Il laboratorio diagnostico al fianco del medico veterinario libero … TV... · 2014-03-18 · 1...

Il laboratorio diagnostico al fianco del medico veterinario libero professionista

IL CORRETTO ITER DIAGNOSTICO E L’ INTERPRETAZIONE DEI TEST DI FARMACOSENSIBILITÀ

Luca Bano

Sezione Diagnostica di Treviso

IZS delle Venezie

L u c a B a n o , S e z i o n e D i a g n o s t i c a d i T r e v i s o , I Z S d e l l e V e n e z i e

� Il corretto iter diagnostico

� L’iter post diagnostico: test per valutare la sensibilità agli antimicrobici

� Come il veterinario può utilizzare i valori di MIC nella pratica

� Test di farmacosensibilità a confronto su patogeni respiratori del

bovino

Sommario


Perché fare diagnosi?

1. Ridurre il danno economico derivante dalla possibilità che più soggetti

si ammalino

2. Verificare l’efficacia dei protocolli vaccinali

3. Mirare la terapia evitando i costi di trattamenti farmacologici sbagliati

4. Ridurre il rischio d’insorgenza di farmacoresistenze


↗ Sintomatologica

↗ Ad esclusione (intuitiva)

↗ Ex juvantibus

↗ Di laboratorio (diretta e/o indiretta)

Tipi di diagnosi


Iter diagnostico

Problema sanitario

Anamnesi

Campionamento

Accertamenti di laboratorio

Diagnosi


Anamnesi

� Numero animali colpiti

� Momento d’insorgenza della sintomatologia

� Visita clinica (EOG, EOP)

� Vaccinazioni (virologico o sierologico?)

� Terapie pregresse (esame batteriologico)


Il corretto campionamento

Da considerare

↗ Momento del campionamento

↗ Tipo campione

↗ Numerosità campionaria (esito individuale vs esito

di gruppo)

↗ Metodica di laboratorio (es. batteriologico vs PCR)

↗ Modalità conservazione e trasporto campioni

Un buon campionamento è alla base di una corretta diagnosi

www.izsvenezie.it > Servizi offerti > Campionamento


0 g 3 g 8 g 12 g

Manifestazione

clinica

Mannheimia

haemolytica

Trueperella pyogenes

(ex Arcanobacterium pyogenes)

Mycoplasma ssp

Virus

Resp.

Dose

infettante

Tempo

Il corretto campionamento (2)

Momento del campionamento (BRD) –diagnosi diretta


Momento del campionamento (BRD) –diagnosi indiretta


� 1° prelievo in fase acuta

� 2° prelievo convalescente (dopo 3 settimane)

NB. campionare 10% animali


Tipo di campione (BRD)- animale vivo

↗ Tamponi nasali

• esame batteriologico

• esame virologico (PCR + colturali)

↗ Lavaggio bronco-alveolare

• esami batteriologici

• esami virologici (PCR + colturali)

• esami citologici


↗ Siero di sangue

• test ELISA

• test SIERONEURALIZZAZIONE



� Tamponi da 18 cm senza terreno di trasporto (PCR)

� Tamponi da 18 cm in terreno di trasporto(vitelli)

� Tamponi da 35 cm con guaina: possibili sempre PCR o esame

batteriologico se immerso in idoneo terreno liquido (fornito IZS)

Tipo di campione (BRD)- animale vivo


Tipo di campione (BRD)- animale mortoIl corretto campionamento (6)

Entro 24 ore dal decesso

� Polmone con cuore e linfonodi

mediastinici

� Versamento pleurico e/o pericardico

� Liquido cefalo-rachidiano

Oltre 24 ore dal decesso

↗ Descrivere le lesioni

↗ Recidere porzione polmonare con

epatizzazione recente

↗ Eseguire almeno 2 tamponi da superficie di

taglio, porre in terreno di ttrasporto

↗ Immergi in formalina tamponata (10%)

porzioni d’interesse, congelare il resto



Momento del campionamento (enteritidel vitello)

1 g 3 g 7 g 15 g

CoronavirusE. Coli K99 Rotavirus

Do

sein

fett

an

te/i

nfe

sta

nte

21 g 28 g

Cryptosporidi Eimeria spp.


