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UNIVERSIDAD PERUANA LOS ANDES

FACULTAD CIENCIAS DE LA SALUD

CARRERA PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA

EFECTO COMPARATIVO CICATRIZANTE DE Copaifera officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa orellana L. EN LESIONES CUTÁNEAS

DE RATONES ALBINOS MUS MÚSCULOS

TESIS PARA OPTAR EL TITULO PROFESIONAL DE:

MÉDICO VETERINARIO PRESENTADO POR:

BACHILLER: ALEJANDRO CHANCA COQUIL HUANCAYO - PERU 2014

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3

ASESOR:

M.V. JUAN CARLOS SOLANO AYALA

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“ El objetivo principal de la ciencia no es abrir la puerta a una sabiduría infinita,

sino poner límites a los errores infinitos"

Galileo

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A Dios por darme sabiduría y paciencia para lograr culminar mi Carrera y por brindarme salud y protección durante este tiempo.

A mis padres Juan y Balbina, quienes en todo momento me brindaron su apoyo y comprensión y quienes debo esta meta que hoy he alcanzado. A, mis hermanos con quienes quiero compartir este logro.

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AGRADECIMIENTO

A toda mi familia por permitir que mis sueños se hagan realidad, en

especial a mi hermano Alipio por su gran apoyo, tiempo y dedicación

colaboró de manera muy significativa a lo largo de todo este proceso.

A mi asesor M.V. Juan Carlos Solano Ayala, de manera muy especial

por su gentileza y profesionalismo y apoyo a la ejecución del presente

trabajo de tesis.

A mis profesores, que a lo largo de mi Carrera me han inculcado

conocimientos y valores, afianzando de esta manera mi formación

profesional.

Quiero dejar un testimonio de gratitud a los docentes y estudiantes de la

Facultad de Ciencias de la Salud, Carrera Profesional de Medicina

Veterinaria por su apoyo incondicional que me brindaron en la

consecución del experimento.

¡Gracias a todos por su gran paciencia!

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INDICE

Página

Dedicatoria 03

Agradecimiento 04

Índice 05

Resumen 07

Abstract 09

Introducción 11

CAPITULO I

I. GENERALIDADES 12

1.1. Descripción del problema 13

1.2. Delimitación del problema 13

1.3. Formulación del problema de investigación 14

1.4. Objetivos 14

1.4.1 Objetivo General 14

1.4.2 Objetivos específicos 15

1.5. Justificación del estudio 15

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1.6. Marco Teórico 16

1.6.1. Antecedentes de estúdio 17

1.6.2. Bases Teóricas 19

1.6.3. Bases conceptuales 35

1.7. Hipótesis 38

1.7.1. Hipótesis General 38

1.7.2. Hipótesis especifico 38

1.8. Variables de estudio 39

1.8.1. Operacionalización de las variables 39

CAPITULO II

II. METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN 40

2.1 Tipo de investigación 40

2.2. Nivel de investigación 40

2.3. Método de la investigación 40

2.4. Definición de la Población y muestra 40

2.5. Análisis y Procesamiento de datos 42

2.6. Variables de estudio 43

2.7. Técnicas de recolección de datos 43

2.8. Método del corte de la piel 43

2.9. De la aplicación de los productos naturales 44

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CAPITULO III

III. RESULTADOS, ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN 46

CAPITULO IV

IV. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 57

Discusión de Resultados 57

Conclusiones 60

Recomendaciones 62

Bibliografía 68

Anexos 69

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Efecto comparativo cicatrizante de Copaifera officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa orellana L. en lesiones cutáneas de ratones albinos Mus musculus

RESUMEN

El presente trabajo de investigación científica fue realizado en el Bioterio y los laboratorios de la facultad de Ciencias de la Salud de la Universidad Peruana Los Andes, planteando el problema, ¿ Con el uso de tres productos naturales (cocona, achiote y copaiba), se mejora el tiempo de cicatrización en ratones albinos?, siendo el objetivo general de evaluar el efecto del achiote, cocona y copaiba y el tiempo de cicatrización en ratones albinos; para ello se han utilizado un total de 30 ratones albinos. De los resultados obtenidos se aprecia que el tiempo de cicatrización de los ratones oscila entre 11 y 20 días, con una mediana de 15 días, una media de 14,78 días, una desviación típica de 2,58 días, un coeficiente de variación de 17,4%, un coeficiente de asimetría de 0,05 y un coeficiente de curtosis de –0,98. Estos datos estadísticos indican que la distribución del tiempo de cicatrización es heterogénea (CV > 15%), simétrica (CA entre –0,5 y 0,5) y más baja que la curva normal (CC < –0,5). El tiempo de cicatrización de los ratones tratados con achiote presenta estadísticos (mínimo, máximo, mediana, media, desviación típica y coeficiente de variación) más bajos con respecto a los estadísticos reportados por cocona y copaiba. Las distribuciones del tiempo de cicatrización con las tres medicinas naturales son simétricas y más bajas que la curva normal. Según las pruebas de normalidad de Kolmogorov – Smirnov y Shapiro – Wilk, la distribución del tiempo de cicatrización con achiote es no normal (p < 0,05), la distribución del tiempo de cicatrización con cocona es normal (p > 0,05) y la distribución del tiempo de cicatrización con copaiba es no normal (p < 0,05) con la prueba de Kolmogorov – Smirnov y normal (p > 0,05) con la prueba de Shapiro – Wilk. En síntesis, no todas las distribuciones del tiempo de cicatrización de las ratones, con las tres medicinas naturales, son normales. Con estos resultados, la comparación del tiempo de cicatrización promedio por medicina natural se realiza con la prueba no paramétrica de Kruskal – Wallis. Esta prueba revela que existen diferencias significativas entre las medianas del tiempo de cicatrización de las ratones tratadas con achiote, cocona y copaiba (Sig < 0,05), donde la medicina natural más efectiva es el achiote (12 días) y las menos efectivas la copaiba (17 días) y la cocona (15 días). De estos resultados se deriva que la medicina natural más efectiva en el tiempo de cicatrización de las ratones es el achiote. Además en una prueba histológica se comprueba el efecto del achiote por el mayor número de fibroblastos, en comparación a los otros tratamientos. Palabras claves: Ratones albinos (mus musculus), cicatrización, achiote (Bixa orellana L.), Cocona (Solanun sessiliforum Dunal), copaiba (Copaifera officinalis)

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Comparative effect of healing Copaifera officinalis, Solanum sessiliforum Dunal and Bixa orellana L. skin lesions in albino mice Mus musculus ABSTRACT This scientific research work was conducted in the laboratories of the Faculty of Health Sciences belonging to the Universidad Peruana Los Andes, formulating the problem statement With the use of three natural products (cocona, achiote and copaiba), is improves healing time in albino mice? , with the overall objective to evaluate the effect of annatto, cocona and copaiba in healing time of albino mice and for this we have used a total of 30 albino mice, the results shows that the healing time of the mice ranging from 11 to 20 days, with a median of 15 days, an average of 14.78 days, a standard deviation of 2.58 days, a coefficient of variation of 17.4% a coefficient of skewness of 0.05 and kurtosis of -0.98. These statistics indicate that the healing time distribution is heterogeneous (CV > 15%), symmetrical (CA between -0.5 and 0.5) and lower than the normal curve (CC < -0.5). Healing time of mice treated with achiote presents statistics (minimum, maximum, median, mean, standard deviation and coefficient of variation) lower with respect to the statistical reported by cocona and copaiba. The distributions of time to healing with the three natural medicines are symmetrical and lower than the normal curve. According to tests of normality Kolmogorov - Smirnov and Shapiro - Wilk , the healing time distribution with achiote is not normal ( p < 0.05 ), the distribution of time to healing with cocona it is normal ( p> 0.05 ) and distribution of healing time with achiote is not normal ( p < 0.05 ) with the Kolmogorov - Smirnov and normal ( p> 0.05 ) with the Shapiro - Wilk. In short, not every time distributions healing mice, with three natural medicines are normal. With these results, the comparison of the average healing time for natural medicine is performed with the nonparametric Kruskal - Wallis. This test reveals that there are significant differences between the median healing time of mice treated with achiote, cocona and copaiba (Sig < 0.05), where the most effective natural medicine is the achiote (12 days) and the less effective the copaiba (17 days) and cocona (15 days). From these results it follows that the most effective natural medicine in the healing time of the mice is the achiote. Keywords: albino mice (mus musculus), healing, achiote (Bixa orellana L.), Cocona (Solanun sessiliforum Dunal), copaiba (Copaifera officinalis)

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INTRODUCCIÓN

En el Perú las plantas medicinales constituyen uno de los principales recursos

terapéuticos tanto en el medio rural como suburbano, donde los servicios de

atención médica son escasos, acentuándose en las poblaciones más alejadas,

pero a pesar de su riqueza y diversidad de flora medicinal, el porcentaje de

especies que poseen estudios fitoquímicos y farmacológicos son muy escasos.

