guia laboratorio Farmacognosia II

8/17/2019 guia laboratorio Farmacognosia II

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FORMATO GUIAS DE PR CTICA CIENCIAS DE LA SALUD QUIMICACódigo de registro: RE-10-LAB-048-001 Versión 1.0UNIVERSIDAD DEL VALLELABORATORIO DE FARMACOGNOSIA IIPráctica No. 1

OBTENCIÓN DE ALMIDÓN DE PAPA Y YUCA

1. CONOCIMIENTO TEORICO REQUERIDO.-

El almidón es un polisacárido vegetal , de hecho es el único asimilable por elcuerpo humano, y por ello es un nutriente que tenemos tan presente ennuestra dieta, ya que es muy rápido de asimilar y aportan grandes

cantidades de beneficios al organismo como la energía necesaria para poderhacer frente a las pruebas que se ponen delante nuestro cada día. El almidóntiene apariencia de polvo blanquecino compuesto por micro partículas que sonlas que le dotan del valor biológico que tiene.El almidón lo contienen muchos alimentos que forman parte importante ennuestra dieta, de hecho la mayoría de ellos constituyen la base de la pirámidealimenticia. Entre ellos vamos a destacar los cereales, el arroz, las patatas ...Fuentes de energía necesarias para mantener unos niveles de glucosa ensangre adecuados, a los que el almidón contribuye en gran medida, ya queen su composición esta sustancia está formada por partículas de glucosa que se dividen en dos, la amilosa o glucosa simple y una variedad ramificada

de glucosa que se conoce con el nombre de amilopeptina. Esa cualidad es laque convierte al almidón en una buena fuente de energía para el organismo.

2. COMPETENCIAS.-Los estudiantes Realizan una extracción de almidón a partir de la yuca, comoproducto orgánico a través de la resolución de problemas

3. MATERIALES, REACTIVOS Y EQUIPOS.-

- Papa, yuca- Licuadora- Balanza- Cuchillo- Vasos precipitados- Embudo


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- Papel filtro- Varilla de vidrio- Espátula- Lugol4. TECNICA Ó PROCEDIMIENTO.-

Lavar las papas y las yucas, pelar y pesar (por separado).Cortar las papas y las yucas en pequeños pedazos y proceder a licuar losmismos utilizando una licuadora, agregando un poco de agua a medidaque se efectúa la molienda.Es necesario licuar o moler muy bien para que la lechada sea homogénea,densa y de partícula lo más fina posible.Vaciar la lechada (contenido de la licuadora) en un vaso de precipitado,

dejar reposar por lo menos 10 minutos y luego filtrar.Dejar secar el sólido retenido y pesar.

5. TIEMPO DE DURACION DE LA PRACTICA.-

100 MINUTOS6. MEDICIÓN, CALCULOS Y GRAFICOS.-

• Comparar el peso inicial y el peso final.• Comprobar que el sólido obtenido es almidón utilizando unas gotitas de

lugol.

7. CUESTIONARIO.-

1. ¿Qué es el almidón?2. ¿Qué aplicaciones tiene el almidón en la medicina y en la industria?


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c. Moler las nueces en el solvente lo más finamente posible, durantealgunos minutos.

d. Luego, verter el líquido en un tubo de ensayo y filtrarlo recogiéndoloen un vidrio reloj grande o en otro recipiente.

e. Colocar el recipiente o el vidrio reloj sobre un vaso de precipitado conagua caliente durante 15 minutos.

5.TIEMPO DE DURACION DE LA PRACTICA.-

100 MINUTOS

6.MEDICIÓN, CALCULOS Y GRAFICOS.-

Observar atentamente lo que ocurre y explicar.

7.CUESTIONARIO.-

• ¿Qué diferencia existe entre extracción y separación - purificación?• ¿Qué propiedades tiene la acetona o el alcohol en la experiencia?• Explicar en que consiste la destilación fraccionada.