Tipo di campione - enterite del vitelloIl corretto campionamento (6)

� Feci (da retto, contenitore sterile)


• esame virologico (PCR, ELISA)

• esame parassitologico (flottazione, PCR, Mc Master, IF, ELISA, ZN)

� Tampone rettale (ampolla rettale vuota)


� Siero di sangue

• Esame sierologico (ELISA)

• Esame virologico (ELISA, PCR)


Tipo di campione - enterite del vitello

Entro 24 ore dal decesso

� Carcassa intera

Oltre 24 ore dal decesso

� Descrivere le lesioni

� Immergi eventuali porzioni d’interesse in

formalina tamponata

� Esegui una legatura tra omaso e abomaso e

una rettale

� Asporta pacchetto intestinale refrigerare

(48 ore) o congelare (oltre 48 ore)


Iter post-diagnostico

Diagnosi

Terapia

Profilassi diretta

Revisione dei protocolli vaccinali

Soluzione del problema


Scelta dell’antibiotico

Considerazioni economiche

Considerazioni economiche

Considerazioni

tecniche

Considerazioni

tecniche

Test farmacosensibilità

Farmaco-cinetica/dinamica

…..

Tempi di sospensione

Costi

…..

Considerazioni

etiche

Considerazioni

etiche


Test di farmacosensibilità

B. METODI FENOTIPICI

↗ Determinazione della Minima Concentrazione Inibente (MIC)

↗ Metodo Kirby-Bauer (antibiogramma)

↗ E-Test

↗ MALDI TOF: spettri caratteristici di ceppi resistenti (es. Bacteroides fragilis

resistenti ai carbapenemi), di enzimi batterici che danno resistenza (es.

beta lattamasi)

A. METODI GENOTIPICI

↗ PCR

↗ microarray


METODI GENOTIPICI

↗ Rapidi

↗ Possibilità di analizzare molti geni contemporaneamente (microarray)

↗ Metodi standardizzabili intra- inter-laboratorio

↗ Metodo d’elezione per geni importanti in terapia umana (es. mecA)

↗ La presenza del gene non ne garantisce l’espressione

↗ I meccanismi di resistenza possono essere regolati da molteplici geni, e non tutti sono noti

↗ Per alcuni geni non esistono controlli positivi disponibili e certificati

Test per valutare l’antibioticoresistenza (2)


↗ MIC: concentrazione più bassa di un antimicrobico alla quale si osserva una

visibile inibizione della crescita batterica in condizioni sperimentali definite

↗ Varia a seconda della specie batterica e del principio attivo considerati

↗ Produce un dato numerico (μg/ml)

↗ Il valore ottenuto è confrontabile con dati di «popolazione» (MIC50, MIC90)

METODI FENOTIPICI

1. Determinazione della concentrazione minima inibente (MIC)


MIC: Metodo Della Diluizione In Agar

1. Determinazione della concentrazione minima inibente (MIC)

↗ Produce un dato numerico (μg/ml)

↗ Il valore ottenuto è confrontabile con dati di «popolazione» (MIC50, MIC90)

↗ Dato non suscettibile ad interpretazioni

↗ Impiego di controlli di qualità in ogni piastra (intra-run)

↗ Metodo raccomandato CLSI e EUCAST per la quasi totalità dei microrganismi (non micoplasmi e Bacteroides spp.)

↗ Non applicabile di routine (costi, laboriosità)

↗ Non esistono break point per tutte le molecole d’interesse veterinario



MIC: Metodo della diluizione in brodo

• Produce un dato numerico (μg/ml)

• Il valore ottenuto è confrontabile con dati di «popolazione» (MIC50, MIC90)

• Dato non suscettibile d’interpretazioni

• Impiego di controlli di crescita in ogni piastra

• Metodo approvato da CLSI e EUCAST per molte specie microbiche

• Esistono kit miniaturizzati commercialmente disponibili e pronti all’uso

• Numero di pozzetti limita il numero di molecole da testare e/o le diluizioni del farmaco

• Costi superiori rispetto KB



• Rapido, di facile applicazione

• Fornisce un valore quantitativo

• Per molte molecole d’interesse veterinario non esistono strips

• Non utilizzabile per microrganismi «fastidiosi»

• Testare molte molecole comporta costi superiori ad altre metodiche

• Valori troppo ravvicinati sulla striscia si prestano ad interpretazione

2. Metodo a gradiente predefinito (E-test)




La MIC e lo studio delle farmacoresistenze delle popolazioni microbiche

MIC 50 0.25

MIC 90 4

MIC med 0.423


1. Metodo Kirby Bauer (antibiogramma)

• Rapido,

• di facile applicazione,

• economico

• Non fornisce un risultato quantitativo immediato (R, S, I)

