairy Journal, 2012. 22(2): p. 116-122.
56. Barboza, M., et al., Glycoprofiling Bifidobacterial Consumption of Galacto-Oligosaccharides by Mass Spectrometry Reveals Strain-
Specific, Preferential Consumption of Glycans. Applied and Environmental Microbiology, 2009. 75(23): p. 7319-7325.
57. Tzortzis, G. and J. Vulevic, Galacto-oligosaccharide prebiotics, in Prebiotics and probiotics science and technology2009, Springer. p.
207-244.
58. Salvini, F., et al., A Specific Prebiotic Mixture Added to Starting Infant Formula Has Long-Lasting Bifidogenic Effects. Journal of
Nutrition, 2011. 141(7): p. 1335-1339.
59. McBain, A.J. and G.T. MacFarlane, Modulation of genotoxic enzyme activities by nondigestible oligosaccharide metabolism in in-vitro
human gut bacterial ecosystems. Journal of Medical Microbiology, 2001. 50(9): p. 833-842.
60. Tzortzis, G., et al., A novel galactooligosaccharide mixture increases the bifidobacterial population numbers in a continuous in vitro
fermentation system and in the proximal colonic contents of pigs in vivo. Journal of Nutrition, 2005. 135(7): p. 1726-1731.
61. Walton, G.E., et al., A randomised crossover study investigating the effects of galacto-oligosaccharides on the faecal microbiota in men
and women over 50 years of age. British Journal of Nutrition, 2012. 107(10): p. 1466-1475.
62. Moreno, F.J., et al., Analysis, structural characterization, and bioactivity of oligosaccharides derived from lactose. Electrophoresis, 2014.
63. Whisner, C.M., et al., Galacto-oligosaccharides increase calcium absorption and gut bifidobacteria in young girls: a double-blind cross-
over trial. British Journal of Nutrition, 2013. 110(07): p. 1292-1303.
64. Macfarlane, G.T., H. Steed, and S. Macfarlane, Bacterial metabolism and health-related effects of galacto-oligosaccharides and other
prebiotics. Journal of Applied Microbiology, 2008. 104(2): p. 305-344.
65. Drakoularakou, A., et al., A double-blind, placebo-controlled, randomized human study assessing the capacity of a novel galacto-
oligosaccharide mixture in reducing travellers' diarrhoea. European Journal of Clinical Nutrition, 2010. 64(2): p. 146-152.
66. Silk, D.B.A., et al., Clinical trial: the effects of a trans-galactooligosaccharide prebiotic on faecal microbiota and symptoms in irritable
bowel syndrome. Alimentary Pharmacology & Therapeutics, 2009. 29(5): p. 508-518.
67. Office, E.P. galactooligosaccharide Result List. 2014 30/01/2014 [cited 2014 30/01/2014]; Available from:
http://worldwide.espacenet.com/searchResults?DB=EPODOC&submitted=true&locale=en_EP&ST=singleline&compact=false&DB=EP
ODOC&query=galactooligosaccharide.
68. Knol, J., et al., Increase of faecal bifidobacteria due to dietary oligosaccharides induces a reduction of clinically relevant pathogen germs
in the faeces of formula-fed preterm infants. Acta Paediatrica, 2005. 94: p. 31-33.
69. Mihatsch, W.A., J. Hoegel, and F. Pohlandt, Prebiotic oligosaccharides reduce stool viscosity and accelerate gastrointestinal transport in
preterm infants. Acta Paediatrica, 2006. 95(7): p. 843-848.
70. Nakamura, N., et al., Molecular Ecological Analysis of Fecal Bacterial Populations from Term Infants Fed Formula Supplemented with
Selected Blends of Prebiotics. Applied and Environmental Microbiology, 2009. 75(4): p. 1121-1128.
71. Bunesova, V., et al., Growth of infant fecal bacteria on commercial prebiotics. Folia Microbiologica, 2012. 57(4): p. 273-275.
72. Barile, D., et al., Permeate from cheese whey ultrafiltration is a source of milk oligosaccharides. International Dairy Journal, 2009. 19(9):
p. 524-530.
73. Urashima, T., et al., Oligosaccharides of milk and colostrum in non-human mammals. Glycoconjugate Journal, 2001. 18(5): p. 357-371.