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FORMATO GUIAS DE PR CTICA CIENCIAS DE LA SALUD QUIMICA

Código de registro: RE-10-LAB-048-001 Versión 1.0UNIVERSIDAD DEL VALLELABORATORIO DE FARMACOGNOSIA IIPráctica No. 3

DETECCIÓN DE ACEITES ESENCIALES

1.CONOCIMIENTO TEORICO REQUERIDO.-

La mayor parte de los olores y aromas característicos que desprenden lasplantas, son originados por la presencia de ciertos terpenos llamados "aceitesesenciales" los cuales son elaborados por el plasma y vertidos en las vacuolasy secretados al exterior a través de células especiales llamadas glándulas.Los aceites son altamente volátiles y se evaporan rápidamente de lasuperficie de los órganos de las plantas.

2. COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán:- Detectar la presencia de aceites esenciales en diferentes especies

vegetales.- Reconocer las características de los aceites esenciales.

3. MATERIALES, REACTIVOS Y EQUIPOS.-

- Hojas y cascaras de diferentes plantas cítricas: naranjas, mandarinas ylimones

- Hornilla- Varilla de vidrio

- Vaso precipitado4. TECNICA Ó PROCEDIMIENTO.-

Colocar 2 o 3 hojas de las diferentes especies vegetales en un vaso deprecipitado con agua y llevar a hervir.


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DETECCIÓN DE FLAVONOIDES


Los flavonoides sin ser metabolitos primarios, se encuentran casi en cualquiervegetal superior, se ubican preferentemente en las vacuolas y por tanto sonhidrofílicos. Para su detección se aplicará uno de los métodos químicos delaboratorio.

2.COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán:- Detectar la presencia de flavonoides en diferentes especies vegetales.- Reconocer las características de los flavonoides con la aplicación de

métodos químicos de detección.

3.MATERIALES, REACTIVOS Y EQUIPOS.-

- Material vegetal: tallos y hojas de diferentes especies (al menos 3)- Metanol- Etanol 96%- Cloroformo- Papel filtro- 3 matraces Erlenmeyer- 3 embudos- 3 vasos de precipitado- 3 morteros

- 3 varillas de vidrio- Hornilla- Pipeta graduada- HCL- Mg


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4.TECNICA Ó PROCEDIMIENTO.-

a. Las diferentes especies vegetales se trituran en un mortero por separadose mezclan con metanol, etanol y finalmente con cloroformo. Esta mezcla secalienta lentamente durante 5 a 10 minutos, luego la suspensión se viertesobre el filtro y se recoge el filtrado.


El docente debe indicar el tiempo de duración de la práctica desde el inicio de lamisma hasta su culminación.


• Observar si hay presencia de espuma.• Observar si hay algún cambio de color en el preparado.

7.CUESTIONARIO.-• Indicar la estructura general de los flavonoides• ¿Qué características, propiedades y funciones presentan los flavonoides?• ¿Qué propiedades tienen el Mg y HCL y por que se utiliza en esta práctica?


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DETECCIÓN DE SAPONINAS


Se llaman saponinas a un grupo de sustancias glicosídicas que se disuelven enagua y poseen la propiedad de formar espuma al agitar la solución. Estoscompuestos se aislan de diferentes fuentes vegetales. Las saponinas tienendiferentes aplicaciones en la preparación de detergentes no alcalinos, fármacos,agentes espumantes y venenos para peces.

2.COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán:- Detectar la presencia de saponinas en diferentes especies vegetales.

Reconocer las características de las saponinas con el método químico aplicado


- 5 gramos de material vegetal (hojas de zarzaparrilla, tomate, pimentón,etc.)

- metanol- Etanol 96%- Cloroformo- Papel filtro- 3 matraces Erlenmeyer- 3 vasos de precipitado- 3 embudos

- 3 morteros- 3 varillas de vidrio- Hornilla- Pipeta graduada


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• Las diferentes especies vegetales se trituran en un mortero por separadose mezclan con metanol, etanol 96% y finalmente con cloroformo. Estamezcla se calienta lentamente durante 5 a 10 minutos, luego la suspensiónse vierte sobre un filtro y se recoge el filtrado.

• Tomar alícuotas de 0,2 mi del filtrado y diluir en un volumen de agua 2veces mayor y sacudir 30 segundos.


100 minutos.

6. MEDICIÓN, CALCULOS Y GRAFICOS.-

• Observar y describir cuidadosamente si ocurre algo especial alagitar el preparado.

• Tomar el tiempo de permanencia de la espuma formada, explicar.