La Amazonía es la reserva de vida natural más extensa y variada del mundo.

En ella se han clasificado no menos de 25,000 especies de plantas, y se cree

que falta conocer otras tantas.

Desde 1975, la Organización Mundial de la Salud (OMS) ha reconocido la

importancia de las medicinas tradicionales en el control de la salud y ha

generado un programa orientado a la promoción de la medicina tradicional en

los países de desarrollo.

El hombre y los animales se encuentran expuestos a múltiples lesiones en la

piel debido a diversas situaciones como traumatismos, peleas, laceraciones,

quemaduras, heridas, procedimientos quirúrgicos, etc.

Dadas estas consideraciones ha surgido la necesidad de evaluar el efecto

cicatrizante que tienen 3 productos de origen vegetal como son el achiote (Bixa

orellana L.), la Cocona (Solanun sessiliforum Dunal), y la copaiba (Copaifera

officinalis) y conocer el efecto cicatrizante que tienen en lesiones cutáneas en

ratones albinos.

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.Planteándonos los siguientes objetivos específicos:

1. Evaluar el efecto del uso de 3 productos naturales (cocona,

achiote y copaiba) en la respuesta tisular en el tejido cutáneo de

ratones albinos.

2. Comparar el tiempo de cicatrización con el uso de 3 productos

naturales (cocona, achiote y copaiba) en ratones albinos.

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CAPÍTULO I

I. GENERALIDADES

1.1. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA

La cicatrización de las heridas es un proceso complejo que se

presenta en varias fases las cuales incluyen la inflamación y

degradación del tejido seguido por una granulación (costra) para

finalizar con la epitelización. (Politis & Dmitrowich, 1998).

Existe una diversidad de plantas medicinales, tanto nativas como

introducidas, que a la fecha el estudio de ellas es limitado, o no

difundido.

El cual corroboraría el conocimiento ancestral y a su vez permita

desarrollar productos de valor comercial para la industria

farmacológica, actualmente la Biotecnología promueve el desarrollo

de drogas naturales cada vez más potentes a partir de plantas,

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aprovechando la etnobotánica de cada región. (Noormohamed et al.,

1994).

En los últimos años, las investigaciones realizadas han permitido

validar diversos usos tradicionales atribuidos al aceite de Copaifera

officinalis (Arroyo, 2009; Ohsaki et al), para el Solanun sessiliforum

Dunal (Barrera, 2011; et al) y Bixa orellana L. (Instituto Nacional de

Salud, 2009) y en muchos otros estudios donde se trabajaron con

animales de laboratorio con resultados alentadores y satisfactorios

que posibilitan el uso de estas plantas a nivel farmacológico.

Algunos estudios dejan en evidencia el poder cicatrizante y

astringente lo cual estimula la regeneración del tejido que poseen los

diversos compuestos químicos presentes (Carriconde, 1997).

1.2. DELIMITACIÓN DEL PROBLEMA

La respuesta de los tejidos vivos a la lesión constituye la base y el

fundamento de la práctica quirúrgica.

En realidad, desde un punto de vista biológico, la lesión tisular y sus

secuelas participan en la mayor parte de los problemas médicos

generales.

La cicatrización de las heridas constituye una respuesta básica de los

seres vivientes hacia la vida y en general, produce restablecimiento

satisfactorio de la integridad de los tejidos, algunos médicos dan por

un hecho o ignoran la biología de la reparación.

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1.3. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN

¿Cuáles es el mejor cicatrizante entre Copaifera officinalis, Solanun

sessiliforum Dunal y Bixa orellana L. en lesiones cutáneas de

ratones albinos Mus musculus?

1.4. OBJETIVOS

1.4.1. OBJETIVO GENERAL

Comparar el efecto cicatrizante en función del tiempo y reacción

tisular de: Copaifera officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa

orellana L. en ratones albinos Mus musculus).

1.4.2. OBJETIVOS ESPECIFICOS:

1) Evaluar la respuesta tisular en el tejido cutáneo de ratones

albinos.

2) Comparar el tiempo de cicatrización entre los tratamientos

1.5. JUSTIFICACIÓN DEL ESTUDIO

El desarrollo de nuestra investigación será el punto de partida para

entender la cicatrización en la piel de ratones por parte del Copaifera

officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa orellana L., así como su

interacción con la respuesta tisular en el tejido cutáneo de dichos

animales.

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Con las herramientas diseñadas para el análisis multivariado podremos

entender las relaciones entre las variables inmiscuidas en el experimento.

Se conocerá mejor el tiempo de cicatrización para cada uno de los

tratamientos. Nuestros resultados se podrán aplicar a animales

domésticos ya que el Mus musculus se asemeja genéticamente en más

del 90% al resto de animales de importancia veterinaria.

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1.6. MARCO TEORICO

1.6.1. ANTECEDENTES DE ESTUDIO

1.6.1.1. COMPONENTES DE LA PIEL

Ara, 1990. La piel es el órgano más extenso del organismo, combinado

con sus estructuras accesorias como pelos, plumas, glándulas, etc., Su

principal función es brindar protección ya que constituye una barrera

protectora contra microorganismos, rayos UV, pérdida de fluidos, estrés

de fuerzas mecánicas y al mismo tiempo sirve como principal órgano

sensitivo o de comunicación hacia el exterior, ya que recoge información a

través de una extensa red de neuronas y terminales nerviosas que

aportan información sobre presión, vibración, dolor y temperatura.

Ara, 1990. La piel está formada por tres capas principales: la capa

superficial o epidermis, la capa profunda o dermis y el tejido subcutáneo o

hipodermis.

EPIDERMIS: La epidermis es una capa celular, sin nervios, sentada en

una membrana basal y muestra estratificación vertical, varía mucho de

acuerdo a la especie animal. Es un epitelio versátil cuyas células se

multiplican, diferencian y se renuevan constantemente. Está formada por

melanocitos no pigmentados, linfocitos, células de Langerhans que

funcionan como células dendríticas e inmunes, de Merkel que actúan

como receptores del tacto y como principal célula de ésta capa de

queratinocitos. Brady, 2001.

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DERMIS: La dermis es un tejido eminentemente fibroso, donde se

encuentra los anexos cutáneos como los folículos pilosos, glándulas

sebáceas y sudoríparas. Es una capa de tejido conectivo irregular,

contiene proteínas dérmicas como fibras de colágeno, elastina, reticulita,

fibronectina así como varios glisaminoglicanos y ácido hialurónico que

conforman la matriz; estas proteínas y carbohidratos son secretadas por la

célula principal de la dermis, los fibroblastos. La elastina le aporta

elasticidad, la colágena su fuerza de tensión y la matriz provee un medio

semilíquido, que permite la orientación del tejido conectivo y las células, la

difusión de los nutrientes y O2. Ara, 1990.

Borger, 1997. Así mismo es el andamio para la migración celular, de

nutrientes y de requerimientos para la reparación de heridas. Sus

funciones son protectoras e inmunológicas, es la segunda línea de

defensa mecánica contra traumatismos, es el sostén de la piel y es

fundamental para la termorregulación y lubricación.

HIPODERMIS O TEJIDO SUBCUTÁNEO: Bajo la dermis se encuentra el

tejido hipodérmico, es una capa de sostén o tejido graso subcutáneo que

conecta todo lo que está sobre y bajo la dermis con el músculo. Contiene

macrófagos, fibroblastos y células cebadas, así como nervios, vasos

linfáticos y sanguíneos que irrigan la piel. Borger, 1997.

Borger, 1997. La piel al ser un órgano externo que recubre todo el cuerpo

está expuesto a una serie de daños, como lesiones cutáneas o heridas,

las cuales se pueden clasificar según la capa afectada. Las heridas

superficiales afectan solo a la epidermis, las de profundidad parcial

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afectan la dermis y las de profundidad total llegan hasta el tejido

subcutáneo.

1.6.1.2. REPARACIÓN DE HERIDAS CUTÁNEAS

Trott, 2002. Los mecanismos de reparación de heridas cutáneas se

ponen en funcionamiento tras una lesión que altere la continuidad de la

superficie. En el proceso se han identificado tres fases: la inflamatoria, la

proliferativa y la de remodelación tisular. En la fase inflamatoria hay

liberación local de células y compuestos transportados por la sangre y la

activación del sistema de coagulación. En la proliferativa hay formación de

tejido nuevo, gracias al crecimiento y migración celular y la participación

de diversas proteínas de adherencia.

Trott, 2002. La remodelación tisular corresponde a la última fase, cuando

se desarrolla un tejido estable, similar al existente previo a la lesión,

conocido como cicatriz. La participación de factores de crecimiento,

citoquinas y diversos componentes sanguíneos es fundamental para la

restauración funcional del área afectada.