• Break point assenti per molti antibiotici di stretto interesse veterinario (valori forniti dalle ditte farmaceutiche)

• Metodo non accettato per specie batteriche “fastidiose” (es. anaerobi, emofili, micoplasmi, listeria)

• Standardizzazione intra- e inter-laboratorio (raccomandati frequenti controlli qualità, impossibile controllo «intra-run»)



Interpretazione: indispensabile conoscere il break point (clinico)

↗ Significato del BP clinico:

Il break point clinico definisce l’attività antimicrobica, in termini

quantitativi (valore MIC o diametro alone inibiz.) che un farmaco

deve manifestare in vitro per essere efficace nei confronti di quel

batterio, localizzato in quel tessuto, di quella particolare specie

animale.

↗ Valore fissato da organo scientifico riconosciuto (CLSI, EUCAST)


Applicazioni pratiche delle informazioni

fornite dalla determinazione della MIC


Break-point

%

1. Il dato quantitativo può essere convertito in dato qualitativo

Ceppi sensibili Ceppi resistenti


Nella scelta del farmaco non vanno comparati i valori assoluti di MIC tra le molecole,

ma si prediligerà il farmaco per il quale il rapporto BP/MICceppo è maggiore

2. Il dato di MIC può orientare il veterinario nella scelta dell’antibiotico

A

B

C

A B C

BP 0,25 1 2

MIC 0,125 4 0,125

BP/MIC 2 0,125 16

BP

BP BP


3. Il dato di MIC può orientare il veterinario nella scelta del dosaggio dell’antibiotico prescelto

0,2 ml/10 kg

1 volta al giorno

1 ml/10 kg

2 volte al giorno

es. farmaco iniettabile: 0,2-1 ml/10 kg, 1 o 2 volte al giorno

4. Consente di monitorare l’andamento delle resistenze nel tempo

%


Quale metodo per valutare la farmacoresistenza potrebbe essere adottato routinariamente in un laboratorio diagnostico?

Caratteristiche del sistema ideale per valutare la farmacoresistenza

• Facilmente fruibile dall’utente

• Scientificamente attendibile

• Facilmente standardizzabile

• Sempre disponibile in laboratorio

• Permetta di testare molecole d’interesse veterinario

• Applicabile a specie microbiche dalle molteplici esigenze colturali

• Economico

MIC in brodo

E-test

Comparazione dei due metodi rispetto al gold test (diluizione in agar)


Materiali e metodi

• Ceppi batterici “clinici” – 10 Pasteurella multocida

– 10 Mannheimia haemolytica

– 10 Histophilus sommni

• Molecole testate– Amoxicillina– Enrofloxacina

• Test– Diluizione in agar (metodo CLSI: M07 A9 e M100, IZS Treviso)– Diluizione in brodo (Sensititre, Trek; Micronaut, Merlin)– E-test (MIC test strip, Liofilchem)

• Interpretazione dei risultati dei test sottoposti a verifica– Il risultato viene definito «concordante» con il gold test, quando si

discosta dal valore di quest’ultimo di non più di 1 diluizione


0

10

20

30

40

50

60

70

0,0

16

0,0

32

0,0

63

0,1

25

0,2

5

0,5 1 2 4 8

16

32

64

12

8

25

6

%

µg/ml

Risultati - MIC diluizione in agar

MIC 50 0,125

MIC 90 0,25

MIC MED 0,1437

Pasteurella multocida

AMOXICILLINA ENROFLOXACINA

MIC 50 ≤ 0,016

MIC 90 ≤ 0,016

MIC MED ≤ 0,016

µg/ml



Mannheimia haemolytica


0

10

20

30

40

50

60

0,0

16

0,0

32

0,0

63

0,1

25

0,2

5

0,5 1 2 4 8

16

32

64

12

8

25

6

%

µg/ml

MIC 50 0,063

MIC 90 64

MIC MED 0,618

MIC 50 0,5

MIC 90 0,5

MIC MED 0,354



Histophilus somni

0

10

20

30

40

50

60

70

0,0

16

0,0

32

0,0

63

0,1

25

0,2

5

0,5 1 2 4 8

16

32

64

12

8

25

6

%

µg/ml

MIC 50 0,032MIC 90 0,125MIC MED 0,0419

0

10

20

30

40

50

60

70

80

0,0

16

0,0

32

0,0

63

0,1

25

0,2

5

0,5 1 2 4 8

16

32

64

128

256

MIC 50 0,032MIC 90 0,032MIC MED 0,0259



� I risultati «qualitativi» dei 2 test sono risultati concordanti con quelli del test