7.CUESTIONARIO.-

• ¿Qué significa la espuma que se forma en el preparado?• Investigar algunas especies vegetales que contengan saponinas.¿Qué función cumple el metanol, etanol y cloroformo?


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EXTRACTOS COLOREADOS PROCEDENTES DE FLORES COMOINDICADORES DE ACIDOS Y BASES.


Los compuestos extraídos de diferentes especies vegetales tienen diferentesusos tanto en la industria farmacéutica, medicinal y alimenticia. Uno de esosusos es la aplicación de extractos coloreados como indicadores de ácidos ybases.

2.COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán:Realizar la extracción de compuestos coloreados de distintas flores y comprobarla efectividad de sus propiedades indicadoras frente a distintas sustanciasbásicas y acidas.


- Flores y hojas de colores brillantes como la "Santa Rita"- Mortero- Acetona- Etanol- Papel filtro- Embudo- Gotero

- Jugo de limón- Jugo de naranja- Tumbo- Jugo de mandarina- Vinagre- Jugos envasados


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- Ácido clorhídrico- Bicarbonato de sodio Hidróxido de sodio


Seleccionar flores y hojas de colores brillantes como la "santa Rita"(Buganvilla sp)

b. Exprimir o moler una de las flores u hojas en un mortero con una mezclapreparada con 2 ml de acetona y 2 ml de etanol

c. Filtrar y recoger el filtradod. Repetir la operación con las otras flores de diferentes colorese. Poner una mancha de extracto coloreado de flores sobre un papel filtro y

dejarla secar. Colocar sobre la misma una gota de jugo de limónf. Observar si hay algún cambio de color y explicar.Realizar el mismo experimento con otros jugos como jugo de naranja, tumbo,

mandarina, vinagre, jugos envasados y ácido clorhídricoh. Poner un poco del filtrado original sobre otro trozo de papel de filtro, unavez seco, colocar sobre la mancha bicarbonato de sodio, i. Observar si hayalgún cambio de color y explicar, j. Realizar el mismo experimento conhidróxido de sodio.

5. TIEMPO DE DURACION DE LA PRACTICA.-

100 MINUTOS.


Para todos los casos observar y detectar si hay algún cambio de color, compararcon la escala de acidez y basicidad estandarizada y explicar

7.CUESTIONARIO.-

• ¿Qué son los indicadores?• ¿Qué efecto tendría el indicador universal en todas las soluciones realizadasen la práctica?• ¿Qué es el pH?


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MÉTODO RÁPIDO DE WEBB PARA ALCALOIDES


Los alcaloides abundan en los tejidos de intensa actividad celular, hojas raíces,semillas, pero hay variaciones en cuanto a su concentración y naturaleza, deacuerdo a factores como madurez, suelo, método de cultivo, variacionesestacionales, etc. Generalmente la presencia de alcaloides se determinamediante pruebas químicas sobre los extractos ácidos de las plantas. Losreactivos más frecuentes que pueden ser usados tanto para la detección dealcaloides por reacciones de color, como para precipitarlos y recuperarlos son:Dragendorff, Wagner y Meyer.

2.COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán detectar y reconocer alcaloides en hoja de coca.


- 10 gramos de hojas de coca pulverizadas- HCLaM%

2 matraz Erlenmeyer- Termómetro- Hornilla- Varilla de vidrio- Pipeta graduada- 3 vidrio reloj

- Papel filtro- Reactivo de Dragendorff, Wagner y Meyer- Líquido de Prollius- Vasos de precipitado- Parafilm-


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Pesar 5 gramos de hoja de coca seca y pulverizada y mezclar con suficienteHCL al 1 % para formar una suspensión y obtener después unos 2 ml defiltrado

b. Trasladar la suspensión a un matraz Erlenmeyer o a un vaso deprecipitado y colocar en baño maría a 80 C

c. La mezcla se debe calentar por 4 horas y sacudir periódicamente.Después se retira la suspensión, se deja enfriar y proceder a filtrar

d. Por separado tomar alícuotas de 0,2 ml del filtrado con volúmenes de 0,1ml de reactivos de Mayer, Wagner y Dragendorff

MÉTODO LENTO DE WEBB, USANDO LÍQUIDO PROLLIUS PARAALCALOIDES:

a. Mezclar 5 gramos de hoja de coca seca y pulverizada con 20 ml delíquido de Prollius en un matraz el cual se tapa herméticamente conparafina.

b. Dejar a temperatura ambiente 10 horas y agitar con frecuenciac. Después filtrar la suspensión y el filtrado mezclar con HCL al 1 %. Luego

tomar alícuotas de 0,2 ml de éste y hacer ensayos con 0,1 ml dereactivos para alcaloides (Mayer, Wagner y Dragendorff).