1.6.1.3. CICATRIZACIÓN

Trott, 2002. Es la cura de una herida a expensas del tejido conjuntivo o

por regeneración de los propios tejidos afectados, es decir es la masa de

tejido conjuntivo esencialmente fibroso revestido por la epidermis

neoformada que ocupa una antigua solución de continuidad producida por

el traumatismo.

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TIPOS DE CICATRIZACIÓN:

Trott, 2002. Por Primera Intención.- Es una forma de cicatrización

primaria que se observa en las heridas operatorias y las heridas incisas.

Este proceso requiere de las siguientes condiciones:

Ausencia de infección de la herida

Hemostasia perfecta

Afrontamiento correcto de sus bordes

Ajuste por planos anatómicos de la herida durante la sutura.

Trott, 2002. Por Segunda Intención.- Ésta ocurre en forma lenta y a

expensas de un tejido de granulación bien definido, dejando como vestigio

una cicatriz larga, retraída y antiestética. Por lo general ocurre cuando hay

pérdida de sustancia o dificultad para afrontar los bordes de una herida o

también cuando existe un compromiso infeccioso en la herida.

Trott, 2002. Cicatrización por Tercera Intención.- Así denominada

cuando reunimos las dos superficies de una herida, en fase de

granulación, con una sutura secundaria.

Trott, 2002. Cicatrización por Cuarta Intención.- Cuando aceleramos la

cura de una herida por medio de injertos cutáneos.

1.6.1.4. FACTORES QUE RETARDAN LA CICATRIZACIÓN

Trott, 2002. Factores de acción local:

1. Infección,

2. Cuerpos extraños,

3. Hematomas,

4. Movilización,

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5. Tensión de la herida por la sutura,

6. Edema,

7. Vascularización,

8. Curaciones Repetidas

Trott, 2002. Factores de Acción General:

1. Hipoproteinemia,

2. Hipoavitaminosis C,

3. Alergias,

4. Infecciones,

5. Afecciones hormonales

1.6.1.5. IMPORTANCIA DE LA FITOTERAPIA

Ara, 1990. La fitoterapia, consiste en el uso de las plantas con fines

curativos. Muchos de los fármacos que existen son derivados de plantas

medicinales. Muchos de los preparados a base de hierbas o plantas

medicinales pueden llegar a resultar una buena solución en problemas de

salud.

Gómez, 2007. Tiene gran importancia la forma de recolección y

conservación de las plantas, ya que las células vegetales, desde el mismo

momento de la recolección, sufren un cierto número de transformaciones

biológicas. Al separar la parte aérea de la raíz, se provoca una

interrupción del flujo alimenticio y de transpiración. Una incorrecta

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recolección y desecación, aumenta la cantidad de productos de

degradación, perdiendo la planta parte de su calidad.

Bruneton, 2001. En las plantas los principios activos se hallan siempre

biológicamente equilibrados por la presencia de sustancias

complementarias, que van a potenciarse entre si. Son sustancias

vegetales que está dotada de propiedades curativas, o que tiene una

actividad farmacológica.

Palomino, 2001. Entonces la droga de una planta puede ser la corteza,

las hojas, el tallo, sus frutos, etc. Se da que en muchas especies

vegetales, en una misma planta existan diferentes partes que poseen

principios activos, y en consecuencia puedan tener acciones

farmacológicas distintas.

1.6.2. BASES TEÓRICAS

1.6.2.1. DE LOS RATONES

Aplin, 2002. Las ratas son roedores de cuerpo alargado, hocico puntiagudo y

orejas largas que alcanzan el borde del ojo al estirarse hacia delante. La cola

es alargada, delgada y casi desnuda, con algunas pequeñas escamas y pelos

cortos; los ojos y las orejas son grandes y el pelaje espeso y de color variable,

dependiendo de la especie. El vientre es siempre más claro; la línea de

separación no está muy bien definida, pero es visible. Las hembras poseen

cinco pares de mamas, dos pectorales y tres inguinales. Las hembras son

ligeramente más pequeñas que los machos. Su dentición consta de 16 piezas,

fórmula dentaria: 2(1/1, 0/0, 0/0, 3/3)=16, presentando tanto en la mandíbula

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superior como en la inferior, 2 incisivos, de crecimiento continuo, y 3 molares

en cada semi arcada; carecen de caninos y premolares. La cola es una

excelente herramienta que sirve para controlar sus saltos, como barra de

equilibrio cuando caminan sobre tubos, cables o cuerdas y para equilibrarse

mientras nada.

El tamaño varía en las diferentes especies.

Aplin, 2002. La mayoría de las especies de Rattus pesan entre 95 y 240

gramos y tienen una longitud de 17 a 21 cm, con una cola tan larga como el

cuerpo. Una de las especies más pequeñas es Rattus osgoodi, endémica del

sur de Vietnam, con un cuerpo de 12 a 17 cm. En el lado opuesto se halla la

rata de cola blanca de Célebes (Rattus xanthurus) que mide de 19 a 27 cm con

una cola de hasta 34 cm de longitud.

Aplin, 2002. La mayoría de las especies del género tienen un pelaje corto,

denso y suave. En algunas especies, el pelaje puede ser más grueso y largo,

algo lanoso o, por el contrario, áspero. En otras, como la mencionada R.

xanthurus, y la rata de Sikkim (Rattus remotus), presentan pelos largos y

delgados similares a bigotes en la zona del lomo y las caderas que se

extienden de 4 a 6 cm por encima del pelaje.

Aplin, 2002. El patrón básico de coloración del género es el dorso de color

pardo amarillento, salpicado de color marrón oscuro a negro y moteado de ocre

y el vientre de color gris plateado a gris oscuro, a veces teñido de tonos ocre.

La cola, las orejas y las patas son de color marrón oscuro. Del mismo modo

que la textura del pelaje, el color también es variable. Rattus remotus tiene el

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lomo de color marrón y el vientre de color blanco puro. Rattus nitidus, una rata

de campo del Himalaya, tiene el lomo marrón, el vientre gris y las patas de

color blanco.

Barnett, 2002. La mayoría de las especies del género presentan 42

cromosomas en sus células somáticas, con un cariotipo muy similar a pesar de

que se hallan pequeñas diferencias entre especies. No obstante, hay otras

especies o subespecies con menor número de cromosomas (por ejemplo, R.

fuscipes, R. conatus y R. rattus rattus) debido a la fusión de pares de

cromosomas acrocéntricos (con un solo brazo cromosómico) en cromosomas

metacéntricos individuales (con dos brazos cromosómicos), proceso conocido

como translocaciones Robertsonianas.

1.6.2.1.1. Alimentación

Drachman, 1966. Las ratas comen de todo, es decir, son omnívoras. En las

zonas urbanizadas se alimentan de la comida almacenada o de los

desperdicios.

Barnett, 2002. En zonas no urbanizadas, se alimentan de frutos, raíces,

pequeños mamíferos, insectos y otros materiales. También pueden predar

sobre nidos de aves. No rehúsan la carne en putrefacción de otros animales.

Barnett, 2002. No pocas veces provocan la muerte de animales dormidos,

incluso los de considerable tamaño. El canibalismo está muy extendido en la

especie, y algunas ratas, sobre todo las más jóvenes, son devoradas por sus

padres. La rata es una nadadora excepcional y atrapa peces pequeños y

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cangrejos, también puede apresar caracoles e insectos acuáticos. La rata tiene

la necesidad imperiosa de agua, siquiera sea pestilente o salobre.

1.6.2.1.2. Reproducción

Hsu Lai, 2007. Las crías recién nacidas nacen sin pelo, ciegas y sin capacidad

auditiva. El coito dura solamente de dos a tres segundos, y tras una gestación

que dura aproximadamente un mes, la rata pare de cinco a veintidós

individuos, que deposita en el interior de la madriguera o nido, donde

acondiciona un lecho con restos de materia vegetal y pelo, naciendo desnudos,

con los ojos cerrados, sin pelo, sin capacidad auditiva y pesando tan solo 5 o 6

gramos.

Hsu Lai, 2007. En cuanto a madurez sexual se refiere, son precoces: la

hembra es activa sexualmente a las cinco o seis semanas. Los machos

precisan unos días más para alcanzar la madurez sexual.

1.6.2.1.3. Habilidades

Kurtz, 1989. Estos roedores son muy ágiles, trepan hábilmente y logran incluso

subir por las paredes más lisas, nadan muy bien, son buenos saltadores y son

capaces de cavar, aunque esto último no con mucha perseverancia. Se

orientan perfectamente en la oscuridad.