74. Food, S.C.o., Report of the Scientific Committee on Food on the Revision of Essential Requirements of Infant Formulae and Follow-on
Formulae, 2003.
75. Aggett, P., et al., Core data for nutrition trials in infants: A discussion document - A commentary by the ESPGHAN Committee on
Nutrition. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 2003. 36(3): p. 338-342.
76. Cilla, A., et al., PREBIOTICS AND NUCLEOTIDES IN INFANT NUTRITION; REVIEW OF THE EVIDENCE. Nutricion Hospitalaria,
2012. 27(4): p. 1037-1048.
77. Soga, T., Analysis of carbohydrates in food and beverages by HPLC and CE. Journal of chromatography library, 2002. 66: p. 483-502.
78. Moreno, F., et al., Determination of maltodextrins in enteral formulations by three different chromatographic methods. Chromatographia,
1999. 50(11-12): p. 705-710.
79. Matute, A.I.R., Desarrollo de nuevas metodologías para la caracterización de los carbohidratos de la miel y su utilidad en la detección de
adulteraciones, 2007, Universidad Autónoma de Madrid.
80. Ruiz-Matute, A.I., et al., Derivatization of carbohydrates for GC and GC–MS analyses. Journal of Chromatography B, 2011. 879(17): p.
1226-1240.
81. Fox, A., A current perspective on analysis of sugar monomers using GC-MS and GC-MS/MS. Journal of chromatography library, 2002.
66: p. 829-843.
82. Molnár-Perl, I., Simultaneous quantitation of acids and sugars by chromatography: gas or high-performance liquid chromatography?
Journal of Chromatography A, 1999. 845(1): p. 181-195.
83. Carlsson, N.G., H. Karlsson, and A.S. Sandberg, Determination of oligosaccharides in foods, diets, and intestinal contents by high-
temperature gas chromatography and gas chromatography/mass spectrometry. Journal of agricultural and food chemistry, 1992. 40(12):
p. 2404-2412.
84. Sanz, M. and I. Martínez-Castro, Recent developments in sample preparation for chromatographic analysis of carbohydrates. Journal of
Chromatography A, 2007. 1153(1): p. 74-89.
85. Beenackers, J., B. Kuster, and H. van der Baan, Adsorption of carbohydrates on anion exchangers. Applied catalysis, 1986. 23(1): p. 183-
197.
86. BOE, Real Decreto 179/2003, de 14 de febrero, por el que se aprueba la Norma de Calidad para el yogur o yoghourt, 2003.
87. BOE, Real Decreto 1054/2003, de 1 de agosto, por el que se aprueba la Norma de calidad para determinados tipos de leche conservada
parcial o totalmente deshidratada destinados a la alimentación humana. 2003. BOE núm.184.
88. Risé, P., et al., Different patterns characterize Omega 6 and Omega 3 long chain polyunsaturated fatty acid levels in blood from Italian
infants, children, adults and elderly. Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids (PLEFA), 2013. 89(4): p. 215-220.
89. de Segura, A.G., et al., Heating-induced bacteriological and biochemical modifications in human donor milk after holder pasteurisation.
Journal of pediatric gastroenterology and nutrition, 2012. 54(2): p. 197-203.
Página 35 de 35
90. Morales, V., A. Olano, and N. Corzo, Ratio of maltose to maltulose and furosine as quality parameters for infant formula. Journal of
agricultural and food chemistry, 2004. 52(22): p. 6732-6736.
91. Montilla, A., et al., Determination of oligosaccharides by conventional high-resolution gas chromatography. Chromatographia, 2006.
63(9-10): p. 453-458.
92. Torres, D.P., et al., Galacto‐Oligosaccharides: Production, Properties, Applications, and Significance as Prebiotics. Comprehensive
Reviews in Food Science and Food Safety, 2010. 9(5): p. 438-454.
93. Ruiz-Matute, A.I., et al., Presence of mono-, di-and galactooligosaccharides in commercial lactose-free UHT dairy products. Journal of
Food Composition and Analysis, 2012. 28(2): p. 164-169.
94. Joye, D. and H. Hoebregs, Determination of oligofructose, a soluble dietary fiber, by high-temperature capillary gas chromatography.
Journal of AOAC International, 2000. 83(4): p. 1020-1025.