100 minutos.


Observar los cambios de color y la presencia de precipitados con los distintosreactivos, explicar

7.CUESTIONARIO.-

• ¿Qué es un reactivo y qué características y qué propiedades tiene?• ¿Qué propiedades tienen los alcaloides?• ¿Qué función cumple el HCL y el líquido de Prollius?• ¿Por qué la suspensión deber ser calentada?


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FORMATO GUIAS DE PR CTICA CIENCIAS DE LA SALUDQUIMICA


CROMATOGRAFÍA EN PAPEL COMO TÉCNICA DE SEPARACIÓN


De los métodos más empleados, tanto para la separación como la purificación deextractos, la cromatografía tiene lugar prioritario. El principio básico de lacromatografía consiste en una distribución desigual entre 2 fases estacionaria ymóvil de un determinado compuesto. Esto permite separar una mezcla en suscomponentes de acuerdo a sus diferentes distribuciones en un sistema de dosfases dado.

Uno de los métodos cromatográficos más comunes es la cromatografía en papeldonde la muestra a separar es absorbida sobre el punto de aplicación del soporte:papel el cual retiene el agua (fase estacionaria), pero se puede saturar con otrafase estacionaria, antes de permitir el flujo del eluyente: fase móvil.

2.COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán:- Conocer el fundamento de la cromatografía en papel.- Aplicar la técnica de cromatografía en papel para separar pigmentos

vegetales.


- Hojas y pasto- Mortero- Acetona- Tiras de papel filtro- Tubos de ensayo- Cuentagotas


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FORMATO GUIAS DE PR CTICA CIENCIAS DE LA SALUD QUIMICA


CROMATOGRAFÍA DE ADSORCIÓN

1.CONOCIMIENTO TEORICO REQUERIDO.-Técnica de análisis que consiste en separar las substancias disueltas en unamezcla por absorción o concentración selectiva, de forma que produce manchasde diferente color en ella.

La cromatografia es un método de análisis químico basado en la separación pormétodos de absorción de los componentes de una mezcla fue descubierto en1909, por el botánico M. Tswestt, que utilizo los principios de la absorciónselectiva para separar los pigmentos fuertemente coloreados de las hojas de lasplantas. El nombre se sigue empleando, aunque aplicado también a substanciasincoloras.

El metodo se fundamenta en poner en contacto dos fases o componentesmutuamente inmiscibles, que no reaccionen químicamente, una de las cuales esmóvil y la otra estacionaria. La fase estacionaria, un liquido un sólido o un gel,esta contenida en una probeta de largo cuello(llamada colector), formando unacolumna. La fase móvil consiste en una disolución de material que se deseaanalizar en una disolvente apropiado que no se absorba a la fase estacionaria. Amedida que la fase móvil pasa a través de la fase estacionaria, se va produciendouna absorción selectiva: aquellos componentes de la fase móvil que muestrenmayor afinidad de absorción con la fase estacionaria quedaran retenidos en lascapas superiores de la columna, y aquellos que muestren menor afinidad seabsorberán mas tarde, mas abajo en la columna. El resultado es una columnagraduada o cromatograma en donde cada especie quimica se ha absorbido enuna capa concreta. Estas capas reciben el nombre de platos.

Entre los materiales que se utilizan como absorbentes se encuentran la alúminay la sílice, tanto en estado pulverulento como en diversos geles. Cuando la fase


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estacionaria la forman líquidos, la columna resultado, se puede a su vez utilizarpara hacer otras cromatografías, proceso que se denomina particióncromatografía. 2.COMPETENCIAS.-Los estudiantes podrán:

- Conocer el fundamento de la cromatografía de adsorción- Aplicar la técnica de cromatografía de adsorción para separar

pigmentos vegetales.