Kurtz, 1989. La flexibilidad de su esqueleto les permite introducirse en las

viviendas por agujeros estrechos. Su capacidad de roer diversos materiales es

27

tal que les permite perforar desde madera a una tubería de plomo. Soportan

temperaturas de hasta -30 ºC. Sus sentidos están muy desarrollados, sobre

todo el oído, el olfato y el gusto.

Kurtz, 1989. No pueden distinguir colores (esto es, son daltónicas), aunque

algunos de ellos, como el amarillo, pueden llegar a atraerlas visto como un gris

ligero. Una prueba de que la vista no es un sentido vital para estos animales la

da el hecho de que ratas ciegas puedan continuar su vida casi con normalidad.

Se han dado casos de ratas que han nadado incluso 400 metros en mar abierto

para llegar a un nuevo territorio. En cuanto a sus capacidades cognitivas, se

caracterizan por su astucia, como ya demostró Dalla Torre en 1880, quien pudo

observar cómo las ratas se llevaban huevos sin romperlos. Dice el investigador

que, para ello, los animales trabajaban perfectamente organizados: uno

sujetaba el huevo con las patas, manteniéndolo asido.

1.6.2.1.4. Historia evolutiva

Drachman, 1966. Los múridos, la familia de roedores que incluye a la rata, el

ratón y los hamsters, aparecieron durante el Eoceno tardío, aproximadamente

34 millones de años atrás. Los múridos modernos han evolucionado durante el

Mioceno (de 23,8 a 5 millones de años atrás) y radiaron durante el Plioceno

(hace 5,3 a 1,8 millones de años).

Drachman, 1966. El género Rattus emergió dentro de la familia Muridae hace

aproximadamente 3,5 a 5-6 millones de años, en países mediterráneos, India,

China, Japón y el sudeste asiático.

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Takaya, et al 1996. Las ratas de laboratorio son ejemplares de R. norvegicus

destinadas a la investigación científica. Son consideradas un animal modelo y

su uso abarca desde estudios de fisiología a etología o neurobiología. En abril

de 2009, la base de datos bibliográfica PubMed arrojaba más de 1.000.000 de

trabajos científicos realizados con este animal.

Takaya, et al 1996.El origen de las ratas de laboratorio procede de las ratas

domésticas, empleadas durante el siglo XVIII como elemento lúdico durante las

peleas de ratas. La aparición de ejemplares albinos y con otros fenotipos de

interés condujo a su empleo en los laboratorios. En 1895, la Universidad de

Clark (Worcester, Massachusetts, Estados Unidos) creó una población de ratas

blancas para estudiar los efectos de la dieta y otros temas de fisiología. Debido

a su velocidad de reproducción, a su facilidad de manejo y a muchas de sus

similitudes fisiológicas con el ser humano, la rata ha venido utilizándose desde

hace muchos años como sujeto de experimentos en los laboratorios de

ciencias biológicas: con ellas suelen ponerse a prueba los medicamentos que

luego se aplican como tratamiento de las enfermedades humanas, con ellas se

llevan a cabo numerosos experimentos relacionados con la genética, con el

sueño y con muchos otros temas de la salud. También han resultado muy útiles

en los estudios psicológicos acerca del aprendizaje y otros procesos

mentales.33 Sin embargo, existen críticas hacia el maltrato animal que puede

suponer este tipo de experimentos al que son sometidos las ratas, al igual que

muchas otras especies, en los laboratorios de experimentación.

Takaya, et al 1996. Fundamentalmente, las ratas de laboratorio se diferencian

de las silvestres en que son más tranquilas y es menos probable que muerdan;

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pueden tolerar grandes multitudes; se reproducen a edades más tempranas y

tienen camadas más grandes. Su cerebro, su hígado, sus riñones, sus

glándulas suprarrenales y su corazón son más pequeños. No obstante, no

existe una única rata de laboratorio, sino que, mediante cruzamientos, se han

generado varias líneas. Las ratas carentes de pelaje suelen ser empleadas en

investigación sobre el sistema inmune y enfermedades renales.

Takaya, et al 1996. Las características que ameritan el empleo de la rata como

animal modelo se basan en sus características de inteligencia, ingenuidad,

agresividad y capacidad de adaptación, que permiten experimentar en temas

variados, como la inteligencia, el aprendizaje o el abuso de drogas. Su

psicología tiene aspectos en común con la humana. Un estudio del año 2007

encontró que las ratas poseen metacognición, habilidad mental que hasta

entonces sólo se había documentado en seres humanos y en algunas especies

de primates. Además, su genoma está secuenciado, con el primer esbozo

publicado en 2004.

Kim, et al 2004. El ratón de laboratorio es un roedor, usualmente de la especie

Mus musculus, que se utiliza para la investigación científica.

Kim, et al 2004. Para cada experimento se escogen ratones de laboratorio que

pertenezcan a una misma cepa pura o endogámica. Los individuos de una

misma cepa llevan los mismos genes, por lo cual se facilita la comparación de

los efectos de los diferentes tratamientos experimentales (fármacos, entorno

físico, etc.), sin que se produzca confusión debido a las diferencias genéticas.

La cepa más utilizada ha sido la BALB/c (ratón albino), aunque existen otras

30

disponibles (ej.C57BL/6), especialmente desde el desarrollo de técnicas de

manipulación de genes que han provisto una gran cantidad de cepas con

modificaciones genéticas particulares.

Kim, et al 2004. Algunas investigaciones particulares pueden requerir de una

especie de ratón diferente a Mus musculus. Por ejemplo, en 2004,

investigadores de la Universidad de Emory utilizaron ratones de las praderas

(Microtus ochrogaster) y ratones de los pantanos (Microtus pennsylvanicus)

para estudiar un gen relacionado con el comportamiento monógamo.

Science Daily, 2006. Las características que han hecho del ratón de

laboratorio el modelo biológico y biomédico más utilizado en las investigaciones

científicas son:

1. Su fácil manejo.

2. Su tamaño apropiado para la crianza y manipulación.

3. No requieren demasiados cuidados.

4. Tienen un sistema inmune similar al de los seres humanos.

5. Tienen un alto número de crías.

6. Poseen un breve período de gestación (19-21 días), y su destete es

rápido.

7. Las hembras producen un gran número de óvulos, los cuales al ser

fecundados son muy resistentes.

8. Al ser mamíferos euterios, poseen un genoma muy similar al de los

seres humanos.

31

1.6.2.2. ACEITE DE COPAIBA (Copaifera officinalis) (Herzog) Dwyer

1.6.2.2.1. Descripción botánica

PEDREIRA, 2007. Árbol mayor de 30 m de alto; ramitas glabras. Hojas

pinnadas; pecíolo, pulverulento rojizo; 4-5 pares de foliolos, pelúcido-

punteados, densa y finamente reticulado y lustroso en ambos lados,

oblicuamente oblongo-elíptico, redondeado o agudo en la base, obtusamente

acuminado en el ápice, casi 3-5 cm de largo. 1-2 cm de ancho. Inflorescencias

en panículas estrechas muchas veces de 10 a 20 cm de largo, de tronco recto,

copa globosa y amplia, y corteza rugosa. Sus hojas son alternas, compuestas,

densas, reticuladas, lustrosas en ambas caras y agudas en la base

redondeada. Tiene inflorescencia terminal racimosa, con panículas estrechas;

flores blancas olorosas, pequeñas y vellosas por dentro; y frutos leguminoso

con 1 a 4 semillas.

.

PEDREIRA, 2007. Nombres más comúnes: Copaiba; copal, jatobamirin,

marimari (shipibo-conibo), desarrolla de manera silvestre en los suelos firmes

de la Selva Baja.

PEDREIRA, 2007. CULTIVO: Se le puede cultivar en clima tropicales secos y

húmedos, en suelos arenosos y arcillosos y no necesitan abundante materia

orgánica. Se propaga por semillas y se le siembra al inicio de los períodos de

mayor precipitación pluvial.

32

1.6.2.2.2. USOS DEL ACEITE DE COPAIBA

ARROYO, et al. 2009. Alimento: Los frutos tienen valor alimenticio.

Medicinal: El bálsamo o resina de copaiba se usa como cicatrizante,

hipotensor, antiséptico, antiartrítico, antinflamatorio, antimicótico, controla el

acné, y actúa contra la psoriasis, herpes, reumatismo, amigdalitis, cáncer, tos,

bronquitis crónica, asma, úlceras estomacales, leucorrea, dolor de oído,

hemorroides, tétano y dolores musculares. El aceite sirve como linimento.

Madera: La madera de copaiba, debido a su resistencia a la humedad, es

utilizada para fabricar parquet y muy apreciada en la elaboración de canoas y

en trabajos de construcción. Cosmetología: El aceite tiene una creciente

demanda interna para elaborar productos cosméticos. Veterinaria: La copaiba

es utilizada para curar heridas de los animales y prevenir el ingreso de gusanos

en sus organismos.