di riferimento

� Per ottenere un risultato quantitativo preciso con la MIC in brodo è

necessario ampliare il numero di diluizioni sottoposte alla prova

� Per l’amoxicillina, 7/10 ceppi di P. multocida testati con E-test, si sono

discostati per più di una diluizione rispetto al gold-test

Risultati - MIC brodo VS E-test

I sistemi miniaturizzati in brodo commerciali permettono di testare un numero elevato di

molecole e aumentano la standardizzazione del metodo


CTF TIA CTET GEN FFN OXY PEN AMP DANO SDM NEO SXT SPE TYLT TUL TIL CLI ENRO

BP ≤ 2 ≤ 16 ≤ 2 ≤ 4 ≤ 2 ≤ 2 ≤ 0,5 ≤ 0,25 ≤ 0,25 < 256 ND ≤ 2/38 ≤ 32 ≤ 5 ≤ 16 ≤ 8 ND ≤ 0,25

Range8-0,25

µg/ml

32-0,5

µg/ml

8-0,5

µg/ml

16-1

µg/ml

8-0,25

µg/ml

8-0,5

µg/ml

8-0,12

µg/ml

16-0,25

µg/ml

1-0,12

µg/ml

256

µg/ml

32-4

µg/ml

2/38

µg/ml

64-8

µg/ml

32-0,5

µg/ml

64-1

µg/ml

64-4

µg/ml

16-0,25

µg/ml

0,12-2

µg/ml

1 ≤ 0,25 ≥ 32 8 2 1 ≥ 8 ≤ 0,12 ≤ 0,25 0,5 ≥256 8 < 2/38 16 ≥32 2 8 16 0,5

2 ≤ 0,25 16 1 2 0,5 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 0,5 ≥256 ≤ 4 < 2/38 16 32 ≤ 1 ≤ 4 16 0,5

3 ≤ 0,25 16 1 2 0,5 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 < 256 ≤ 4 < 2/38 16 32 2 ≤ 4 8 ≤ 0,12

4 ≤ 0,25 8 1 2 0,5 1 0,25 ≤ 0,25 0,25 ≥256 ≤ 4 < 2/38 16 32 4 ≤ 4 8 0,5

5 ≤ 0,25 16 2 16 1 1 ≥ 8 ≥ 16 0,5 ≥ 256 8 < 2/38 8 16 4 ≤ 4 16 0,5

6 ≤ 0,25 16 2 ≥ 16 1 2 ≥ 8 ≥ 16 0,5 ≥256 8 < 2/38 16 32 4 ≤ 4 8 0,25

7 ≤ 0,25 16 2 4 0,5 2 ≤ 0,12 ≤ 0,25 0,5 ≥ 256 8 < 2/38 16 32 2 ≤ 4 8 0,5

8 ≤ 0,25 ≥ 32 ≥ 8 4 1 ≥ 8 ≤ 0,12 ≤ 0,25 0,5 ≥256 8 < 2/38 ≤ 8 ≥32 2 8 16 0,5

9 ≤ 0,25 32 2 2 1 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 0,5 ≥256 ≤ 4 < 2/38 32 32 2 ≤ 4 8 0,5

10 ≤ 0,25 8 2 4 0,5 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥256 8 < 2/38 16 32 2 ≤ 4 8 ≤ 0,12

Risultati MIC brodo per tutte le molecole del kit (Sensititre) – Mannheimia haemolytica


CTF TIA CTET GEN FFN OXY PEN AMP DANO SDM NEO SXT SPE TYLT TUL TIL CLI ENRO

BP ≤ 2 ≤ 16 ≤ 2 ≤ 4 ≤ 2 ≤ 2 ≤ 0,5 ≤ 0,25 ≤ 0,25 < 256 ND ≤ 2/38 ≤ 32 ≤ 5 ≤ 16 ≤ 16 ND ≤ 0,25

Range8-0,25

µg/ml

32-0,5

µg/ml

8-0,5

µg/ml

16-1

µg/ml

8-0,25

µg/ml

8-0,5

µg/ml

8-0,12

µg/ml

16-0,25

µg/ml

1-0,12

µg/ml

256

µg/ml

32-4

µg/ml

2/38

µg/ml

64-8

µg/ml

32-0,5

µg/ml

64-1

µg/ml

64-4

µg/ml

16-0,25

µg/ml

0,12-2

µg/ml

1 ≤ 0,25 16 ≥ 8 4 ≥ 8 ≥ 8 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 32 < 2/38 ≥ 64 ≥ 32 ≥ 64 ≥ 64 ≥ 16 ≤ 0,12