3.MATERIALES, REACTIVOS Y EQUIPOS.-Naranja de metilo

Azul de metilenoÉter de petróleoBenceno EtanolColumna de alúmina (AI203)Tubo de vidrio verticalDepósito para la soluciónMatraz erlenmeyerSoporte universal

Algodón o lana de vidrio


♦ Preparar una solución de partes ¡guales del naranja de metilo y azul demetileno y disolverla con éter de petróleo

♦ Hacer pasar la solución a través de la columna de alumina AI203 figura 1.♦ Interrumpir la adición de solución y pasar a través de la columnael

bencenopurohasta que comiencen a separarse los colorantes. Para laextracción o elusión utilizar etanol.

♦ Para llevar la mezcla de compuestos a la columna se utiliza un disolventepoco polar (éter de petróleo); para el desarrollo del cromatograma, undisolvente algo polar (benceno), para la elusión de los productosadsorbidos un disolvente más polar todavía (etanol).


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100 minutos.


Observar el desarrollo del cromatograma, separar los colorantes y explicar elproceso.

7.CUESTIONARIO.-

1. ¿Qué es la cromatografía de adsorción?2. ¿Que diferencia existe entre adsorción y absorción?3. ¿Qué factores deben tomarse en cuenta en la elección de un absorbente?4. ¿Qué es la polaridad de un disolvente y que propiedad le brinda?


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DESTILACIÓN SIMPLE


La destilación simple se utiliza cuando la mezcla de productos líquidos a destilarcontiene únicamente una sustancia volátil, o bien, cuando ésta contiene más deuna sustancia volátil, pero el punto de ebullición del líquido más volátil difieredel punto de ebullición de los otros componentes en, al menos, 80 ºC.

El resultado final es la destilación de un solo producto, ya sea:

• porque en la mezcla inicial sólo había un componente, o• porque en la mezcla inicial uno de los componentes era mucho más volátil

que el resto

2.COMPETENCIAS.-

Los estudiantes podrán comprender los principios básicos de la destilación

simple en el área de la farmacognosia


• Matraz de destilación de 150 ml o matraz de fondo redondo de 200 mi• Soporte universal• Tubo refrigerante• Pinzas• Termómetro• 5 matraces colectores• Goma (mangueras)• Aro y tela de amianto• Pipetas graduadas• Propipetas• Mechero• Vidrio de reloj


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• Trocitos de plato poroso• 35 mi de agua• 35 mi de acetona• 100 mi de vino tinto


PRIMERA PARTEEn un matraz de destilación de 150 ml o en un matraz de fondo redondode 200 ml echar 35 ml de agua, 35 ml de acetona y 2 o 3 trocitos de platoporoso o perlas de ebullición.Sujetar el matraz de destilación con unas pinzas a un soporte sobre unarejilla (tela de amianto) colocada sobre un aro.Montar el resto del aparato como muestra la figura 1.

Para las uniones se pueden utilizar tapones de goma o de corcho.Se hace pasar a continuación una corriente de agua suave con la entradadel refrigerante conectando con una goma (manguera) el grifo de agua conla entrada del refrigerante. Mediante otra goma (manguera) unida a lasalida del refrigerante se conduce el agua al desagüe.Numerar o etiquetar 5 matraces colectores pequeños para recoger lassiguientes fracciones:

Calentar el matraz de destilación con una llama pequeña de forma que semantenga una destilación constante y sin interrupciones, recogiéndose enel colector una gota de destilado por segundo aproximadamente.Cuando se llegue a las temperaturas indicadas para cada intervalo, secambia rápidamente de colector.Cuando se alcance la temperatura de 95°C se interrumpe la destilación yse enfría el matraz de destilación, dejando que el líquido condensado quepuede retener la columna de fraccionamiento caiga de nuevo en el matraz.

SEGUNDA PARTE- En un matraz de destilación de 150 ml o en un matraz de fondo redondo

de 200 ml colocar 80 ml de vino tinto y 2 o 3 trocitos de plato poroso.- Luego seguir los mismos pasos que en la primera parte.


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1. ¿En qué consiste la destilación fraccionada y al vacio?2. ¿Qué es el punto de ebullición?3. ¿Por qué se debe tomar en cuenta el punto de ebullición en la

destilación?

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