ARROYO, et al. 2009. Del árbol de Copaiba utilizado durante largo tiempo por

los nativos de las regiones Amazónicas, se obtiene por destilación un bálsamo

llamado Aceite de Copaiba.

ARROYO, et al. 2009. Este Aceite Natural, está indicado para tratamiento de

enfermedades como bronquitis, (antiséptico y expectorante) e inflamaciones. El

Aceite de Copaiba contiene el principio activo el ácido copaibico, que se

elimina por los riñones y actúa como antiséptico y antiinflamatorio de las

mucosas genitales y urinarias. Es muy eficaz sobre las blenorragias no

crónicas.

33

1.6.2.2.3. Beneficios del Aceite de Copaiba

ARROYO, et al. 2009. El Aceite Amazónico de Copaiba es un gran

cicatrizante, desintoxicante y desinflamante natural que las etnias de la selva

amazónica utilizan en casos desporiasisy gastritis con asombrosos resultados.

ARROYO, et al. 2009. El Aceite de Copaiba es reconocido como un

extraordinario protector del sistema digestivo que favorece y estimula su

mejor funcionamiento. Además, se sabe de su gran poder desinflamante y

resultaba ideal para mantener las articulaciones y vías respiratorias en

excelente estado, libres de problemas de salud.

ARROYO, et al. 2009. Por otro lado, el Aceite de Copaiba contribuye a

lubricar las arterias y venas, favoreciendo una adecuada circulación de la

sangre y, en general, una mejor oxigenación.

Asimismo, su uso para afecciones de la piel se ha extendido mundialmente y

su aplicación directamente sobre la piel para realizar masajes, ya sea en forma

pura o mezclado con aceites esenciales, contribuye a activar la circulación

sanguínea, resultando una gran ayuda en casos de várices.

ARROYO, et al. 2009. El Aceite de Copaiba es el mejor aliado para un

organismo saludable y para una piel sin afecciones, por lo que su aplicación

resulta ideal en problemas de soriasis, herpes, dermatitis y hongos, donde

sobresale como un excepcional antimicótico natural.

Y es tan grande el abanico de posibilidades de uso del Aceite de Copaiba que

tradicionalmente ha sido utilizado para realizar baños de asiento, resultando

34

especialmente indicados si deseas desinflamar y aliviar el dolor o escozor

causados por problemas de hemorroides, cistitis o infecciones vaginales; con

muy buenos resultados.

Cosmetología: El Aceite de Copaiba tiene una creciente demanda para

elaborar productos cosméticos.

1.6.2.2.4. Sugerencias de Uso del Aceite de Copaiba

Para su consumo se debe tomar de cinco a diez gotas diluidas en medio vaso

con agua, de una a tres veces al día.

En baños de asiento se pueden emplear de 20 a 30 gotas, una o dos veces al

día. Para mejores resultados mezclar el Aceite de Copiaba con Sangre de

Drago en partes iguales

Mejía y Rengífo 2000, También coincide en sus usos como son: Aceite

Heridas e inflamaciones: se colocan unas gotas de aceite sobre la zona

afectada. Sarna: el aceite del fruto, al natural o en cocimiento, se aplica sobre

la zona afectada. Afecciones en la garganta: se aplican toques dos veces al día

con una mezcla de una cucharada de miel de abeja y tres gotas de aceite de

copaiba. Úlceras: para tratar las úlceras estomacales, tomar cinco gotas de

aceite, diluida en una cucharada de agua tibia, en ayunas, durante siete días.

Herpes: una mezcla, en partes iguales, del aceite de copaiba con el de

andiroba, se aplica sobre la zona afectada, dejando por 30 minutos. Aplicar dos

veces al día.

35

1.6.2.3. ACHIOTE (Bixa orellana L) (Shambu)

1.6.2.3.1. Descripción botánica

Mejía y Rengífo, 2000. Arbolillo o árbol bajo, de hojas ovadas, acuminadas;

truncadas, más o menos cardadas en la base. Inflorescencia en panícula

terminal. Los frutos son cápsulas espinosas, ovoides, puntiagudas, más largas

que anchas. Semillas rojas (anaranjadas), papilosas.

1.6.2.3.2. Distribución

Mejía y Rengífo, 2000. Cultivado. Amazonas, Cuzco, Huánuco, Junín, Loreto,

Madre de Dios, San Martín, Ucayali, su composición están presentes: Bixina,

norbixina, orelina, vitamina C, carbohidratos, calcio, fósforo, fierro.

1.6.2.3.3. Usos

Mejía y Rengífo, 2000. Hojas Infecciones de la piel: dejar de 9 a 12 hojas en

un litro de agua durante una noche y aplicar después sobre la lesión.

Antiséptico vaginal y cicatrizante: poner de 9 a 12 hojas restregadas durante

una noche en un litro de agua. El líquido se aplica en lavados vaginales.

Hepatitis: tomar la decocción de las yemas foliares.

Vómitos: en infusión, poner tres hojas por cada taza, tomar una taza tres veces

al día.

36

Mejía y Rengífo, 2000. El Achiote, conocido también como Achote Atase,

Potsote, Rucu, Urcu, Uxta, Mashe (Shipibo), es un árbol pequeño o arbusto

grande que alcanza una altura de 3-5 metros pudiendo llegar hasta 10 m de

altura. Las hojas del Achiote, maravillosa hierba medicinal, son alternas

acorazonadas, generalmente puntiagudas de 10-20 cm de largo y de 5-10 cm

de ancho. Su color es verde en ambas caras, mostrando algunas veces

discreta coloración rosa púrpura en el envés de las nervaduras. El Achiote es

una hierba medicinal muy útil para el tratamiento de varias dolencias.

1.6.2.3.4. USO TRADICIONAL

Mejía y Rengífo, 2000. Antiinflamatorio: Decocción de 20 gramos de hojas

de achiote en un litro de agua. Dejar hervir por 10 minutos. Tomar sin azúcar

antes de los alimentos.

Mejía y Rengífo, 2000. Antiséptico Vaginal y Cicatrizante: Poner de 9 a 12

hojas restregadas durante una noche en un litro de agua. El líquido se aplica

en lavados vaginales. Las propiedades medicinales del Achiote para los

lavados vaginales son excelentes.

Mejía y Rengífo, 2000. Bronquitis: Dejar reposar un gramo de semilla en una

taza de agua hirviendo y beber.

Mejía y Rengífo, 2000. Diabetes: Decocción de 10 hojas de achiote en 1 litro

de agua. Dejar hervir por 10 minutos. Tomar 3 veces al día. También hacer

37

cocción de 5 gramos de semillas de achiote en 1 litro de agua. Dejar hervir por

10 minutos. Tomar 3 veces al día.

Mejía y Rengífo, 2000. Diarrea: Infusión de 25 gramos de hojas de achiote en

un litro de agua hervida caliente o macerar las 10 gramos de semillas frescas

de achiote en un litro de agua durante una noche y luego se cuela.

Tomar una taza de la infusión o tres cucharadas del macerado con las

comidas.

Mejía y Rengífo, 2000. Fiebre: Infusión de 5 cogollos de achiote en un litro de

agua hervida caliente. Tomar una taza cada 6 horas hasta lograr el efecto

deseado.

Mejía y Rengífo, 2000. Hemorroides: Las excelentes propiedades

medicinales del Achiote le ayudarán en este tratamiento. Tan solo prepare una

infusión de 20 gramos de semillas de achiote en un litro de agua por 10

minutos. Dejar enfriar y tomar copitas tres veces al día.

Mejía y Rengífo, 2000. Hepatitis: Tomar la decocción de las yemas florales.

Mejía y Rengífo, 2000. Heridas: Aplicar las hojas maceradas en agua durante

una noche sobre la parte afectada. Hinchazón de Ojos: Infusión de 2 ó 3 hojas

de brote de achiote. Tomar 2 veces al día.

38

Mejía y Rengífo, 2000. Infecciones de la Piel: Dejar de 9 a 12 hojas en un

litro de agua durante una noche y aplicar después sobre la lesión.

Mejía y Rengífo, 2000. Inflamación de la Boca: Infusión de un manojo de

hojas de achiote en un litro de agua, hervir por 10 minutos. Hacer gárgaras con

este cocimiento.

Mejía y Rengífo, 2000. Inflamación de la Garganta: Infusión de un manojo de

hojas de achiote en un litro de agua, hervir por 10 minutos. Hacer gárgaras con

este cocimiento.

Mejía y Rengífo, 2000. Inflamaciones de la Próstata: Decocción de 20

gramos de hojas de achiote en un litro de agua. Dejar hervir por 10 minutos.

Tomar sin azúcar antes de los alimentos. Las propiedades medicinales de esta

planta le ayudarán a aliviar esa molesta inflamación.