2 ≤ 0,25 16 ≤ 0,5 4 0,5 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 < 256 16 < 2/38 16 16 ≤ 1 ≤ 4 ≥ 16 ≤ 0,12

3 ≤ 0,25 16 8 ≤ 1 ≥ 8 ≥ 8 0,25 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 32 < 2/38 ≥ 64 ≥ 32 ≥ 64 ≥ 64 ≥ 16 ≤ 0,12

4 ≤ 0,25 8 ≤ 0,5 2 ≤ 0,25 1 0,25 0,5 ≤ 0,12 ≥ 256 ≤ 4 < 2/38 16 8 ≤ 1 ≤ 4 16 ≤ 0,12

5 ≤ 0,25 4 1 4 0,5 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 8 < 2/38 32 8 ≤ 1 ≤ 4 16 ≤ 0,12

6 ≤ 0,25 16 1 2 0,5 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 ≤ 4 < 2/38 16 16 ≤ 1 ≤ 4 ≥ 16 ≤ 0,12

7 ≤ 0,25 16 1 2 ≤ 0,25 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 ≤ 4 < 2/38 ≤ 8 32 ≤ 1 ≤ 4 16 ≤ 0,12

8 ≤ 0,25 2 1 ≤ 1 0,25 1 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 ≤ 4 < 2/38 16 4 ≤ 1 ≤ 4 8 ≤ 0,12

9 ≤ 0,25 2 4 2 0,5 4 ≤ 0,12 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 8 < 2/38 16 4 ≤ 1 ≤ 4 8 ≤ 0,12

10 ≤ 0,25 32 1 4 0,5 1 0,25 ≤ 0,25 ≤ 0,12 ≥ 256 ≤ 4 < 2/38 16 32 ≤ 1 ≤ 4 ≥ 16 ≤ 0,12

Risultati MIC brodo per tutte le molecole del kit (Sensititre) – Pasteurella multocida


CTF CEQ TIA TET GEN SPE FFC PEN AMP ERY TIL NEO SXT CLI ENRO

BP ≤ 2 ND ≤ 16 ≤ 2 ≤ 4 ≤ 32 ≤ 2 ≤ 0,5 ≤ 0,25 ≤ 1 ≤ 8 ND ≤ 2/38 ND ≤ 0,25

Range1-8

µg/ml

1-8

µg/ml

4-32

µg/ml

1-16

µg/ml

2-16

µg/ml

8-128

µg/ml

1-8

µg/ml

0,0625-16

µg/ml

0,125-32

µg/ml

0,125-8

µg/ml

4-32

µg/ml

8-32

µg/ml

0,25/4,75-4/76

µg/ml

0,25-4

µg/ml

0,025-2

µg/ml

1 <1 <1 <4 <1 4 32 <1 <0,0625 < 0,125 2 32 16 <0,25 /4,75 1 <0,0625

2 <1 <1 <4 <1 4 32 <1 <0,0625 < 0,125 2 32 <8 <0,25 /4,75 4 <0,0625

3 2 >8 <4 <1 4 32 <1 <0,0625 < 0,125 2 32 <8 <0,25 /4,75 2 <0,0625

4 <1 <1 8 <1 8 64 <1 <0,0625 < 0,125 2 32 16 <0,25 /4,75 2 <0,0625

5 <1 <1 8 <1 8 64 <1 <0,0625 < 0,125 4 >32 16 <0,25 /4,75 2 <0,0625

6 <1 2 8 <1 8 64 <1 <0,0625 < 0,125 2 >32 16 <0,25 /4,75 2 <0,0625

7 <1 1 8 <1 8 64 <1 <0,0625 < 0,125 4 >32 16 <0,25 /4,75 2 0,0625

8 <1 2 4 <1 8 64 <1 <0,0625 < 0,125 4 32 16 <0,25 /4,75 1 <0,0625

9 <1 2 8 <1 8 64 <1 <0,0625 0,125 4 >32 16 <0,25 /4,75 2 0,125

10 <1 1 8 <1 8 64 <1 <0,0625 < 0,125 2 >32 16 <0,25 /4,75 2 0,0625

Risultati MIC brodo per tutte le molecole del kit (Micronaut-S) – Histophilus somni