Mejía y Rengífo, 2000. Quemaduras: Usar el achiote de cáscara lampiña,

pulverizado y calentado untado sin sal.

Mejía y Rengífo, 2000. Reumatismo: Decocción de 20 gramos de hojas de

achiote en un litro de agua. Dejar hervir por 10 minutos. Tomar sin azúcar

antes de los alimentos.

39

1.6.2.3.5. CUIDADO

Mejía y Rengífo, 2000. Mujeres embarazadas. Mujeres que se encuentran en

la etapa de lactancia. Podría producir toxicidad hepática y pancreática.

1.6.2.3.6. Advertencia

Mejía y Rengífo, 2000. El uso de estos productos naturales o plantas

medicinales están respaldadas por la tradición milenaria de nuestros pueblos.

En general no causan efectos secundarios si se usa correctamente.

Esta información no es una prescripción médica, tampoco exonera o sustituye

la consulta a un médico naturista. Se recomienda consultar con su médico

antes de usar esta información.

1.6.2.4. COCONA (Solanun sessiliforum) (Dunal)

Flores, Villachica, 1996. La cocona (Solanum sessiliflorum) parece ser nativa

de las vertientes orientales de Los Andes del Perú, Ecuador y Colombia,

especialmente del primero de estos países. Esta especie se encuentra de

manera natural entre los 200 y 1000 m de altitud; asimismo, se conoce que fue

introducida al cultivo hace unos 50 años. La cocona crece en zonas con

temperaturas medias entre 18 y 30°C, sin presencia de heladas y con

precipitación pluvial entre 1500 y 4500 mm anuales.

Flores, Villachica, 1996. Aparentemente, se beneficia de una sombra ligera

durante sus primeros estados de desarrollo; requiriendo de buena radiación

solar durante el período de fructificación.

40

Está adaptada tanto a suelos ácidos de baja fertilidad como a suelos neutros y

alcalinos de buena fertilidad, con texturas desde arcillosa hasta arenosa. Se le

encuentra cultivada en zonas con altitudes desde el nivel del mar hasta los

1500 m.s.n.m.

Flores, Villachica, 1996. Esta especie nativa de América tropical, se cultiva en

los departamentos de Loreto, San Martín, Ucayali, Huánuco, Junín, Pasco y

Ayacucho.

Tiene un valor nutritivo aprovechable en la alimentación humana, la cocona es

rica en hierro y en vitamina B 5 (niacina) el volumen del jugo es de hasta 36

cm3 la pulpa y el mucílago del fruto maduro son comestibles y se utilizan en la

preparación de jugos.

1.6.2.4.1. La Planta

Da Silva y Fernandes, 1998. Es una planta de crecimiento rápido que alcanza

hasta 2 metros de altura, al inicio es herbácea y después se torna semileñosa.

El tallo es cilíndrico, grisáceo, con abundante pubescencia dura y ramifica

desde cerca del suelo. Las hojas son ovaladas, grandes, de ápice aguzo, de

bordes sinuados y de lóbulos acuminados y triangulares irregulares con un lado

de lámina más alto que el otro; sus dimensiones se encuentran entre los 30 y

50 cm. de largo y entre los 20 y 30 cm. de ancho. La cara superior de la hoja

está cubierta de pelos duros y blancuzcos, con algunos estrellados; mientras

que en el lado inferior la pubescencia es suave y estrellada (Villachica, 1996).

Las flores miden de 4 a 5 cm. de diámetro, en racimos axilares cortos, son

predominantemente alógamas. Cáliz con cinco sépalos duros, triangulares;

41

corola con cinco pétalos blancuzcos, ligeramente amarillo o verdoso. El fruto

varía desde casi esférico u ovoide hasta ovalado, con 4 a 12 cm. de ancho y 3

a 6 cm. de largo, peso entre 24 y 250 g, color desde amarillo hasta rojizo. La

cáscara es suave y rodea la pulpa o mesocarpio, grueso, amarillo y acuoso.

1.6.2.4.2. La Flor

Da Silva y Fernandes, 1998. Las inflorescencias son de tipo cimera

monoásica monohelicorde de pedúnculo corto con cinco a nueve flores o

botones. En una misma inflorescencia se encuentran flores hermafroditas y

estaminadas, no obstante, entre dichas flores no se observan diferencias

morfológicas marcadas, únicamente difieren por la presencia de un estilete.

Da Silva y Fernandes, 1998. Estudios efectuados en el Perú indican la

existencia de más de 25 biotipos, de los cuales se han seleccionado 11

promisorios. La cocona tiene una fuerte predominancia del progenitor femenino

o herencia materna en las características del fruto; de esta manera, el cruce de

flores femeninas de plantas con frutos grandes da lugar a frutos grandes,

independientemente de la característica de la flor masculina; esta influencia de

la flor femenina continua en la segunda generación sin segregación aparente.

42

1.6.2.4.3. Ecología y adaptación

Morton, 1987. Requiere de temperaturas medias entre 18 y 30'C, sin presencia

de heladas, y con precipitación pluvial entre 1.500 y 4.500 mm por año. Se

beneficia de una sombra ligera durante sus primeros estados de desarrollo.

Crece en suelos ácidos de baja fertilidad, como en suelos neutros y alcalinos

de buena fertilidad, con textura desde arcillosa hasta arenosa. Se la encuentra

cultivada en zonas con altitudes desde 0 hasta los 1.500 m.s.n.m.

1.6.2.4.4. Propagación

Morton, 1987. La propagación se da tanto en forma sexual (semillas) como

asexual (estacas, injertos). La propagación por semilla botánica, es la

metodología más sencilla; los frutos contienen de 1200 -1400 semillas por fruto

con un peso total de semillas de 3,2 g. Se siembran las semillas en almácigos

bajo sombra, regando la semilla en surcos corridos, en cajones de 1 x 1 x 0,2 m

con sustrato de aserrín húmedo descompuesto y desinfectado, y cubrirlos con

0,5 cm del mismo sustrato.

La germinación ocurre 15-30 días después de la siembra. Cuando las plántulas

desarrollan 4 hojas, están listas para el repique directo a bolsas plásticas,

conteniendo sustrato mezclado de tierra negra, arena y materia orgánica

descompuesta en la proporción 1:1:1. Transcurridos 2-3 meses del repique, las

plantas alcanzan 20-25 cm de altura y están listas para al trasplante al campo

definitivo.

43

Morton, 1987. La propagación asexual o vegetativa se realiza por estacas e

injerto. El primer método utiliza estacas semi-leñosas de 1 cm de diámetro por

30 cm de largo, y consiste en colocar las estacas lo más inclinada posibles, en

el sustrato de aserrín húmedo descompuesto y desinfectado, a fin de asegurar

el enraizamiento rápido y el brotamiento efectivo.

La producción empieza a los seis meses del trasplante, con fructificación

continúa durante uno a dos años. Las plantas requieren de buena radiación

solar durante el período de fructificación. Plantas con frutos pequeños (25 a 40

g) producen entre 119 y 87 frutos; plantas con frutos medianos (40 a 60 g)

producen entre 95 y 83 frutos y plantas con frutos grandes (141 a 215 g)

producen entre 39 y 24 frutos.

1.6.2.4.5. Principales plagas y enfermedades

Morton, 1987. Las principales plagas detectadas en huertos caseros son

Planococcus pacificus Cox (cochinilla de frutos maduros), Corythaica

cyathicolla Costa (insecto adulto y larva de color cenizo) y Phyrdenus muriceus

Germar (curculiónido de color amarillo que produce necrosis negras con

malformación de los frutos).

1.6.2.4.6. Diversidad genética

Morton, 1987. Algunos estudios efectuados en el Perú indican la existencia de

más de 25 biotipos, habiéndose seleccionado 11 promisorios para su utilización

comercial. La cocona tiene una fuerte predominancia del progenitor femenino o

herencia materna en las características del fruto.

44

Cruce de flores femeninas de plantas con frutos grandes dan lugar a frutos

grandes, independientemente de la característica de la flor masculina. Esta

influencia de la flor femenina continúa en la segunda generación sin

segregación aparente.

1.6.2.4.7. Jugo de cocona.

Morton, 1987. Se cultiva en Sudamérica (Brasil, Bolivia, Colombia, Ecuador,

Perú y Venezuela) a menos de 700 msnm para ser utilizada en el consumo

humano. La pulpa del fruto se usa para hacer jugos, néctares, mermeladas,

dulces, compotas y, en ocasiones, para consumo fresco como hortaliza o

preparada en encurtidos.

Morton, 1987. También puede crecer como planta ornamental de interior en

zonas más altas y frías, pero es muy sensible a los ácaros de las arañas por lo

que no se debe tener en aire seco. Además es muy sensible a las heladas.

Se utiliza en la elaboración de jugos y néctares, pero también tiene un alto

potencial para usarse en la elaboración de ensaladas.

Puede considerarse el tomate de la Amazonía; preparado con ají es muy

agradable y se emplea como ensalada o como complemento a comidas típicas

en la selva peruana.

También se utiliza en la preparación de encurtidos. Por otro lado, es posible

usarlo en la preparación de compotas dulces, como si fuera durazno, y en

mermeladas y jaleas.

45

Los frutos son perecederos. Pueden conservarse a temperatura ambiente, con

buena aireación y bajo sombra hasta 5 días, luego se inicia el deterioro. La

pulpa puede conservarse en refrigeración por tiempo prolongado.

La cocona es rica en hierro y vitamina B5 (ácido pantoténico); el volumen del

jugo es de hasta 36 cm3/fruto y el grado Brix de 4-6

1.6.2.4.8. Nutrientes de la Cocona

Morton, 1987. La cocona posee un alto valor nutritivo, rica en: Carbohidratos,

Hierro, ideal para combatir la anémia, Vitamina B5 (Niacina), Calcio, necesario

en niños en crecimiento y en adultos mayores, Fósforo, Caroteno, Tiamina

(Vitamina B) y Riboflavina (Vitamina B12), Ácido Ascórbico (Vitamina C).

1.6.2.4.9. PROPIEDADES CURATIVAS

Morton, 1987. Esta fruta tiene un bajo aporte calórico y de azucares, sin

embargo tiene contenidos significativos de fibra alimenticia, por lo que es un

alimento ideal para las personas que sufren de Diabetes o estreñimiento, y es

buena para controlar el colesterol. También ayuda a controlar el exceso de

ácido úrico y otras enfermedades causadas por el mal funcionamiento de los

riñones y del hígado.

Se han realizado estudios para determinar que el extracto de una cocona,

tomado en ayunas es altamente efectivo. Ingerirla en refrescos o jugos no tiene

el mismo efecto pues simplemente, la pulpa se oxida rápidamente y pierde

valores.

46

En medicina tradicional, se utiliza como antidiabético, antiofídico, escabicida,

en hipertensión y en tratamiento de quemaduras.

1.6.2.4.10. Formas de consumo de Cocona

Morton, 1987. La Cocona se consume en nuestra región principalmente en

refrescos, en ají, en mermelada, en jaleas, en licor (coconachado), etc.

También se suele comer directamente con un poco de sal.

Es importante resaltar que el consumo de Ají de Cocona ha llevado a que hoy

en día existan industrias que fabrican ají envasado para su exportación y venta

en los diversos mercados del país.

47

1.7. HIPOTESIS

1.7.1. HIPÓTESIS GENERAL

El uso de Copaifera officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa orellana L.

influirá en la cicatrización en el tratamiento de lesiones cutáneas de ratones

albinos Mus musculus

1.7.2. HIPÓTESIS ESPECÍFICAS:

1) ¿Con el uso de Copaifera officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa

orellana L. se obtendrán respuestas diferentes en el tiempo de

cicatrización externa del tejido cutáneo de los ratones albinos?

2) ¿Con el uso de Copaifera officinalis, Solanun sessiliforum Dunal y Bixa

orellana L. se obtendrán respuestas positivas en la cicatrización del

tejido cutáneo de los ratones albinos Mus musculus?

1.6. VARIABLES:

a) Variable independiente:

X = Productos naturales

X1 = Achiote (Bixa orellana L.)

X2 = Copaiba (Copaifera officinalis)

X3 = Cocona (Solanun sessiliforum Dunal)

b) Variable dependiente:

48

Y1 = Cicatrización

Y2 = Reacción tisular

1.8.1. OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES

Tabla N° 5 Operacionalización de las variables en estudio

Variable Dimensión Indicadores Escala

Independiente:

X1 = Cocona

Proporción

Toques

1 a 7 días

X2= Aceite de Copaiba

Proporción

Toques

1 a 7 días

X3 = Achiote

Proporción

Toques

1 a 7 días

Dependiente:

Y 1= Cicatrización

Y 2= Reacción tisular

Tiempo

Cantidad

Días

Fibroblastos

10 a 20 días

Buena

Regular

Escasa

49

CAPÍTULO II

2. METODO DE INVESTIGACIÓN

2.1. TIPO DE INVESTIGACIÓN

En relación a nuestros objetivos nuestra investigación es de tipo

experimental, ya que estudiaremos la reacción del tejido tisular al

poder cicatrizante de nuestros tratamientos evaluados (Hernandez,

2010).

2.2. NIVEL DE INVESTIGACIÓN

El presente trabajo de investigación planteado se encuentra en el

nivel III y es correlacional explicativa.

2.3. MÉTODO DE LA INVESTIGACIÓN

En este experimento desarrollaremos el método científico de nivel

aplicado, por ser un conjunto de procedimientos sistematizados

50

empleados para obtener el conocimiento adecuado sobre el problema

que se ha planteado.

Modelo Matemático del Diseño Experimental

Se empleó el diseño completamente aleatorizado, cuyo modelo

aditivo lineal es el siguiente:

Yij = u + Tij + Eij Donde:

Yij, es la variable respuesta de la j – esima unidad

experimental bajo la i-esima edad.

U, es la media de la población.

Ti, es el efecto de la i – sima edad.

Eij, es el efecto azar o factor aleatorio.

Se utilizó la estadística descriptiva como son: valores máximos y mínimos, la

mediana, la media, la desviación típica, coeficiente de variación, coeficiente de

asimetría, coeficiente de curtosis y para la determinación de la significación se

utilizó las pruebas de Kolmogorov-Smirnov-Shapiro Wilk.

2.3. DEFINICIÓN DE LA POBLACIÓN Y DE LA MUESTRA

a. Población

Según (Pedreira, 2007) para pruebas con ratones de laboratorio,

cada tratamiento o grupo muestras será compuesto como mínimo

51

por 10 animales. El dilema en tamaño de muestra para trabajos

con animales de laboratorio, se basa en experiencias de

investigaciones realizadas anteriormente, ya que por ser una

población infinita es difícil de obtener sus parámetros

poblacionales. (Cardozo de Martínez, et. al., 2007)

b. Muestra

Para el presente trabajo se utilizaron un total de 30 ratones los

mismos que fueron distribuidos al azar en tres grupos como se

muestran en el cuadro siguiente:

T1 = Achiote T2 = Copaiba T3 = Cocona

Arete Cordón Arete Cordón Arete Cordón

L001 Negro M001 Blanco N001 Verde

L002 Negro M002 Blanco N002 Verde

L003 Negro M003 Blanco N003 Verde

L004 Negro M004 Blanco N004 Verde

L005 Negro M005 Blanco N005 Verde

L006 Negro M006 Blanco N006 Verde

L007 Negro M007 Blanco N007 Verde

L008 Negro M008 Blanco N008 Verde

L009 Negro M009 Blanco N009 Verde

L010 Negro M010 Blanco N010 Verde

10 10 10

2.5. ANÁLISIS Y PROCESAMIENTO DE DATOS ESTADÍSTICOS

Se utilizó la estadística descriptiva como son: valores máximos y mínimos, la

mediana, la media, la desviación típica, coeficiente de variación, coeficiente de

asimetría, coeficiente de curtosis y para la determinación de la significación se

utilizó las pruebas de Kolmogorov-Smirnov-Shapiro Wilk.

52

2.6. TÉCNICAS DE RECOLECCIÓN DE DATOS

2.6.1. De los ratones: Se utilizaron 30 ratones albinos procedentes del bioterio

de la Universidad Nacional Agraria “La Molina”, machos de 180 ± 20 g, siendo

los animales aclimatados previamente al ambiente de experimentación

(bioterio) durante 3 días; a una temperatura de 21°C con comida y agua a

libertad.

2.6.2. Del corte de la piel de los ratones de experimento: Para ello se utilizó

un protocolo anestésico a base de Ketamina 100 mg (Halatal KT) en dosis de

2.5 ml por animal, luego se practicó la asepsia respectiva, y mediante un bisturí

número 18, se realizó un pequeño corte de la piel de un aproximado de 03

centímetros en la parte dorsal de los ratones, a la altura del trapecio muscular.

2.6.2. De la aplicación de los productos naturales (Cocona, Achiote y

Copaiba): Luego del corte de la piel de los ratones de experimento se

colocaron directamente sobre las heridas y con ayuda de pipetas, la cantidad

de 0,2 ml. de la solución natural extraída de cada producto para cada

tratamiento con cocona, achiote y copaiba diariamente hasta completar su

cicatrización respectivamente.

2.6.3. Del tiempo de cicatrización: Para la determinación del tiempo que duró

la cicatrización aplicando los tres productos naturales se tomaron en días

respectivamente.