Il passaggio a un sistema di valutazione della farmacosensibilità attraverso la determinazione

della MIC,fornisce informazioni utili al veterinario nella scelta del farmaco,

promuovendone un uso responsabile


(Da Giguère et al., 2006, antimicrobial therapy in veterinary medicine)


Possibili criticità nell’esecuzione dell’antibiogramma


CeppoMIC AGAR E-TEST MIC BRODO (AMPI)

0,016-256 µg/ml 0,016-256 µg/ml 0,025-16 µg/ml

1 0,125 0,064 ≤ 0,25

2 0,25 0,047 ≤ 0,25

3 0,125 0,094 ≤ 0,25

4 0,25 0,064 0,5

5 0,25 0,016 ≤ 0,25

6 0,125 0,064 ≤ 0,25

7 0,125 0,032 ≤ 0,25

8 0,125 0,032 ≤ 0,25

9 0,063 0,016 ≤ 0,25

10 0,125 0,032 ≤ 0,25


AMOXICILLINARisultati - MIC brodo VS E-test



0,016-256 µg/ml 0,016-256 µg/ml 0,025-16 µg/ml

1 0,063 0,032 ≤ 0,25

2 0,063 0,016 ≤ 0,25

3 0,063 0,016 ≤ 0,25

4 0,125 0,023 ≤ 0,25

5 64 48 ≥ 16

6 64 6 ≥ 16

7 128 ≥ 256 ≥ 16

8 0,063 0,063 ≤ 0,25

9 0,063 0,016 ≤ 0,25

10 0,125 0,016 ≤ 0,25





0,016-256 µg/ml 0,016-256 µg/ml 0,025-16 µg/ml

1 0,032 0,032 -

2 0,032 0,023 -

3 ≤ 0,016 ≤ 0,016 -

4 0,032 0,016 -

5 0,032 0,016 -

6 0,032 0,032 -

7 0,032 0,032 -

8 0,063 0,016 -

9 0,125 0,25 -

10 0,125 0,047 -

Histophilus somni



CeppoMIC AGAR E-TEST MIC BRODO

0,016-256 µg/ml 0,002-32 µg/ml 0,12-2 µg/ml

1 ≤ 0,016 0,006 ≤ 0,12

2 ≤ 0,016 0,023 ≤ 0,12

3 ≤ 0,016 0,008 ≤ 0,12

4 ≤ 0,016 0,012 ≤ 0,12

5 ≤ 0,016 0,008 ≤ 0,12

6 ≤ 0,016 0,008 ≤ 0,12

7 ≤ 0,016 0,008 ≤ 0,12

8 ≤ 0,016 0,006 ≤ 0,12

9 ≤ 0,016 0,006 ≤ 0,12

10 ≤ 0,016 0,008 ≤ 0,12


ENROFLOXACINARisultati - MIC brodo VS E-test





0,016-256 µg/ml 0,002-32 µg/ml 0,12-2 µg/ml

1 0,5 0,5 0,5

2 0,5 0,5 0,5

3 0,032 0,047 ≤ 0,12

4 0,5 0,5 0,5

5 0,5 1 0,5

6 0,5 0,75 0,25

7 2 1,5 0,5

8 0,5 0,75 0,5

9 0,5 0,75 0,5

10 0,063 0,064-0,094 ≤ 0,12



0,016-256 µg/ml 0,002-32 µg/ml 0,12-2 µg/ml

1 0,032 0,047 -

2 0,032 0,023 -

3 ≤ 0,016 ≤ 0,002 -

4 0,032 0,032 -

5 0,032 0,047 -

6 ≤ 0,016 0,023 -

7 0,032 0,032 -

8 0,032 0,012 -

9 0,032 0,023 -

10 ≤ 0,016 0,012 -

Histophilus somni



Indagine BVD in provincia di Treviso

Prov. di

Treviso

Prov. di

Treviso

Indagine

BVD

%

Aziende 754* 50 7

Capi 23252* 5037 22

*Dati A.Pro.La.V

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