53

2.6.4. Del Análisis Histológico: Se remitieron las muestras de piel al

laboratorio de análisis clínicos y patológicos “PATLAB” del cual se obtuvieron

los resultados por cada tratamiento.

54

CAPÍTULO III

3. RESULTADOS Y ANALISIS

3.1. ESTADISTICOS DEL TIEMPO DE CICATRIZACION

Tabla 1

Estadísticos del tiempo de cicatrización

Estadísticos Achiote Cocona Copaiba Total

Mínimo 11 14 15 11 Máximo 13 17 20 20 Mediana 12 15 17 15 Media 11,73 15,33 17,27 14,78 Desviación típica 0,70 1,05 1,53 2,58 Coefic. de variación (CV)

6,0% 6,8% 8,9% 17,4%

Coefic. de asimetría (CA)

0,43 0,08 0,31 0,05

Coefic. de curtosis (CC)

–0,67 –1,10 –1,27 –0,98

En la tabla 1 se aprecia que el tiempo de cicatrización de los ratones el

cual oscila entre 11 y 20 días respectivamente, con una mediana de 15

días, una media de 14,78 días, una desviación típica de 2,58 días, un

coeficiente de variación de 17,4%, un coeficiente de asimetría de 0,05 y

un coeficiente de curtosis de –0,98.

55

Estos estadísticos nos indican que la distribución del tiempo de

cicatrización aplicados con los productos naturales (cocona, achiote y

copaiba), es heterogénea (CV > 15%), simétrica (CA entre –0,5 y 0,5) y

más baja que la curva normal (CC < –0,5).

El tiempo de cicatrización de los ratones tratados con achiote presenta

estadísticos (mínimo, máximo, mediana, media, desviación típica y

coeficiente de variación) más bajos con respecto a los estadísticos

reportados por cocona y copaiba (gráfico 1).

Las distribuciones del tiempo de cicatrización con las tres medicinas

naturales (cocona, achiote y copaiba), son simétricas y más bajas que la

curva normal.

56

3.2. EVALUACION DE LA NORMALIDAD DEL TIEMPO DE CICATRIZACION

Tabla 2

Estadísticos de normalidad del tiempo de cicatrización

con las pruebas de Kolmogorov – Smirnov y Shapiro – Wilk

Prueba

Estadísticos

Achiote

Cocona

Copaiba

Kolmogorov – Smirnov

Valor calculado

0,251

0,205

0,262

Valor p 0,012* 0,091 0,007**

Shapiro - Wilk

Valor calculado

0,798

0,882

0,889

Valor p

0,003**

0,052

0,066

(**) Altamente significativa (Significativa al 1%; Valor p < 0,01)

(*) Significativa (Valor p < 0,05)

En la tabla 2 se ve que, según las pruebas de normalidad de Kolmogorov

– Smirnov y Shapiro – Wilk, la distribución del tiempo de cicatrización con

achiote es no normal (p < 0,05), la distribución del tiempo de cicatrización

con cocona es normal (p > 0,05) y la distribución del tiempo de

cicatrización con achiote es no normal (p < 0,05) con la prueba de

Kolmogorov – Smirnov y normal (p > 0,05) con la prueba de Shapiro –

Wilk.

57

En síntesis, no todas las distribuciones del tiempo de cicatrización de las

ratitas, con los tres tratamientos naturales, son normales.

Gráfico 1

Tiempo de cicatrización por medicina natural

Tratamiento natural

Con estos resultados, la comparación del tiempo de cicatrización

promedio por medicina natural se realiza con la prueba no paramétrica de

Kruskal – Wallis (figura 1).

Esta prueba revela que existen diferencias significativas entre las

medianas del tiempo de cicatrización de las ratitas tratadas con achiote,

cocona y copaiba (Sig < 0,05), donde la medicina natural más efectiva es

58

el achiote (12 días) y las menos efectivas la copaiba (17 días) y la cocona

(15 días) (figuras 2 y 3).

HIPOTESIS NULA TEST SIG. DECISION

La distribución de tiempo de

cicatrización (días) es la misma entre las categorías de los

tratamientos naturales

Prueba de Kruskal – Wallis de muestras

independientes

0,05 Rechazar la hipótesis

nula

Se muestran las significancias asintóticas. El nivel de significancia

es 0,05

Figura 1. Prueba de hipótesis de Kruskal – Wallis

Figura 2. Comparaciones por parejas de Medicina natural – Gráfica

59

Figura 3. Comparaciones por parejas de Tratamiento natural – Analítica

De estos resultados se deriva que el tratamiento natural más efectivo en

el tiempo de cicatrización de ls ratones es el achiote.

60

DISCUSIÓN

Considerando que el presente trabajo de investigación es un trabajo inédito,

toda vez no se ha podido encontrar evidencias científicas sobre trabajos que

tengan cierta similitud, ya que es de pleno conocimiento los productos

naturales como son el achiote, cocona y copaiba son propios de nuestra selva

peruana y razón por ello no se han realizado trabajos con el uso de estos

productos naturales en ratones albinos.

Bajo estas circunstancias me veo en la obligación de hacer una discusión sobre

mis resultados obtenidos en el presente estudio, el mismo que es aceptado por

un trabajo inédito respectivamente.

El tiempo de cicatrización de los ratones tratados con achiote fueron las que

llegaron a cicatrizar en un menor tiempo que el copaiba y cocona, posiblemente

esta diferencia se deba particularmente a sus componentes físicos químicos de

cada producto natural así como de algunos componentes sensoriales que han

hecho que el achiote sea el mejor producto natural que ha respondido en la

cicatrización de herida de ratones albinos.

61

Por otro lado esta afirmación se corrobora según las pruebas de normalidad de

Kolmogorov – Smirnov y Shapiro – Wilk, la distribución del tiempo de

cicatrización con achiote es no normal (p < 0,05), la distribución del tiempo de

cicatrización con cocona es normal (p > 0,05) y la distribución del tiempo de

cicatrización con copaiba es no normal (p < 0,05). En síntesis, no todas las

distribuciones del tiempo de cicatrización de los ratones, con las tres medicinas

naturales, son normales.

Así mismo los resultados obtenidos y a la comparación del tiempo de

cicatrización promedio por medicina natural se realiza con la prueba no

paramétrica de Kruskal – Wallis, demuestra que existen diferencias

significativas entre las medianas del tiempo de cicatrización de las ratitas

tratadas con achiote, cocona y copaiba (Sig < 0,05), donde la medicina natural

más efectiva es el achiote con 12 días y las menos efectivas fueron la copaiba

con 17 días y la cocona con 15 días respectivamente.

62

CONCLUSIONES

Del presente trabajo de investigación científica se obtienen las siguientes

conclusiones:

1. Que el tiempo de cicatrización de los ratones oscila entre 11 y 20 días,

con una mediana de 15 días, una media de 14,78 días, una desviación

típica de 2,58 días, un coeficiente de variación de 17,4%, un coeficiente

de asimetría de 0,05 y un coeficiente de curtosis de –0,98.

2. Que los El tiempo de cicatrización de los ratones tratados con achiote

presenta estadísticos (mínimo, máximo, mediana, media, desviación

típica y coeficiente de variación) más bajos con respecto a los

estadísticos reportados por cocona y copaiba.

3. Esta prueba revela que existen diferencias significativas entre las

medianas del tiempo de cicatrización de las ratones tratadas con

achiote, cocona y copaiba (Sig < 0,05), donde la medicina natural más

efectiva es el achiote (12 días) y las menos efectivas la copaiba (17

días) y la cocona (15 días).

4. De estos resultados se deriva que la medicina natural más efectiva en el

tiempo de cicatrización de las ratones es el achiote.

63

RECOMENDACIONES

Se recomienda realizar un trabajo de investigación considerando el

objetivo general así como de los objetivos específicos con otras

especies de animales, donde posiblemente se tengan resultados muy

diferentes al presente trabajo el mismo que mejorará en disponer

evidencias confiables de las variables estudiadas.

Se recomienda realizar trabajos de investigación con otro tipo de

insumos naturales para ver los efectos producidos en lesiones cutáneas

como promotores de cicatrización.

Se recomienda según los resultados obtenidos utilizar el achiote como

un producto natural en el tratamiento de lesiones en piel con el propósito

de mejorar y apurar la cicatrización de las heridas en animales.

64

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Miami

69

ANEXOS

70

ANEXOS

Cuadro N° 1: Número de ratones albinos utilizadas y el tiempo de cicatrización

por cada grupo de tratamiento

Raton Albino

Achiote T1

Carambola T2

Copaiba T3

1 12 14 15

2 11 15 16

3 13 14 16

4 12 16 17

5 11 15 18

6 11 16 19

7 12 15 16

8 12 17 16

9 11 16 18

10 13 16 16